王鑫,韓茜宇,薛宏坤,于國萍
(1.大理大學(xué) 公共衛(wèi)生學(xué)院,云南 大理 671003;2.黑龍江國際旅行衛(wèi)生保健中心,哈爾濱 150090;3.清華大學(xué) 工程物理系,粒子與輻射成像教育部重點實驗室,北京 100084;4.東北農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品學(xué)院,哈爾濱 150030)
藍(lán)莓(blueberry)果實體型小、呈誘人的藍(lán)色,是世界上最重要的漿果之一,主要種植在我國東北和西南地區(qū)。果實中富含花色苷、超氧化物歧化酶、多種維生素等活性成分[1],大量研究表明花色苷具有抗氧化、抗炎、抗腫瘤及增強視力等功效[2,3],此外,花色苷顏色誘人,風(fēng)味獨特,通常作為天然的色素和食品添加劑,被廣泛用于飲料、奶制品及膨化食品行業(yè)。藍(lán)莓是天然花色苷色素的重要來源,如何快速、高效地從藍(lán)莓中提取花色苷是當(dāng)前研究的熱點。
目前,藍(lán)莓花色苷提取以傳統(tǒng)溶劑提取為主,但由于該方法效率低、耗時長,同時溶劑被大量消耗[4],無法滿足高效提取花色苷的需求。近年來,越來越多的新型提取技術(shù)被廣泛用于花色苷的提取,如超聲、微波和酶制劑(纖維素酶、果膠酶和蛋白酶等)等提取技術(shù),以上提取技術(shù)均可以有效改善花色苷的提取效率,但同時這些新技術(shù)對設(shè)備要求較高、提取條件苛刻,且提取成本較高,均存在一定的局限性。而超高壓提取技術(shù)作為物理提取方法更適用于熱敏性成分的提取,其原理是利用超高壓破壞離子鍵、疏水鍵及膜蛋白結(jié)構(gòu),從而降低活性成分的傳質(zhì)阻力[5];此外,超高壓能增強細(xì)胞膜的通透性,加速目標(biāo)成分溶解[6]。對比傳統(tǒng)的提取技術(shù),超高壓提取技術(shù)具有提取時間短、提取效率高、雜質(zhì)少、節(jié)能、安全等特點[7]。故超高壓提取技術(shù)被廣泛應(yīng)用于茶多酚、植物多糖和黃酮的提取[8-10]。在花色苷活性方面,已有研究表明藍(lán)莓經(jīng)提取后獲得的花色苷提取物能有效抑制肝癌HepG2細(xì)胞的增殖。薛宏坤等[11]和劉奕琳等[12]分別研究發(fā)現(xiàn)藍(lán)莓果渣花色苷提取物和藍(lán)靛果花色苷乙醇洗脫物均能抑制HepG2細(xì)胞的增殖。目前,采用超高壓提取技術(shù)從藍(lán)莓中提取花色苷的工藝及其提取物抗腫瘤作用機制的研究報道較少。因此,本研究首先探究提取壓力、保壓時間、乙醇體積分?jǐn)?shù)和料液比4個因素對藍(lán)莓花色苷含量的影響,并采用響應(yīng)面方法優(yōu)化其提取工藝參數(shù);在此基礎(chǔ)上,探究藍(lán)莓花色苷提取物的體外活性及其機制,為藍(lán)莓中天然色素的開發(fā)提供了理論依據(jù),同時拓展了天然色素在食品中的應(yīng)用價值。
藍(lán)莓:新鮮的藍(lán)莓于2018年7月下旬采摘于黑龍江省大興安嶺地區(qū),樣品經(jīng)除雜、清洗,置于-20 ℃冰箱中冷凍。
肝癌HepG2細(xì)胞:上海信裕生物科技有限公司;二甲基亞砜(DMSO):常州市恒譽化工有限公司;磷酸鹽緩沖液(PBS):北京全式金生物技術(shù)有限公司;MTT和DMEM完全培養(yǎng)基:北京百奧萊博科技有限公司;乙醇、過硫酸鉀、水楊酸和鹽酸:南京中淳生物科技有限公司;三氯乙酸、硫酸亞鐵和鐵氰化鉀:天津市金中化工原料銷售有限責(zé)任公司;矢車菊素-3-葡萄糖苷(純度≥98%):美國Sigma公司。
EVOS M7000倒置顯微鏡 賽默飛世爾科技(中國)有限公司;HPP600 MPa/30 L超高壓處理裝置 包頭科發(fā)高壓科技有限公司;DRYER真空冷凍干燥器 德國西門子公司;RE-6000AT型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器 上海耀裕儀器設(shè)備有限公司;PRACTUM224-1CN分析天平 德國賽多利斯儀器有限公司;PHS-550雷磁pH計 上海儀電科學(xué)儀器有限公司;JYL-Y912九陽破壁機 杭州九陽股份有限公司。
1.3.1 藍(lán)莓粉末的制備
在試驗前,從冰箱中將冷凍的藍(lán)莓取出,室溫解凍3 h,然后將其打漿,將果漿置于真空冷凍干燥機干燥72 h,采用植物粉碎機將其粉粹,過40目篩,制成藍(lán)莓果粉,最后將果粉避光密封保存在-18 ℃冰箱中備用。
1.3.2 藍(lán)莓花色苷超高壓提取
將藍(lán)莓果粉(2.0000±0.0005) g置于真空包裝袋中,按照不同料液比加入不同體積分?jǐn)?shù)的乙醇溶液,使其充分混合,封口,然后置于超高壓設(shè)備中進行提取,提取溫度為50 ℃,提取結(jié)束后,將萃取液置于離心機中以4000 r/min離心15 min,真空抽濾得上清液,將濾渣按上述方法重復(fù)提取2次,合并3次濾液,將濾液采用真空冷凍干燥機凍干,即獲得藍(lán)莓花色苷提取物粉末,置于-18 ℃冰箱中備用。
1.3.3 超高壓提取藍(lán)莓花色苷的單因素試驗
將藍(lán)莓粉末樣品(2.0000±0.0005) g作為提取對象,考察不同提取壓力、保壓時間、乙醇體積分?jǐn)?shù)和料液比對藍(lán)莓粉末中花色苷含量的影響。在預(yù)試驗的基礎(chǔ)上,設(shè)定提取壓力100,150,200,250,300 MPa 5個水平;保壓時間2,4,6*,8,10 min 5個水平;乙醇體積分?jǐn)?shù)40%、50%、60%*、70%、80% 5個水平;料液比1∶10、1∶20、1∶30*、1∶40、1∶50 (g/mL),每組試驗重復(fù)3次(注:“*”表示當(dāng)考察其他參數(shù)對花色苷含量影響時,用“*”標(biāo)記的因素保持恒定水平)。
1.3.4 響應(yīng)面法試驗
在單因素試驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,以提取壓力(X1)、保壓時間(X2)、乙醇體積分?jǐn)?shù)(X3)和料液比(X4)為自變量,以花色苷含量(Y)為響應(yīng)值。依據(jù)Box-Behnken試驗設(shè)計原理,優(yōu)化超高壓提取藍(lán)莓花色苷的工藝。試驗因素與水平設(shè)計見表1。
表1 試驗因素與水平設(shè)計Table 1 The factors and levels design of experiment
采用響應(yīng)面分析法得到二次回歸模型,見公式(1):
(1)
式中:b0為截距回歸系數(shù);bi為線性回歸系數(shù);bii為二次項回歸系數(shù);bij為交互項回歸系數(shù);Xi,Xj為自變量。
1.3.5 藍(lán)莓花色苷含量的測定
參考于澤源等[13]的方法測定不同提取條件下藍(lán)莓中花色苷含量,具體操作:從1.3.2所得的樣品溶液中取出1 mL,然后分別加入9 mL pH 1.0 KCl緩沖液和9 mL pH 4.5 CH3COONa緩沖液,避光靜置1 h,分別在520 nm和700 nm處測定其吸光值,依據(jù)公式(2)計算藍(lán)莓中花色苷含量。
(2)
式中:c為藍(lán)莓中花色苷含量,mg/g;A為樣品的吸光值;DF為稀釋倍數(shù);V為樣品提取液的體積,mL;Mw為矢車菊素-3-葡萄糖苷的相對分子質(zhì)量(449.2);ε為矢車菊素-3-葡萄糖苷的消光系數(shù)(26900);l為光程,1 cm;m為藍(lán)莓果粉的質(zhì)量,g。
1.3.6 藍(lán)莓花色苷提取物抗腫瘤活性
1.3.6.1 HepG2細(xì)胞的培養(yǎng)
將HepG2細(xì)胞培養(yǎng)于DMEM培養(yǎng)基(含體積分?jǐn)?shù)10% FBS、1%青霉素和鏈霉素)中,培養(yǎng)條件為37 ℃、5% CO2恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
1.3.6.2 MTT法測定藍(lán)莓花色苷提取物對HepG2細(xì)胞存活率的影響
采用MTT法測定不同濃度的藍(lán)莓花色苷提取物(在上述最優(yōu)工藝條件下獲得的花色苷提取物)對HepG2細(xì)胞存活率的影響。操作方法同文獻(xiàn)[3],并依據(jù)公式(3)計算細(xì)胞存活率。
細(xì)胞存活率(%)=As/Ac×100。
(3)
式中:As為試驗組的吸光度值;Ac為空白對照組的吸光度值。
1.3.6.3 藍(lán)莓花色苷提取物對HepG2細(xì)胞形態(tài)學(xué)的影響
調(diào)整HepG2細(xì)胞密度為1×106個/mL,以2 mL/皿接種于玻璃底小皿中,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)過夜,換為終質(zhì)量濃度為0,50,100,200 μg/mL藍(lán)莓花色苷提取物的DMEM培養(yǎng)液,37 ℃、5% CO2繼續(xù)培養(yǎng)48 h,在倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)。
1.3.6.4 藍(lán)莓花色苷提取物對HepG2細(xì)胞凋亡的影響
取對數(shù)期HepG2細(xì)胞密度調(diào)整為2.5×105個/孔,接種于60 mm細(xì)胞培養(yǎng)板上,培養(yǎng)24 h,用不同濃度(0,50,100,200 μg/mL)的藍(lán)莓花色苷提取物干預(yù)48 h,移除培養(yǎng)基,用胰蛋白酶消化,收集細(xì)胞,用PBS洗2次,然后采用Annexin V-FITC/PI雙標(biāo)記染色法流式檢測細(xì)胞凋亡。
1.3.7 數(shù)據(jù)處理
每組試驗重復(fù)3次,結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示;采用SPSS 22.0軟件對每組數(shù)據(jù)進行方差分析(ANOVA),組間差異比較用Duncan檢測,P<0.05表示組間具有顯著性差異;采用Origin 9.0進行繪圖,采用Design Expert ver8.0軟件設(shè)計組合試驗。
超高壓提取藍(lán)莓花色苷的單因素試驗結(jié)果見圖1。
圖1 提取壓力(A)、保壓時間(B)、乙醇體積分?jǐn)?shù)(C)和料液比(D)對藍(lán)莓花色苷含量的影響Fig.1 Effects of extraction pressure (A), pressure-holding time (B), ethanol volume fraction (C) and solid-to-liquid ratio (D) on the yield of anthocyanins from blueberry注:在誤差線上的不同字母表示差異顯著(P<0.05),相同字母表示差異不顯著(P>0.05)。
由圖1中A可知,當(dāng)提取壓力低于200 MPa時,藍(lán)莓花色苷含量隨著提取壓力的增加呈現(xiàn)顯著增加趨勢(P<0.05),當(dāng)提取壓力為200 MPa時,花色苷含量達(dá)到最大值(4.61±0.05) mg/g。其原因是高壓破壞了離子鍵、疏水鍵和細(xì)胞膜上的結(jié)構(gòu)蛋白,導(dǎo)致細(xì)胞膜通透性增加,傳質(zhì)阻力降低[14],有利于藍(lán)莓細(xì)胞中的花色苷擴散到周圍溶劑中;此外,升高的壓力能提高花色苷的傳質(zhì)系數(shù)和溶解度,故花色苷提取率增加。但當(dāng)壓力超過200 MPa時,繼續(xù)增加提取壓力,花色苷含量呈現(xiàn)顯著降低的趨勢(P<0.05)。其原因可能是過高的提取壓力破壞了花色苷結(jié)構(gòu),降低了花色苷含量,同時過高的壓力還會給提取設(shè)備增加負(fù)擔(dān)[15],綜合考慮,選擇提取壓力150,200,250 MPa作為后續(xù)組合試驗的因素水平。
由圖1中B可知,當(dāng)保壓時間在2~6 min時,隨著保壓時間延長,花色苷含量呈顯著增加趨勢(P<0.05),當(dāng)保壓時間在6 min時,花色苷含量達(dá)到最大值(4.47±0.07) mg/g。其原因是在萃取初期藍(lán)莓細(xì)胞內(nèi)外的濃度梯度較大,濃度梯度作為傳質(zhì)的驅(qū)動力,較大的濃度梯度有利于細(xì)胞內(nèi)的花色苷大量擴散到溶劑中,使得花色苷含量顯著增加。當(dāng)保壓時間超過6 min時,花色苷含量隨著保壓時間延長無顯著變化(P>0.05)。其原因是隨著保壓時間延長,內(nèi)外濃度梯度趨近于零,故花色苷含量無顯著變化。綜合考慮,選擇保壓時間4,6,8 min作為后續(xù)組合試驗的因素水平。
由圖1中C可知,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)在40%~60%時,隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)增加,花色苷含量顯著增加(P<0.05)。當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)在60%時,花色苷含量達(dá)到最大值(4.71±0.06) mg/g。其原因是60%乙醇極性與花色苷極性相似,依據(jù)相似相容原理,此時花色苷溶解度最大,花色苷含量最大[16]。當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)超過60%時,過高的乙醇使雜質(zhì)的溶出量增加,從而降低了花色苷的溶出量,進而導(dǎo)致花色苷含量降低;此外,高體積分?jǐn)?shù)的乙醇會破壞花色苷的結(jié)構(gòu)[17]。故選擇乙醇體積分?jǐn)?shù)50%、60%、70%作為后續(xù)組合試驗的因素水平。
由圖1中D可知,花色苷含量隨著料液比增加呈現(xiàn)先顯著增加后顯著降低的趨勢(P<0.05)。其原因是在萃取初期,隨著料液比增加,固液界面濃度梯度較大,有利于花色苷擴散到溶液中。隨后如果繼續(xù)增加料液比,過多的溶劑會引起雜質(zhì)的溶解,從而降低花色苷的溶解度[18]。另外,過多的溶劑會增加對花色苷的分離純化難度。因此綜合考慮,選擇料液比1∶20、1∶30、1∶40 (g/mL)作為后續(xù)組合試驗的因素水平。
2.2.1 模型建立與顯著性檢驗
采用響應(yīng)面優(yōu)化超高壓提取藍(lán)莓花色苷工藝參數(shù),所得的試驗方案和結(jié)果見表2。以花色苷含量(Y)為響應(yīng)值,對試驗所得的數(shù)據(jù)進行多元回歸擬合分析,得到藍(lán)莓花色苷含量對提取壓力(X1)、保壓時間(X2)、乙醇體積分?jǐn)?shù)(X3)和料液比(X4)的回歸方程,見公式(4)。
表2 響應(yīng)面法試驗設(shè)計及結(jié)果Table 2 Experimental design and results of response surface methodology
續(xù) 表
Y=4.80+0.036X1-0.043X2+0.10X3-0.14X4+0.022X1X2+0.025X1X3+0.040X1X4-0.028X2X3+0.035X2X4-0.018X3X4-0.58X12-0.32X22-0.12X32-0.22X42。
(4)
對回歸方程系數(shù)進行顯著性檢驗,結(jié)果見表3。
表3 超高壓提取藍(lán)莓花色苷回歸模型系數(shù)的顯著性檢驗報告Table 3 Significance test report of regression model coefficients of ultra-high pressure extraction of anthocyanins from blueberry
由表3可知,所得的回歸模型決定系數(shù)R2=0.9984,F(xiàn)值為642.13,P值小于0.0001,表明所得模型極顯著。該模型的失擬項P值=0.8842>0.05。上述數(shù)據(jù)分析表明該模型對試驗數(shù)據(jù)擬合充分,可靠性較好。利用該模型可較好地描述各試驗因素與響應(yīng)值的真實關(guān)系,并且利用該模型可以優(yōu)化超高壓提取藍(lán)莓花色苷的最佳工藝條件。
依據(jù)F值大小可以判斷各試驗因素對花色苷含量影響的程度,F(xiàn)值越大,表明該試驗因素對提取效果的影響越顯著。由表3可知,F(xiàn)(X1)=46.68、F(X2)=68.26、F(X3)=363.51和F(X4)=738.14,即各試驗因素對藍(lán)莓花色苷含量的影響大小為料液比>乙醇體積分?jǐn)?shù)>保壓時間>提取壓力,且4個因素對花色苷含量的影響均達(dá)到極顯著的水平。
采用響應(yīng)面的坡度陡峭程度來衡量試驗因素交互作用對響應(yīng)值的影響強弱,響應(yīng)曲面相對平緩,說明該因素交互作用對花色苷含量影響作用較小。各試驗因素交互作用對藍(lán)莓花色苷含量的影響見圖2。
圖2 各試驗因素對藍(lán)莓花色苷含量的交互影響Fig.2 Interaction effects of experimental factors on the yield of anthocyanins from blueberry
由表3中方差分析的結(jié)果可知,X1X4、X2X4和X2X3極顯著影響花色苷含量(P<0.01);X1X3和X1X2顯著影響花色苷含量(P<0.05);X3X4對花色苷含量的影響不顯著(P>0.05)。由圖2中A,B和C可知,隨著提取壓力增加,花色苷含量呈先顯著增加后顯著降低的趨勢,當(dāng)提取壓力在175~225 MPa范圍內(nèi),花色苷含量取得極大值。由圖2中A,D和E可知,花色苷含量隨著保壓時間的延長呈現(xiàn)先顯著增加后顯著降低的趨勢,當(dāng)保壓時間在5~7 min范圍內(nèi),花色苷含量取得極大值。由圖2中B,D和F可知,乙醇體積分?jǐn)?shù)對花色苷含量的變化趨勢較平緩。由圖2中C,E和F可知,隨著料液比增加,花色苷含量呈現(xiàn)先顯著增加后顯著降低的趨勢,當(dāng)料液比在1∶25~1∶35(g/mL)范圍內(nèi),花色苷含量取得極大值。綜上可知,各因素交互作用對藍(lán)莓花色苷含量影響順序為X1X4>X2X4>X2X3>X1X3>X1X2>X3X4。
2.2.2 驗證試驗
通過Design Expert軟件對公式(4)的回歸方程進行分析,得到最佳提取條件:提取壓力187.28 MPa、保壓時間5.91 min、乙醇體積分?jǐn)?shù)56.75%、料液比1∶29.35 (g/mL),花色苷含量的理論值為5.02 mg/g,為驗證該方法的可靠性,考慮實際情況,將最佳工藝參數(shù)修正為:提取壓力187 MPa、保壓時間6 min、乙醇體積分?jǐn)?shù)57%、料液比1∶29 (g/mL),在此條件下進行超高壓提取藍(lán)莓花色苷的驗證試驗,所得花色苷含量的試驗值為(5.16±0.12) mg/g,理論值和試驗值相對誤差為2.79%。說明模型可以較好地模擬和預(yù)測超高壓提取藍(lán)莓花色苷含量,也進一步證明了采用響應(yīng)面法優(yōu)化超高壓提取藍(lán)莓花色苷提取參數(shù)的可行性。
不同濃度藍(lán)莓花色苷提取物對HepG2細(xì)胞存活率的影響結(jié)果見圖3。
圖3 藍(lán)莓花色苷提取物對HepG2細(xì)胞生長抑制作用的劑量效應(yīng)Fig.3 Dose effect of blueberry anthocyanin extracts on inhibition of HepG2 cells’ growth注:不同小寫、大寫字母分別表示不同樣品間、不同劑量差異顯著(P<0.05)。
由圖3可知,在24,48,72 h后,HepG2細(xì)胞存活率均隨著藍(lán)莓花色苷提取物濃度增加呈現(xiàn)顯著降低的趨勢(P<0.05)。當(dāng)藍(lán)莓花色苷提取物濃度在50 μg/mL時,處理24,48,72 h后,HepG2細(xì)胞存活率分別為(95.35±1.59)%、(90.18±2.36)%、(88.83±3.04)%;當(dāng)藍(lán)莓花色苷提取物濃度在200 μg/mL時,處理24,48,72 h后,HepG2細(xì)胞存活率分別為(65.27±1.62)%、(48.19±1.96)%、(47.18±2.34)%,在24,48,72 h后,后者較前者HepG2細(xì)胞存活率分別降低了31.55%、46.56%、46.89%。
結(jié)果表明,藍(lán)莓花色苷提取物能顯著抑制HepG2細(xì)胞的增殖,且濃度越大,抑制效果越顯著,表現(xiàn)出顯著的劑量效應(yīng)。當(dāng)藍(lán)莓花色苷提取物濃度一定時,24 h后HepG2細(xì)胞存活率顯著高于48 h和72 h(P<0.05),而48 h和72 h后,HepG2細(xì)胞存活率無顯著差別(P>0.05),因此,后續(xù)試驗細(xì)胞培養(yǎng)選擇48 h。
不同質(zhì)量濃度藍(lán)莓花色苷提取物(0,50,100,200 μg/mL)作用48 h后HepG2細(xì)胞形態(tài)變化結(jié)果見圖4。
圖4 不同質(zhì)量濃度的藍(lán)莓花色苷提取物對HepG2細(xì)胞形態(tài)學(xué)的影響Fig.4 Effects of blueberry anthocyanin extracts with different concentration on morphology of HepG2 cells
由圖4可知,當(dāng)藍(lán)莓花色苷提取物濃度為0 μg/mL時,細(xì)胞完全貼壁,細(xì)胞緊密相連,細(xì)胞數(shù)目較多。當(dāng)采用藍(lán)莓花色苷提取物干預(yù)HepG2細(xì)胞時,隨著藍(lán)莓花色苷提取物濃度增加,HepG2細(xì)胞數(shù)目顯著降低,且細(xì)胞體積減小,大多數(shù)細(xì)胞由開始的菱形變成橢圓形,同時伴隨凋亡小體的產(chǎn)生。
不同質(zhì)量濃度藍(lán)莓花色苷提取物(0,50,100,200 μg/mL)干預(yù)HepG2細(xì)胞48 h后癌細(xì)胞凋亡情況見圖5。
圖5 藍(lán)莓花色苷提取物對HepG2細(xì)胞凋亡的影響Fig.5 Effect of blueberry anthocyanin extracts on apoptosis of HepG2 cells注:A為流式檢測藍(lán)莓花色苷提取物處理HepG2細(xì)胞48 h凋亡;B為流式檢測的統(tǒng)計結(jié)果分析。
目前,大量的研究已經(jīng)證實藍(lán)莓花色苷提取物具有顯著的抗氧化能力[19],同時又能顯著抑制癌細(xì)胞的增殖,加速癌細(xì)胞的凋亡[20]。因此,本試驗在MTT的基礎(chǔ)上,進一步探究藍(lán)莓花色苷提取物對HepG2細(xì)胞凋亡的影響。由圖5可知,當(dāng)藍(lán)莓花色苷提取物濃度為50,100,200 μg/mL時,HepG2細(xì)胞凋亡率分別為(5.76±0.43)%、(28.60±0.81)%和(40.40±1.27)%。結(jié)果表明,藍(lán)莓花色苷提取物能顯著提高HepG2細(xì)胞凋亡率,且藍(lán)莓花色苷提取物濃度越大,HepG2細(xì)胞凋亡率越高,呈劑量效應(yīng)。
采用響應(yīng)面法對藍(lán)莓花色苷超高壓提取工藝進行優(yōu)化,確立最優(yōu)的工藝參數(shù)組合為:提取壓力187 MPa、保壓時間6 min、乙醇體積分?jǐn)?shù)57%、料液比1∶29 (g/mL),在此條件下花色苷含量為(5.16±0.12) mg/g。體外抗腫瘤活性表明藍(lán)莓花色苷提取物能顯著抑制HepG2細(xì)胞增殖,加速其凋亡。本研究結(jié)果為天然色素的快速提取提供了一種有效的手段,同時為開發(fā)功能性的食品添加劑提供了理論基礎(chǔ)。