孫勁毅,盧彥軒,惠永海,張世奇,*

(1.嶺南師范學(xué)院化學(xué)化工學(xué)院,廣東湛江 524048;2.廣東省辣木資源開發(fā)與利用工程技術(shù)研究中心,廣東湛江 524048)

辣木(MoringaoleiferaLam),又稱鼓槌樹、辣根樹、奇跡樹、生命之樹等,原產(chǎn)于非洲和印度的熱帶、亞熱帶等地區(qū)[1-2],經(jīng)引種后,目前在我國(guó)的廣東、廣西、海南、云南及臺(tái)灣等省均有種植。辣木樹富含蛋白質(zhì)、氨基酸、礦物質(zhì)等營(yíng)養(yǎng)成分,其根、葉、花、綠莢和種子等均可食用[3],具有較高的營(yíng)養(yǎng)和藥用價(jià)值[4]。研究表明,辣木葉是目前已知最好的植物蛋白來源之一,其蛋白質(zhì)的含量為10.74%～30.29%[5-7]。由于辣木在熱帶和亞熱帶地區(qū)被廣泛種植,因此一些發(fā)展中國(guó)家將辣木葉作為食品用以解決營(yíng)養(yǎng)不良和糧食安全等問題[8-9]。辣木葉中的VC、VA、鈣、鉀、鐵和蛋白質(zhì)的含量均高于橙子、胡蘿卜、牛奶、香蕉和酸奶等食品[10-11],且已被用于改善嬰兒、孕婦、哺乳母親的營(yíng)養(yǎng)不良和增加哺乳期母親的母乳量等方面[12]。此外,辣木葉作為家畜飼料中蛋白質(zhì)、抗生素和抗氧化劑等的優(yōu)質(zhì)來源,能夠改善動(dòng)物生長(zhǎng)性能、肉類氧化穩(wěn)定性和感官質(zhì)量[13-15],具有降低肉制品加工和冷藏后微生物生長(zhǎng)的速度等作用[16]。

辣木葉蛋白作為優(yōu)質(zhì)的植物源蛋白,用何種方法提取這一問題被眾多研究者所關(guān)注。植物蛋白的提取方法主要有等電點(diǎn)沉淀法[17]、鹽析法[18]、酶提法[19]等,但上述方法均存在一定的弊端,諸如酸堿的使用,有機(jī)溶劑的大量浪費(fèi)以及工藝的繁瑣等問題,缺少工藝簡(jiǎn)單、環(huán)境友好型的提取方法。針對(duì)上述問題,本研究采用泡沫法提取辣木葉蛋白。泡沫法目前主要應(yīng)用于廢水處理,在植物蛋白分離中的研究相對(duì)較少,其原理是利用溶液中不同物質(zhì)表面活性差異對(duì)物質(zhì)進(jìn)行分離,表面活性強(qiáng)的能夠吸附在氣液相界面處形成泡沫,而表面活性弱的則停留在溶液中,使泡沫和溶液分離,然后達(dá)到分離提取的目的[20]。辣木葉蛋白作為天然的高分子表面活性劑,其具有優(yōu)良的表面活性能力,因此可以通過攪打、鼓氣等方式使蛋白質(zhì)吸附到氣液相交界處進(jìn)行定向排列,產(chǎn)生大量泡沫,將泡沫收集起來可得到蛋白質(zhì)溶液[21]。泡沫法運(yùn)行成本低,工藝簡(jiǎn)單,在分離過程中不需要大量的有機(jī)溶劑,能夠有效降低對(duì)環(huán)境的污染,提取后剩余的水體液及殘?jiān)钥商砑釉诩倚箫暳现?因此可用于工業(yè)化生產(chǎn)[22]。

本研究以辣木葉為原料,通過單因素試驗(yàn)研究氯化鈉濃度、料液比、提取溫度對(duì)泡沫法提取辣木葉蛋白工藝的影響,在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,利用響應(yīng)面法優(yōu)化提取工藝并確定最佳工藝,旨在為辣木蛋白資源深度開發(fā)與利用提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

辣木葉 采摘于湛江市佳池塘辣木種植基地;氯化鈉、85%磷酸、無水乙醇、考馬斯亮藍(lán)G-250、硫酸銅、硫酸鉀、硫酸 分析純,國(guó)藥集團(tuán);牛血清蛋白(標(biāo)準(zhǔn)品) 北京鼎國(guó)昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司。

SHZ-D3循環(huán)水式多用真空泵 鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;JA3002電子分析天平 上海蒲春計(jì)量?jī)x器有限公司;TGL16M醫(yī)用離心機(jī) 鹽城市凱特實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;TU-1810DASPC紫外可見光光度計(jì) 北京普析通用有限責(zé)任公司;MJ-BL25B3攪拌機(jī) 廣東美的生活電器制造有限公司;DDQ-B01K1打蛋機(jī) 廣東小熊電器有限公司;HH-2數(shù)顯恒溫水浴鍋 常州榮華儀器制造有限公司;KDN-103F自動(dòng)定氮儀 上海纖檢儀器有限公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 辣木葉蛋白的提取 參考文獻(xiàn)[23]的方法并加以改進(jìn),將新采摘的辣木葉洗凈后自然晾干,粉碎過100目篩,精確稱取5.000 g辣木葉粉,按實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)條件加入一定濃度和一定體積的氯化鈉溶液,在一定溫度下浸泡2 h,6000 r/min離心10 min,棄去殘?jiān)?按上述條件重復(fù)離心兩次,收集上清液,在與浸泡溫度相同的溫度下用打蛋器攪打起泡,收集泡沫至無泡沫產(chǎn)生,靜置消泡后得到辣木葉蛋白提取液。

1.2.2 單因素試驗(yàn) 以辣木葉蛋白為考察指標(biāo),按照1.2.1的提取方法分別研究氯化鈉濃度、料液比、提取溫度對(duì)辣木葉蛋白得率的影響。

固定料液比為1∶80 g/mL,提取溫度為35 ℃,其余條件與1.2.1相同,研究不同濃度氯化鈉溶液(0.3%、0.5%、0.7%、0.9%、1.1%)對(duì)辣木葉蛋白得率的影響。

固定氯化鈉濃度為0.7%,提取溫度為35 ℃,其余條件與1.2.1相同,研究不同料液比(1∶20、1∶40、1∶60、1∶80、1∶100 g/mL)對(duì)辣木葉蛋白得率的影響。

固定料液比為1∶80 g/mL,氯化鈉濃度為0.7%,其余條件與1.2.1相同,研究不同提取溫度(25、35、45、55、65 ℃)對(duì)辣木葉蛋白得率的影響。

1.2.3 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì) 在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,根據(jù)Box-Benhnken設(shè)計(jì)原理,以氯化鈉濃度、液料比、提取溫度為響應(yīng)因素,辣木葉蛋白得率為響應(yīng)值,設(shè)計(jì)響應(yīng)面優(yōu)化試驗(yàn)。響應(yīng)面試驗(yàn)的各因素水平見表1。

表1 Box-Behnken設(shè)計(jì)試驗(yàn)因素水平Table 1 Factors and levels of Box-Behnken design experimental

1.2.4 蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作 分別吸取100 μg/mL 0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mL的牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)液,加蒸餾水至1.0 mL,再加入5.0 mL 0.1 mg/mL考馬斯亮藍(lán)G-250溶液,混合均勻后避光反應(yīng)5 min;在595 nm的波長(zhǎng)處測(cè)定各濃度標(biāo)準(zhǔn)液的吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到回歸方程為Y=0.008X+0.0259,其中Y為吸光度值,X為蛋白質(zhì)的質(zhì)量濃度(μg/mL),R2=0.9998,說明該方程在蛋白含量為10～60 μg/mL之間的線性關(guān)系良好。

1.2.5 辣木葉蛋白得率的測(cè)定 測(cè)量辣木葉提取液體積,采用1.2.2的方法測(cè)定提取液中蛋白的吸光度,并根據(jù)回歸方程計(jì)算提取液中蛋白質(zhì)的質(zhì)量濃度。辣木蛋白葉的得率按照下式計(jì)算:

式(1)

式(1)中,V為消泡后測(cè)得的蛋白質(zhì)提取液的體積,mL;c為提取液中辣木蛋白的質(zhì)量濃度,g/mL;M為使用的辣木葉干粉的質(zhì)量,g。

1.2.6 辣木葉蛋白粉蛋白質(zhì)含量的測(cè)定 將最佳工藝得到的辣木葉蛋白提取液冷凍干燥后得到辣木葉蛋白粉,為了更好的測(cè)定蛋白粉中蛋白質(zhì)的含量,按照國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)GB 5009.5-2016[24]中的凱氏定氮法對(duì)蛋白粉進(jìn)行測(cè)定。

1.3 數(shù)據(jù)處理

所有實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,實(shí)驗(yàn)結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,用Origin 9.0、SPSS 25.0和Design-Expert 8.06對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理和分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果

2.1.1 氯化鈉濃度對(duì)辣木葉蛋白得率的影響 由圖1可知,當(dāng)氯化鈉濃度為0.9%時(shí),辣木葉蛋白的得率最大。隨著氯化鈉濃度的增加,辣木葉蛋白的得率先升高后下降。這是由于當(dāng)氯化鈉濃度的增加,蛋白質(zhì)表面電荷增多,增加了蛋白質(zhì)在水中的溶解度,因此得率增加,當(dāng)氯化鈉濃度繼續(xù)增加時(shí),蛋白質(zhì)表面的雙電層和水化層遭到破壞導(dǎo)致蛋白質(zhì)在水中的溶解性變差,導(dǎo)致蛋白質(zhì)的得率下降[25]。因此選擇氯化鈉濃度為0.7%、0.9%、1.1%進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。

圖1 氯化鈉濃度對(duì)辣木葉蛋白得率的影響Fig.1 Effect of NaCl concentration on yield ofMoringa oleifera leaf protein注:不同字母表示差異顯著P<0.05,圖2、圖3同。

2.1.2 料液比對(duì)辣木葉蛋白得率的影響 料液比對(duì)辣木葉蛋白質(zhì)得率的影響如圖2所示。當(dāng)料液比為1∶60 g/mL時(shí),辣木葉蛋白的得率最大。隨著提取液體積的增加,辣木葉蛋白的得率呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢(shì)。這可能是因?yàn)楫?dāng)提取液較少時(shí),辣木葉中的蛋白不能完全溶解在提取液中,導(dǎo)致辣木葉蛋白的得率降低;當(dāng)料液比過大時(shí),提取液中的蛋白質(zhì)濃度太低,在起泡過程中產(chǎn)生的泡沫穩(wěn)定性差,不利于泡沫收集,因此蛋白質(zhì)得率也會(huì)降低[26]。因此選擇料液比為1∶40、1∶60、1∶80 g/mL進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。

圖2 料液比對(duì)辣木葉蛋白得率的影響Fig.2 Effect of material-liquid ratioon yield of Moringa oleifera leaf protein

2.1.3 提取溫度對(duì)辣木葉蛋白得率的影響 由圖3可知,辣木葉蛋白的得率隨著提取溫度的增加呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),當(dāng)溫度達(dá)到35 ℃時(shí),蛋白質(zhì)的得率最大。隨著溫度繼續(xù)升高,蛋白質(zhì)的得率快速下降。出現(xiàn)這種現(xiàn)象是由于在溫度較低時(shí),溫度升高有利于蛋白質(zhì)的溶解,當(dāng)溫度過高時(shí),蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)被破壞,因此得率降低[27]。因此選擇提取溫度為25、35、45 ℃進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。

圖3 提取溫度對(duì)辣木葉蛋白得率的影響Fig.3 Effect of temperature on yield ofMoringa oleifera leaf protein

2.2 泡沫法提取辣木葉蛋白響應(yīng)面優(yōu)化結(jié)果

2.2.1 回歸模型的建立與顯著性分析 以單因素試驗(yàn)為基礎(chǔ),設(shè)計(jì)響應(yīng)面試驗(yàn)優(yōu)化泡沫法提取辣木葉蛋白工藝,結(jié)果見表2。

表2 響應(yīng)面設(shè)計(jì)方案和結(jié)果Table 2 Response surface designarrangement and experimental results

運(yùn)用Design-Expert軟件進(jìn)行擬合,得到的回歸模型的方程為Y=13.13+0.66A-0.22B-0.97C-0.31AB-0.083AC-0.39BC-3.05A2-0.46B2-1.95C2。

由表3可知一次項(xiàng)A(氯化鈉濃度)、C(提取溫度)對(duì)辣木葉蛋白質(zhì)得率有極顯著的影響(P<0.01),B(料液比)的影響效果顯著(P<0.05);二次項(xiàng)A2、C2的影響極顯著(P<0.01),B2模型的影響顯著(P<0.05);交互項(xiàng)AB、BC影響顯著(P<0.05)。模型P<0.0001,說明該模型是極顯著的,模型的失擬項(xiàng)P>0.05,表明正常誤差在回歸方程與實(shí)際擬合所占比例小,方程擬合性強(qiáng)。相關(guān)系數(shù)R2=0.9954,模型推算值與實(shí)際值接近,模型擬合度高,試驗(yàn)誤差小,可以對(duì)試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行準(zhǔn)確預(yù)測(cè),該模型在統(tǒng)計(jì)學(xué)上具備現(xiàn)實(shí)指導(dǎo)價(jià)值。依據(jù)F值的大小判斷A、B、C三個(gè)因素對(duì)辣木葉蛋白質(zhì)得率的影響,由大到小的順序依次為:C(提取溫度)>A(氯化鈉濃度)>B(料液比)。

表3 回歸模型顯著性結(jié)果Table 3 Significance test for regression model

2.2.2 響應(yīng)面圖分析 根據(jù)響應(yīng)面分析結(jié)果,做出各因素之間的響應(yīng)面圖和等高線圖如圖4所示。由圖4可知,響應(yīng)值存在最大值,氯化鈉濃度與料液比、料液比與提取溫度的響應(yīng)面較陡且等高線呈橢圓形,所以交互作用顯著,氯化鈉濃度與提取溫度的響應(yīng)面相對(duì)平緩,等高線呈圓形,交互效果不顯著。

圖4 各因素之間交互作用的響應(yīng)面和等高線圖Fig.4 Response surface and counter plots for the effects of experimental factors

2.2.3 驗(yàn)證試驗(yàn) 對(duì)回歸模型設(shè)數(shù)據(jù)結(jié)果進(jìn)行分析,得到泡沫法提取辣木葉蛋白的最佳提取工藝條件為:氯化鈉濃度0.92%、料液比1∶56.35 g/mL、提取溫度32.69 ℃,預(yù)測(cè)辣木葉蛋白得率為13.52%。為了驗(yàn)證該方法的可靠性,同時(shí)考慮實(shí)際操作情況,將泡沫法提取辣木葉蛋白的工藝修正為:氯化鈉濃度0.92%、料液比1∶56 g/mL、提取溫度33 ℃,測(cè)得辣木葉蛋白得率為13.41%±0.35%,與理論預(yù)測(cè)值相差0.83%。同其他方法提取辣木葉蛋白相比,熊瑤[28]采用堿提法和微波提取法提取辣木葉蛋白,蛋白質(zhì)的得率分別為10.7%、10.35%,雖然堿提法和微波提取法的提取時(shí)間較短,但由于堿和微波對(duì)蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)產(chǎn)生不同程度的破壞導(dǎo)致兩種方法的得率低于泡沫法;黃秋偉等[29]采用超聲輔助鹽提法提取辣木葉蛋白,其得率為10.28%,該法中氯化鈉溶液的最佳濃度為0.7%,提取時(shí)間僅為30 min,但所選的最佳提取溫度達(dá)60 ℃,同時(shí)使用具有較高能量的超聲波輔助提取,在高溫和超聲波雙重作用下蛋白質(zhì)極易分解變性,這可能是該法得率低于泡沫法的主要原因。將在此條件下所得辣木葉蛋白提取液冷凍干燥后得到辣木葉蛋白粉,經(jīng)凱氏定氮法測(cè)定可知其中蛋白質(zhì)的含量為53.94%±0.56%。

3 結(jié)論

以氯化鈉濃度、料液比、提取溫度為變量,辣木葉蛋白為得率為指標(biāo),通過單因素和響應(yīng)面法對(duì)泡沫法提取辣木葉蛋白工藝進(jìn)行優(yōu)化。結(jié)果表明,氯化鈉濃度和提取溫度對(duì)辣木葉蛋白得率的影響極顯著(P<0.01),料液比的影響顯著(P<0.05),各因素對(duì)辣木葉蛋白得率影響的主次順序?yàn)樘崛囟?氯化鈉濃度>料液比。氯化鈉濃度與料液比、料液比與提取溫度交互作用顯著(P<0.05)。經(jīng)過優(yōu)化后得到的泡沫法提取辣木葉蛋白的最佳提取工藝條件為鹽濃度0.92%、料液比1∶56 g/mL、提取溫度33 ℃,此條件下最大得率可達(dá)到13.41%±0.35%,所得辣木葉蛋白粉的蛋白含量為53.94%±0.56%。本研究所采用的泡沫法能耗低、污染少且得率較高,能夠有效實(shí)現(xiàn)辣木葉蛋白的初步分離,為辣木資源的進(jìn)一步開發(fā)提供理論依據(jù)。