李秀玲,劉寶鎖,劉 波,張 楠,朱克誠(chéng),郭 梁,郭華陽,江世貴,張殿昌
( 1.中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)研究院 南海水產(chǎn)研究所,農(nóng)業(yè)農(nóng)村部南海漁業(yè)資源開發(fā)利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 廣東 廣州 510300; 2.上海海洋大學(xué) 水產(chǎn)與生命學(xué)院,上海 201306; 3.廣東省海洋生物種業(yè)工程技術(shù)研究中心,廣東 廣州 510300 )
卵形鯧鲹(Trachinotusovatus)是一種肉食性魚類,主要捕食浮游動(dòng)物、小型甲殼類、貝殼類和魚類等[1]。魚肉質(zhì)鮮美,生長(zhǎng)速度快,營(yíng)養(yǎng)價(jià)值高,為優(yōu)質(zhì)的海水食用魚類[2]。近年來,在中國(guó)和東南亞的一些國(guó)家,例如新加坡和馬來西亞等國(guó)家對(duì)卵形鯧鲹的商業(yè)化養(yǎng)殖不斷增加[3-4]。
腸道內(nèi)棲息著數(shù)以萬計(jì)的微生物,這些微生物有助于宿主的生長(zhǎng)、消化、營(yíng)養(yǎng)吸收、抵抗疾病和免疫調(diào)節(jié)等[5-6]。脂肪是三大營(yíng)養(yǎng)素之一,在提供能量、必需脂肪酸和磷脂等方面發(fā)揮著重要作用[7]。許多研究表明,脂肪源可以影響腸道微生物的組成和多樣性,而微生物也會(huì)參與脂質(zhì)代謝。在哺乳動(dòng)物中,腸道微生物參與脂質(zhì)代謝,包括膽汁酸合成[8]、能量動(dòng)態(tài)平衡[9]和脂質(zhì)存儲(chǔ)等。在凡納濱對(duì)蝦(Litopenaeusvannamei)中,飼料中的脂肪酸主要通過改變腸道微生物的分布影響其生長(zhǎng)和免疫[10]。在斑馬魚(Daniorerio)中,腸道微生物調(diào)節(jié)腸道吸收和脂肪酸的代謝[11]。目前關(guān)于不同脂肪源對(duì)腸道微生物影響的研究還比較少,考慮到脂肪源和腸道微生物的關(guān)系及對(duì)宿主的影響,因此探究不同脂肪源對(duì)卵形鯧鲹腸道菌群的影響是非常有必要的。
腸道微生物的研究大體經(jīng)歷了3個(gè)階段,培養(yǎng)依賴的方法階段,非培養(yǎng)依賴的傳統(tǒng)分子生物學(xué)方法階段和基于測(cè)序的高通量組學(xué)方法階段[12]。傳統(tǒng)培養(yǎng)的方式只能檢測(cè)到約1%~10%的微生物群落,這種方法雖然能夠快速有效地自環(huán)境樣品中提取大部分脂肪酸,但受人為因素干擾強(qiáng)烈[13],費(fèi)時(shí)費(fèi)力。高通量測(cè)序技術(shù)能夠?yàn)榭焖贉?zhǔn)確的基因組測(cè)序提供平臺(tái),大大降低了成本、時(shí)間[14],已經(jīng)成為微生物多樣性研究的主要方法[15-16]。本研究基于16S rDNA高通量測(cè)序技術(shù),旨在探討不同脂肪源對(duì)卵形鯧鲹腸道微生物菌群的影響,以期能夠?yàn)槁研析K鲹確定合適的脂肪源和健康養(yǎng)殖提供理論基礎(chǔ)。
共配制8種等氮等能的飼料,除脂肪源不同其他飼料原料和用量都相同,8種脂肪源分別為魚油、磷蝦油、豆油、玉米油、1∶1魚油—豆油、1∶1魚油—玉米油、1∶1磷蝦油—豆油和1∶1磷蝦油—玉米油。飼料配方見表1,試驗(yàn)飼料脂肪酸組成見表2。所有飼料原料過40目篩,原料混勻后依次加入脂肪源和水,經(jīng)過制粒機(jī)(華南理工大學(xué))制成2.5 mm的沉性飼料顆粒,密封于4 ℃?zhèn)溆谩?/p>
640尾規(guī)格均一、體質(zhì)健康的卵形鯧鲹[體質(zhì)量(82.85±2.36) g]采自中國(guó)南海水產(chǎn)研究所海南熱帶水產(chǎn)研究開發(fā)中心,隨機(jī)放入32個(gè)1.0 m×1.0 m×1.5 m網(wǎng)箱中,每個(gè)網(wǎng)箱20尾魚,隨機(jī)分成8組,每組4個(gè)平行,分別投喂8組試驗(yàn)飼料。飼養(yǎng)8周,日飽食投喂2次(7:00,16:00)。試驗(yàn)期間,鹽度約35,海水溫度27~31 ℃,pH 7.5~8.2,溶解氧>5 mg/L。
試驗(yàn)結(jié)束后,將魚饑餓24 h,每個(gè)網(wǎng)箱隨機(jī)挑選3尾卵形鯧鲹,在低溫下解剖取出腸道樣品,剔除脂肪組織,放入液氮后于-80 ℃保存。
按照天根DNA試劑盒[天根(北京)生化科技有限公司]說明書提取卵形鯧鲹腸道細(xì)菌總DNA,用1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA的質(zhì)量,利用Nanodrop2000檢測(cè)DNA的含量。
表1 試驗(yàn)飼料原料及營(yíng)養(yǎng)組成(干質(zhì)量) %Tab.1 Ingredients and proximate composition of the experimental diets (dry weight)
注:1.預(yù)混料(聯(lián)鯤生物科技有限公司)為每千克日糧提供維生素、微量元素和抗氧化劑: 維生素A(375 000 IU) 119.81 mg,維生素D3(77 000 IU) 1.925 mg,維生素E 3000 mg,維生素K3930 mg,維生素B1600 mg,維生素B2600 mg,葉酸 185 mg, 維生素D 7.5 mg, 肌醇 4500 mg, 鋅 1750 mg, 錳 1100 mg, 銅 410 mg, 鐵 1300 mg, 鈷 60 mg, 碘 50 mg, 硒 15 mg. Premix (Guangzhou Nutriera Biotechnology Co, Ltd) provides vitamins, trace elements and antioxidants per kg diet: vitamin A (375 000 IU) 119.81 mg, vitamin D3(77 000 IU) 1.925 mg, vitamin E 3000 mg, vitamin K3930 mg, vitamin B1600 mg, vitamin B2600 mg, folic acid 185 mg, vitamin D 7.5 mg, inositol 4500 mg, zinc 1750 mg, manganese 1100 mg, copper 410 mg, Fe 1300 mg,Co 60 mg, I 500 mg, and Se 15 mg.
2.營(yíng)養(yǎng)水平為實(shí)測(cè)值. Nutritional level is measured.
表2 試驗(yàn)飼料脂肪酸組成 g/kgTab.2 Fatty acid composition of the experimental diets
用515F:5′-GTGCCAGCMGCCGCGG-3′和907R:5′-CCGTCAATTCMTTTRAGTTT-3′引物對(duì)細(xì)菌16S rDNA V4~V5可變區(qū)進(jìn)行PCR擴(kuò)增[17]。PCR采用PrimeSTAR HS DNA Polymerase,20 μL反應(yīng)體系:10 μL的5×PrimeSTAR Buffer (Mg2+Plus)、4 μL的dNTP Mixture (2.5 mmol/L)、0.5 μL的PrimeSTAR HS DNA Polymerase、1 μL的正向引物(5 μmol/L),1 μL的反向引物(5 μmol/L) 和10 ng 的DNA模板、ddH2O補(bǔ)足20 μL。PCR反應(yīng)條件為:98 ℃預(yù)變性1 min;98 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,循環(huán)27次;72 ℃延伸5 min。使用AxyPrepTMDNA 凝膠回收試劑盒純化PCR產(chǎn)物,在本試驗(yàn)中30 ng的PCR純化產(chǎn)物用來進(jìn)行基于illumina平臺(tái)的高通量測(cè)序。
根據(jù)Barcode序列和PCR擴(kuò)增引物序列從下機(jī)數(shù)據(jù)中拆分出各樣品數(shù)據(jù),截去Barcode序列和引物序列,對(duì)樣品的reads進(jìn)行拼接,得到的拼接序列為原始Tags數(shù)據(jù)。Raw Tags經(jīng)過濾操作,去掉低質(zhì)量、不符合長(zhǎng)度的Tag以及嵌合體,得到高質(zhì)量的Tags數(shù)據(jù)。
得到Tags數(shù)據(jù)后,一方面對(duì)每個(gè)運(yùn)算分類單元的代表序列做物種注釋,得到對(duì)應(yīng)的物種注釋信息和基于物種的豐度分布情況。另一方面,對(duì)運(yùn)算分類單元進(jìn)行豐度、Alpha多樣性分析和Beta多樣性分析,得到樣品內(nèi)物種豐富度和均勻度信息,獲得不同樣品和分組的群落結(jié)構(gòu)差異信息。
利用QIIME (v1.7.0)計(jì)算Alpha多樣性(ACE指數(shù)、chao1指數(shù)、香農(nóng)—威納指數(shù)、辛普森指數(shù))指數(shù)和Beta多樣性(主坐標(biāo)分析和主成分分析),利用R軟件(v2.15.3)繪制稀釋曲線。試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,采用SPSS 22.0對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析,若差異達(dá)到顯著水平,則采用Tukey′s進(jìn)行多重比較,顯著水平為0.05。
經(jīng)過組裝、質(zhì)量篩選和修飾后,在卵形鯧鲹腸道中共獲得1 087 662個(gè)序列,每個(gè)樣品平均獲得45 319個(gè)序列(2 998~58 918)。在所有試驗(yàn)組中,運(yùn)算分類單元稀釋曲線趨于平緩,表明測(cè)序深度已基本覆蓋到樣品中所有的物種(圖1)。
圖1 卵形鯧鲹腸道微生物稀釋曲線Fig.1 Rarefaction curve of intestinal microbiota in golden pompano T. ovatus
卵形鯧鲹腸道菌群Alpha多樣性指數(shù)見表3。Chao1和ACE指數(shù)反映群落豐富度,數(shù)值越大,表明群落的豐富度越高。香農(nóng)—威納指數(shù)和辛普森多樣性指數(shù)反映群落的多樣性,數(shù)值越大,表明群落的多樣性越高。Alpha多樣性結(jié)果顯示,磷蝦油組的ACE和Chao1指數(shù)顯著高于1∶1磷蝦油—玉米油組(P<0.05),其他組之間沒有顯著性差異(P>0.05)。香農(nóng)—威納指數(shù)在1∶1魚油—豆油組中顯著高于豆油和1∶1磷蝦油—玉米油組(P<0.05)。辛普森多樣性指數(shù)在磷蝦油、1∶1魚油—豆油和1∶1磷蝦油—豆油組中顯著高于豆油和1∶1磷蝦油—玉米油組 (P<0.05),其他組之間沒有顯著差異(P>0.05)。
表3 卵形鯧鲹腸道微生物Alpha多樣性指數(shù)Tab.3 Intestinal microbial Alpha diversity index in golden pompano T. ovatus
注:同行數(shù)據(jù)不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05).
Note: means with different letters in the same line are significant difference (P<0.05).
腸道菌群在卵形鯧鲹中的組成見圖2。在所有組中的腸道菌群中注釋到4個(gè)門水平上的菌群,包括擬桿菌門、厚壁菌門、變形菌門和軟壁菌門,變形菌門豐度最高。在魚油組、磷蝦油組、玉米油組、1∶1魚油—豆油組、1∶1磷蝦油—豆油組和1∶1磷蝦油—玉米油組組中變形菌門為優(yōu)勢(shì)菌群,在豆油組和1∶1魚油—玉米油組中軟壁菌門為優(yōu)勢(shì)菌群。
圖2 卵形鯧鲹腸道微生物在門水平上的相對(duì)豐度聚類堆疊圖Fig.2 Bacterial relative abundance in intestine of gdden powpano T. ovatus at the Phylum level
主坐標(biāo)分析是將進(jìn)化結(jié)構(gòu)中聚類相近的物種組合在一起,聚在一起的樣品是物種進(jìn)化程度方面較為類似的樣品。主成分分析是將分布較為類似的物種組合在一起,聚在一起的樣品是在物種組成方面較為類似的樣品。卵形鯧鲹腸道微生物主坐標(biāo)分析結(jié)果(圖3)表明,在卵形鯧鲹腸道中微生物沒有聚集,親緣關(guān)系較遠(yuǎn),且受脂肪源影響較大。卵形鯧鲹腸道微生物主成分分析結(jié)果(圖4)表明,不同組間距離較遠(yuǎn)脂肪源對(duì)卵形鯧鲹腸道微生物菌群結(jié)構(gòu)具有顯著影響,組間物種組成方面差異較大。
圖3 卵形鯧鲹腸道微生物主坐標(biāo)分析Fig.3 Principal co-ordinates analysis of intestinal microbiota in golden pompano T. ovatus
圖4 卵形鯧鲹腸道微生物主成分分析Fig.4 Principal component analysis of intestinal microbiota in golden pompano T. ovatus
由于腸道微生物在宿主營(yíng)養(yǎng)吸收和分解中起著重要的作用[18-19],因此腸道微生物和宿主的關(guān)系越來越受到關(guān)注。Han等[20]發(fā)現(xiàn),腸道微生物來源于環(huán)境,且受遺傳背景和食物等因素的影響?;谀c道微生物在脂肪的吸收和分解方面發(fā)揮的重要作用,本研究利用Illuniana 16S rDNA高通量測(cè)序分析不同脂肪源對(duì)卵形鯧鲹腸道菌群的影響。
本研究主要采用Alpha多樣性分析和Beta多樣性分析對(duì)卵形鯧鲹腸道微生物群落進(jìn)行分析。Alpha多樣性反映豐富度和均勻度的綜合指標(biāo),Alpha多樣性指數(shù)包括菌群豐度(Chao1、ACE指數(shù)和運(yùn)算分類單元)和菌群多樣性(香農(nóng)—威納指數(shù)和辛普森多樣性指數(shù))。試驗(yàn)結(jié)果表明,飼料中脂肪源類型能夠調(diào)節(jié)腸道微生物的多樣性和豐富度。磷蝦油含有豐富的n-3多不飽和脂肪酸,包括二十碳五烯酸和二十二碳六烯酸[21-22],并且在抗氧化、抗高血脂等方面起著關(guān)鍵作用。得益于磷蝦油產(chǎn)生的有益影響,磷蝦油組腸道中更有利于微生物的聚集;同時(shí),由于磷蝦油組中的豐富n-3多不飽和脂肪酸,腸道微生物尤其是變形菌可能更有助于對(duì)其分解利用。1∶1磷蝦油—玉米油是磷蝦油和玉米油的混合物,玉米油富含豐富的n-6和n-9多不飽和脂肪酸,磷蝦油和玉米油的混合物使得腸道內(nèi)微生物的豐富度和多樣性顯著下降,這可能說明兩者的混合物不利于腸道微生物的生存。
測(cè)序結(jié)果表明,在卵形鯧鲹腸道中主要有擬桿菌門、厚壁菌門、變形菌門和軟壁菌門4種菌群,且變形菌是優(yōu)勢(shì)菌群,這與許多研究結(jié)果是一致的[23-24]。研究發(fā)現(xiàn),變形菌在斑馬魚[25]、草魚(Ctenopharyngodonidellus)[26]和大黃魚(Pseudosciaenacrocea)[21]等魚類中是優(yōu)勢(shì)菌群,而擬桿菌門、厚壁菌門在人和小鼠腸道中是優(yōu)勢(shì)菌群。在不同研究中,不同物種的腸道微生物的組成和豐度確實(shí)存在很大差異,這可能與物種種類和環(huán)境有關(guān)。在本試驗(yàn)中,8組飼料除脂肪源種類不同外其他原料組成都是相同的,因此脂肪源種類是決定優(yōu)勢(shì)菌群的主要因素。擬桿菌的主要功能是幫助宿主降解碳水化合物(尤其是多糖)、蛋白質(zhì)和其他物質(zhì),以提高宿主的營(yíng)養(yǎng)利用率,厚壁菌有助于膳食纖維的降解,并將纖維降解為揮發(fā)性脂肪酸以供宿主利用[27]。本研究結(jié)果表明,豆油和1∶1魚油—玉米油有益于軟壁菌的生長(zhǎng),而其他脂肪源有益于變形菌的生長(zhǎng)。據(jù)報(bào)道,中國(guó)沿海地區(qū)水產(chǎn)養(yǎng)殖區(qū)水域中變形菌門為主要優(yōu)勢(shì)菌[28],這表明,卵形鯧鲹腸道微生物組成與水體微生物組成有很大的相似性。在本研究中,變形菌和軟壁菌可能與脂肪酸代謝有關(guān)。從脂肪酸組成來看,豆油和1∶1魚油—玉米油組含有中等水平的單不飽和脂肪酸,推測(cè)可能中等水平的單不飽和脂肪酸有利于軟壁菌的生長(zhǎng),而軟壁菌可能有利于其代謝。關(guān)于微生物與脂肪源種類之間的關(guān)系還需要進(jìn)一步探討。
主坐標(biāo)分析和主成分分析表明,脂肪源顯著影響腸道菌群,且不同脂肪源之間腸道菌落構(gòu)成差異顯著,表明脂肪源在調(diào)節(jié)腸道菌群中發(fā)揮著重要的作用。有研究顯示,食物來源和宿主的發(fā)育系統(tǒng)是導(dǎo)致腸道微生物菌群差異的兩個(gè)重要因素[29-30],在本試驗(yàn)中飼料成分可能是導(dǎo)致腸道菌群差異的最重要因素。由主坐標(biāo)分析和主成分分析圖可見,1∶1魚油—玉米油組和1∶1磷蝦油—玉米油組聚在一起,這表明兩組在物種進(jìn)化方面和物種組成方面較為類似,這可能與飼料中的多不飽和脂肪酸含量和種類有關(guān)。
利用16S rDNA測(cè)序技術(shù)對(duì)卵形鯧鲹腸道微生物多樣性進(jìn)行分析,結(jié)果表明,飼喂磷蝦油和1∶1磷蝦油—豆油的魚具有較高的腸道微生物多樣性,且不同脂肪源對(duì)腸道微生物多樣性影響顯著,這些結(jié)果對(duì)促進(jìn)卵形鯧鲹生長(zhǎng)和確定合適脂肪源具有重要的指導(dǎo)意義。