穆淑娥，陳玉娟，黃思玲，欒貽宏，郭學(xué)平

（華熙生物科技股份有限公司，山東 濟(jì)南 250101）

透明質(zhì)酸（hyaluronic acid，HA），又名玻璃酸，玻尿酸，是一種酸性黏多糖，廣泛存在于脊椎動物組織細(xì)胞間質(zhì)中。HA由β-D-葡糖醛酸和β-D-N-乙酰氨基葡糖組成的雙糖單位反復(fù)交替連接而成，分子量可達(dá)到4×106Da，通常應(yīng)用其鈉鹽形式，即透明質(zhì)酸鈉[1]。HA是在1934年由美國科學(xué)家Meyer等從牛眼玻璃體中首次分離得到，因其具有良好的潤滑性、保濕性和黏彈性，并具有極佳的生物相容性，現(xiàn)廣泛應(yīng)用于化妝品、食品和醫(yī)藥行業(yè)中。

目前HA的工業(yè)生產(chǎn)主要有兩種方法：動物組織提取法和微生物發(fā)酵法[2]。其中微生物發(fā)酵法生產(chǎn)HA與傳統(tǒng)的動物組織提取相比具有明顯的優(yōu)勢，如成本低、原料不受限適合規(guī)?；a(chǎn)、產(chǎn)品易于純化、質(zhì)量可控等[3-4]，因此發(fā)酵法生產(chǎn)HA逐步取代了組織提取法。在發(fā)酵法生產(chǎn)HA過程中，做為底物的葡萄糖在UDP-葡糖脫氫酶和UDP-葡糖焦磷酸化酶的作用下轉(zhuǎn)化為葡糖醛酸（GA）及乙酰氨基葡糖（NAG），兩種單糖在透明質(zhì)酸合成酶的作用下合成HA[5-6]，檢測發(fā)酵液中兩種未轉(zhuǎn)化為HA的單糖前體含量的變化，可更直觀地了解發(fā)酵過程，輔助判斷發(fā)酵終點。本文建立了一種高效液相色譜法（HPLC）檢測HA發(fā)酵液中兩種單糖前體的含量，專屬性強，精密度良好，且操作簡便，是一種易于推廣的透明質(zhì)酸鈉發(fā)酵液中單糖前體含量測定方法。

1 儀器與試藥

1.1 儀器

梅特勒-托利多AL104型分析天平（0.1 mg），Agilent 1260高效液相色譜儀（紫外檢測器）。

1.2 試藥

無水乙醇（色譜純），磷酸二氫鈉（分析純），去離子水。葡糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)品（中國食品藥品檢驗研究院），N-乙酰氨基葡糖標(biāo)準(zhǔn)品（阿拉?。?，透明質(zhì)酸鈉發(fā)酵液（華熙生物科技股份有限公司）。

2 方法與結(jié)果

2.1 色譜條件

色譜柱：Venusil HILIC（4.6 mm×250 mm，5 μm）；流動相：4 mmol/L磷酸二氫鈉溶液；流速：0.8 ml/min；柱溫：35 ℃；進(jìn)樣量：20 μl。

2.2 溶液制備

2.2.1 流動相 4 mmol/L磷酸二氫鈉溶液：稱取0.62 g二水合磷酸二氫鈉置于1000 ml量瓶，加水溶解并定容至刻度，使用前經(jīng)0.45 μm濾膜過濾，超聲脫氣15 min。

2.2.2 標(biāo)準(zhǔn)儲備液 標(biāo)準(zhǔn)儲備液A：精密稱取葡糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)品50 mg至5 ml量瓶，用水溶解并定容至刻度，混合均勻；標(biāo)準(zhǔn)儲備液B：精密稱取乙酰氨基葡糖標(biāo)準(zhǔn)品50 mg至5 ml量瓶，用水溶解并定容至刻度，混合均勻。

2.2.3 標(biāo)準(zhǔn)溶液 精密量取標(biāo)準(zhǔn)儲備液A和標(biāo)準(zhǔn)儲備液B各0.2 ml至10 ml量瓶中，流動相定容至刻度，混勻，進(jìn)樣前經(jīng)0.45 μm濾膜過濾。

2.2.4 系列標(biāo)準(zhǔn)工作液 精密量取標(biāo)準(zhǔn)儲備液A及標(biāo)準(zhǔn)儲備液B各0.05，0.1，0.2，0.4，0.5 ml至10 ml量瓶，流動相定容至刻度，混勻，進(jìn)樣前經(jīng)0.45 μm濾膜過濾。

2.2.5 供試溶液 精密量取HA發(fā)酵液0.5 ml置于10 ml量瓶，加入1.5 ml純水稀釋后用無水乙醇定容至刻度，搖勻，使HA及發(fā)酵液中的其他多糖及蛋白等大分子物質(zhì)充分沉淀，進(jìn)樣前經(jīng)0.45 μm濾膜過濾。

2.3 定量方法

分別取標(biāo)準(zhǔn)溶液和供試溶液各20 μl注入液相色譜儀，記錄色譜圖，以外標(biāo)法[7]計算供試品中兩種單糖殘含量（mg/ml）。

2.4 方法專屬性研究

專屬性測試色譜圖見圖1。如圖所示，流動相溶劑峰出現(xiàn)在5.9 min，而標(biāo)準(zhǔn)溶液中的GA和NAG色譜峰分別出現(xiàn)于5.0 min和4.0 min。溶劑峰對兩種單糖未造成干擾，且兩個單糖之間的分離度5.8。滿足方法學(xué)要求（分離度＞2.0）。

圖1 專屬性驗證色譜圖

2.5 線性和范圍

按照2.2.4所述方法制備兩種單糖的系列標(biāo)準(zhǔn)工作液，以峰面積為橫坐標(biāo)x，單糖的加入量（mg）為縱坐標(biāo)y，進(jìn)行線性回歸得到標(biāo)準(zhǔn)回歸方程。結(jié)果表明，乙酰氨基葡萄糖加入量與峰面積關(guān)系的線性回歸方程為y=771.73x+0.4531，相關(guān)系數(shù)r2=1；葡萄糖醛酸線性方程為y=94.338x-0.2002，相關(guān)系數(shù)r2=1。兩種單糖在0.05 ～ 0.5 mg/ml濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

2.6 檢出限（LOD）

當(dāng)信噪比為3時，該方法對HA發(fā)酵液中NAG的最低檢出濃度為2 μg/ml，對GA的最低檢出濃度為20 μg/ml。

2.7 精密度測試

按照2.2.5中所述方法平行制備6份供試品溶液（同一個取樣點的HA發(fā)酵液），按照既定方法檢測單糖含量。結(jié)果表明，兩種單糖的6個檢測結(jié)果相對標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為1.2 %和1.8 %，表明本方法精密度良好。

2.8 準(zhǔn)確度測試

取發(fā)酵培養(yǎng)基做為空白供試品（即不含GA及NAG）按照2.2.5中所述方法平行制備9份供試品溶液，設(shè)計高中低3個濃度準(zhǔn)確加入2.2.2中所述兩種單糖的標(biāo)準(zhǔn)儲備液A/B，每種濃度平行制備3份，按照既定方法檢測單糖含量，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)品加入量計算方法回收率。結(jié)果表明，該方法對GA和NAG的回收率分別為97.1 %和99.8 %，9個樣品的回收率RSD為1.6 %，表明該方法具有良好的準(zhǔn)確度。結(jié)果見表1。

3 討論

3.1 發(fā)酵液前處理

由于發(fā)酵液中HA含量較高，黏度較大，直接過濾較困難，也易堵塞色譜柱，應(yīng)先通過前處理將發(fā)酵液中的HA盡量除去。大分子透明質(zhì)酸鈉可溶于水但不溶于有機(jī)溶劑如乙醇（50 %以上）等，而葡糖醛酸和乙酰氨基葡糖為小分子單糖，在高濃度乙醇中有一定的溶解度，利用這一差別，經(jīng)過充分預(yù)實驗，將發(fā)酵液乙醇濃度調(diào)至80 %，可將其中的HA充分沉淀，也可將其它多糖類物質(zhì)以及蛋白質(zhì)等雜質(zhì)除去，減少發(fā)酵液中的成分對檢測的干擾。

3.2 色譜柱的選擇

分析單糖類物質(zhì)通常采用糖柱或氨基柱[8]。糖柱的填料往往是基于配體交換作用的聚合樹脂，其分離原理是基于配體交換反應(yīng)，這類色譜柱往往價格昂貴且對多種單糖的分離效果不佳。氨基柱屬于弱陰離子交換柱，流動相一般為乙腈和水，廣泛應(yīng)用于糖類檢測，但這類色譜柱的鍵和相易水解，使柱效在使用過程中下降很快，重復(fù)性和耐用性較差。本文選用親水作用色譜柱HILIC對單糖進(jìn)行分析，HILIC是近年來色譜領(lǐng)域研究的熱點之一，是一種用來改善在反相色譜中保留較差的強極性物質(zhì)保留行為的色譜技術(shù)。本文建立的檢測方法表明這類色譜柱適用于兩種單糖的分析，分離度滿足要求，穩(wěn)定性好。

表1 加樣回收率實驗結(jié)果（n=9）

3.3 流動相的選擇

HILIC色譜柱分析單糖一般采用反相體系，緩沖鹽的加入能夠增加兩種單糖在色譜柱上的保留，通過調(diào)節(jié)緩沖鹽的濃度可改善兩種單糖的分離度，經(jīng)實驗，最終確定流動相4 mmol/L磷酸二氫鈉。

本文建立了一種高效液相色譜法用于檢測HA發(fā)酵液中兩種單糖前體的含量，專屬性強，分離度好，且對檢測設(shè)備要求不高，基本配置（紫外檢測器）的高效液相色譜儀即可滿足要求，可用于發(fā)酵法生產(chǎn)HA的過程控制，了解轉(zhuǎn)化情況，輔助判斷發(fā)酵終點。

由于葡糖醛酸和乙酰氨基葡糖沒有特征紫外吸收，因此采用UV檢測器靈敏度并不是很高，兩種單糖的檢測限分別為20 ppm和2 ppm。如果將流動相中的不揮發(fā)性鹽用揮發(fā)性鹽（如乙酸銨）替代，則可用蒸發(fā)光散射檢測器來檢測單糖含量，提高方法靈敏度。