肖冰 馬明海 黃民生 陳奇 冷培恩 何巖
摘要:比較研究了石菖蒲、香菇草、魚(yú)腥草、粉綠狐尾藻和綠薄荷5種植物及其揮發(fā)性物質(zhì)對(duì)淡色庫(kù)蚊產(chǎn)卵行為的影響.結(jié)果表明,石菖蒲的蚊蟲(chóng)產(chǎn)卵活性指數(shù)(OAI)值為+0.58,抑制率為O%,具有較強(qiáng)的引誘作用;香菇草、魚(yú)腥草和粉綠狐尾藻的OAI值分別為-0.70、-0.64和-0.16,抑制率分別為82.46%、78.36%和27.05%,其中香菇草和魚(yú)腥草的OAI值均小于-0.30,可作為抑制劑;5種植物中,綠薄荷的抑制作用最強(qiáng)(OAI=-1.OO,ER=1OO.OO%),最適合作為驅(qū)蚊植物.揮發(fā)性有機(jī)物中苯類(lèi)化合物與OAI值呈顯著正相關(guān)(r=0.09,p<0.05),萜烯類(lèi)中的單萜烯類(lèi)與OAI值呈顯著負(fù)相關(guān)(r=-0.09,p<0.05).本文為河道修復(fù)及蚊蟲(chóng)防治的協(xié)同發(fā)展提供了理論依據(jù).
關(guān)鍵詞:植物化學(xué)物質(zhì);淡色庫(kù)蚊;產(chǎn)卵選擇性
中圖分類(lèi)號(hào):Q965
文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
DOI: 10.3969/j.issn.1000-5641.2019.06.013
0 引言
蚊蟲(chóng)是瘧疾、黃熱病、登革熱和寨卡等疾病的主要傳播媒介,不僅會(huì)騷擾人類(lèi)生活,造成社會(huì)經(jīng)濟(jì)財(cái)產(chǎn)損失,還嚴(yán)重威脅公眾健康.預(yù)防優(yōu)于治療,對(duì)于尚沒(méi)有疫苗預(yù)防和藥物治療的蚊媒病而言,其防控的關(guān)鍵措施為蚊蟲(chóng)控制.然而,蚊蟲(chóng)的控制面臨著各種各樣的挑戰(zhàn):殺蟲(chóng)劑的大量使用、濫用導(dǎo)致蚊蟲(chóng)產(chǎn)生抗藥性[1-3],蚊蟲(chóng)種群結(jié)構(gòu)的復(fù)雜性[4],蚊蟲(chóng)生態(tài)習(xí)性的遺傳變異[5],以及環(huán)境的改變[6]對(duì)蚊蟲(chóng)生態(tài)的動(dòng)態(tài)變化產(chǎn)生了影響.雌蚊通過(guò)接收化學(xué)、視覺(jué)、嗅覺(jué)、觸覺(jué)等信息選擇產(chǎn)卵地,并通過(guò)吸收環(huán)境中的各種資源完成其生命周期[3],因此選擇合適的產(chǎn)卵地對(duì)蚊幼的生長(zhǎng)和存活起著至關(guān)重要的作用,同時(shí)影響著傳播效能,因此研究蚊蟲(chóng)的產(chǎn)卵地選擇行為能為蚊蟲(chóng)的防治開(kāi)拓新思路[7].
蚊蟲(chóng)具有獨(dú)特的個(gè)體生態(tài)學(xué),特別是其嗜血性等特征,確保了蚊蟲(chóng)病原體宿主之間相互作用:尋找宿主、吸食血液、病原體的繁殖發(fā)育和疾病的有效傳播等[8].嗅覺(jué)系統(tǒng)在這些過(guò)程中起著主導(dǎo)作用[9]:自然環(huán)境中被稱(chēng)為化學(xué)信息素的揮發(fā)性有機(jī)物與蚊蟲(chóng)嗅覺(jué)系統(tǒng)中的氣味結(jié)合蛋白融合后,被嗅覺(jué)受體神經(jīng)元接收,這些化合物被嗅覺(jué)受體識(shí)別后,通過(guò)大腦解碼氣味,并產(chǎn)生相應(yīng)的行為[10],蚊蟲(chóng)通過(guò)化學(xué)信息素完成其種內(nèi)和種間的交流及與自然環(huán)境的相互作用[11].蚊蟲(chóng)嗅覺(jué)系統(tǒng)對(duì)其產(chǎn)卵地選擇行為的調(diào)控如圖1所示,在雌蚊產(chǎn)卵前,從生境中散發(fā)出的揮發(fā)性有機(jī)物與雌蚊嗅覺(jué)受體作用,能夠以“推一拉”(“Push-pull”)方式[12]吸引或排斥雌蚊產(chǎn)卵.
城市河道治理中,植物作為河道生態(tài)修復(fù)的一個(gè)重要手段,不僅能凈化水體中的污染物,還能增加水體的生物多樣性,使城市河道恢復(fù)近自然條件,提高其自?xún)裟芰?但由于水生植物的種植為蚊蟲(chóng)提供棲息場(chǎng)所并躲避天敵捕食,大大增加了河道孳生蚊蟲(chóng)的可能性[13];同時(shí)由于植物能夠合成并散發(fā)出大量的揮發(fā)性有機(jī)物質(zhì),而這些植物揮發(fā)性物質(zhì)具有靶標(biāo)專(zhuān)一性、環(huán)境友好、易生物降解、經(jīng)濟(jì)效益高、對(duì)非靶標(biāo)生物無(wú)副作用、不易產(chǎn)生抗藥性等優(yōu)點(diǎn),可能替代化學(xué)殺蟲(chóng)劑,近年來(lái)受到廣泛關(guān)注[14-15].本文以5種河道生態(tài)修復(fù)中常用的植物:菖蒲、香菇草、魚(yú)腥草、粉綠狐尾藻和綠薄荷[16]為研究對(duì)象,研究近自然條件下這5種植物及其揮發(fā)性成分對(duì)雌蚊產(chǎn)卵行為的影響,篩選出對(duì)蚊蟲(chóng)有吸引或驅(qū)避作用的揮發(fā)性成分,為植物源蚊蟲(chóng)引誘劑和驅(qū)避劑的研發(fā)提供參考依據(jù)[3],為河道治理及蚊蟲(chóng)防治的協(xié)同發(fā)展提供理論支撐.
1 材料與方法
1.1 供試生物
植物:石菖蒲、香菇草、魚(yú)腥草、粉綠狐尾藻和綠薄荷.
昆蟲(chóng):淡色庫(kù)蚊.
1.2 植物種類(lèi)及其揮發(fā)性成分對(duì)蚊蟲(chóng)產(chǎn)卵行為的影響
采用蚊帳試驗(yàn)(見(jiàn)圖2),200 cm(L) x180 cm(W) x150 cm(H),設(shè)3個(gè)平行組,每組分別種有5種植物及無(wú)植物的透明水箱(L 66 cmxW 44 cmxH40 cm),水箱中盛有0.05 m3的脫氯水,水箱中植物使用硬質(zhì)塑料網(wǎng)固定,植株間距為20 cm,密度約為40株/m2.每個(gè)蚊帳內(nèi)放入12只同批次飽吸血1-2d的待產(chǎn)雌蚊,血源由小白鼠提供,期間飼以5%葡萄糖水作為碳源,放入蚊帳2~4 d后計(jì)算水箱內(nèi)濕產(chǎn)卵紙上的蚊卵數(shù)量.
采用固相微萃?。⊿PME)技術(shù)結(jié)合氣相色譜/質(zhì)譜(GC/MS)方法對(duì)植物葉片中的揮發(fā)性物質(zhì)進(jìn)行提取、分離、鑒定[17].不同植物各選取2株,每株植物剪取成熟葉片3-4片(帶葉柄)并稱(chēng)重(見(jiàn)表1).葉片剪裁成長(zhǎng)約0.5 cm的碎屑,放入20 mL頂空樣品瓶中,密封加熱.采用CORNING PC-420D型加熱設(shè)備,40 ℃下預(yù)熱10 min,然后放入樣品瓶加熱30 min.采用經(jīng)250 ℃活化完成的固相微萃取纖維頭萃取5 min,萃取完成后,直接插入GC-MS進(jìn)樣口中分析.
1.3 數(shù)據(jù)分析方法
產(chǎn)卵選擇性:產(chǎn)卵反應(yīng)是以對(duì)照組及實(shí)驗(yàn)組中蚊卵的數(shù)量作為測(cè)量基礎(chǔ)的[18].蚊蟲(chóng)產(chǎn)卵活性指數(shù)(Oviposition activity index,OAI)按式l計(jì)算[19].式中,NT為試驗(yàn)水箱中蚊卵(幼)的數(shù)量,單位為個(gè);Nc為空白對(duì)照組水箱中蚊卵(幼)的數(shù)量,單位為個(gè).
OAI值范圍在-1至+1之間,OAI為正,表明實(shí)驗(yàn)組中蚊卵數(shù)量更多,實(shí)驗(yàn)組具有引誘作用;相反,OAI為負(fù),表明實(shí)驗(yàn)組具有產(chǎn)卵抑制作用.其中,當(dāng)OAI≥+0.3,實(shí)驗(yàn)組被認(rèn)為是引誘物;OAI≤-0.3,則為抑制物[19].
抑制作用用抑制效率(Effective repellency,ER)來(lái)計(jì)算(見(jiàn)式2).ER值越大,說(shuō)明其抑制蚊蟲(chóng)產(chǎn)卵效果越好.
揮發(fā)性有機(jī)物的鑒定:總離子流色譜圖中的各峰經(jīng)質(zhì)譜掃描后得到相應(yīng)的質(zhì)譜圖,經(jīng)計(jì)算機(jī)質(zhì)譜數(shù)據(jù)系統(tǒng)檢索(NIST08.L和RTLPEST3.L),結(jié)合保留時(shí)間及相關(guān)文獻(xiàn)資料,確定其歸屬.在默認(rèn)積分設(shè)置下,利用峰面積歸一化法計(jì)算各成分在總揮發(fā)物中的相對(duì)百分含量[20].
使用SPSS19.0軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行相關(guān)性分析,顯著性水平α=-0.05.
2 結(jié)果與討論
2.1 植物種類(lèi)對(duì)淡色庫(kù)蚊產(chǎn)卵選擇性的影響
5個(gè)實(shí)驗(yàn)組中,淡色庫(kù)蚊吸血雌蚊的產(chǎn)卵情況(見(jiàn)表2)表明,淡色庫(kù)蚊在不同植物條件下產(chǎn)卵數(shù)量為石菖蒲>粉綠狐尾藻>魚(yú)腥草>香菇草>綠薄荷.其中,3組平行樣中綠薄荷組產(chǎn)卵數(shù)量均為0.石菖蒲的OAI值為+0.58,大于0.3,可視為淡色庫(kù)蚊產(chǎn)卵的引誘物.其余4種植物的OAI均小于0,且魚(yú)腥草(-0.64)、香菇草(-0.70)和綠薄荷(-1.00)的OAI值均小于- 0.3,可視為抑制物,其中綠薄荷的抑制性最強(qiáng),抑制效率高達(dá)100%.薄荷屬多年生草本植物,是一種具有特種藥用價(jià)值的芳香植物[21],已有研究將薄荷作為人工濕地植被,發(fā)現(xiàn)其對(duì)活性磷和總磷的最高去除率可高達(dá)95.62%和67.45%,對(duì)化學(xué)需氧量(Chemical oxygen demand,COD)和總氮(Total nitrogen,TN)也有較好的凈化效果,且抗耐性較好,能順利過(guò)冬[22-23],因此在污染河道的植物修復(fù)中也可考慮使用綠薄荷,既可以?xún)艋|(zhì),又可達(dá)到驅(qū)蚊的效果.
2.2 植物中揮發(fā)性有機(jī)物的成分
氣相色譜分析中,化合物一般按照沸點(diǎn)的高低先后流出色譜柱,柱溫是最重要的分離參數(shù).在不考慮相對(duì)含量(Relative contents,RC)及匹配度(Match quality, MQ)高低的情況下,結(jié)果表明:5種植物可分離出的揮發(fā)性有機(jī)物(見(jiàn)表3和圖31數(shù)量分別為石菖蒲124種、香菇草65種、魚(yú)腥草150種、粉綠狐尾藻132種和綠薄荷89種.由于化學(xué)物的低相對(duì)含量和低匹配度會(huì)影響化合物鑒定結(jié)果的準(zhǔn)確度,故本研究選取相對(duì)含量在O.O1%以上,匹配度大于85%的揮發(fā)性物質(zhì)進(jìn)行分析,結(jié)果為石菖蒲62種、香菇草30種、魚(yú)腥草77種、粉綠狐尾藻69種、綠薄荷60種,植物的揮發(fā)性有機(jī)物主要種類(lèi)為酯類(lèi)、酚類(lèi)、醇類(lèi)、酮類(lèi)、醛類(lèi)、醚類(lèi)、鏈狀烷烴、苯類(lèi)、酸類(lèi)、萜烯類(lèi)和其他烯類(lèi)(見(jiàn)表3).
5種植物的揮發(fā)性成分中,除粉綠狐尾藻外,都以帖烯類(lèi)為主,相對(duì)含量為34.21%至65.35%,其中綠薄荷的帖烯類(lèi)含量顯著高于其他4種植物(p<0.01),主要成分為單萜烯類(lèi)的右旋萜二烯(RC=34.59%,MQ=94%),石菖蒲、香菇草和魚(yú)腥草中的萜烯類(lèi)成分以倍半萜烯類(lèi)為主.綠薄荷中還含有較豐富的香芹酮(RC=24.53%,MQ=96%)和香芹醇(3.24%,MQ=98%),這些化合物對(duì)蚊卵和蚊幼具有較強(qiáng)的致死作用和致突變作用[21].石菖蒲的揮發(fā)物中除酸類(lèi)外,其他類(lèi)成分均有檢出,相對(duì)含量最大的成分是倍半萜類(lèi)的1一石竹烯(RC=14.91%,MQ=99%)和β-金合歡烯(RC=8.08%,MQ=97%).香菇草中1,7-_甲基-7-(4甲基一3一戊烯基)一三環(huán)庚烷的相對(duì)含量最大,其次是倍半萜類(lèi)的烯烴,酯類(lèi)、酚類(lèi)、酮類(lèi)、醛類(lèi)、醚類(lèi)和酸類(lèi)未檢出.魚(yú)腥草中醇類(lèi)含量顯著高于其他植物(p<0.01),主要為α一松油醇(RC=17.6%,MQ=91%)和桉樹(shù)腦/桉葉油醇(RC=4.01%,MQ=93%).粉綠狐尾藻中未檢出萜烯類(lèi)和醇類(lèi)成分,但鏈狀烷烴的相對(duì)含量較高,比如正二十一烷(RC=2.03%),其對(duì)蚊蟲(chóng)的產(chǎn)卵行為具有較弱的引誘作用[24],其酯類(lèi)、酚類(lèi)、醛類(lèi)和苯類(lèi)的相對(duì)含量顯著高于其他植物(p<0.01),酯類(lèi)主要包括硅酸四乙酯(RC=1.57%,MQ=99%)和甲基-11稀酸甲酯(RC=1.34%,MQ=99%),酚類(lèi)主要是2,4-_叔丁基苯酚(RC=3.28%,MQ=97%),醛類(lèi)主要是E-15-庚醛(RC=1.87%,MQ=99%),苯類(lèi)主要是1一癸氧基-2-硝基苯(RC=1.29,MQ=89%)和均四甲苯(RC=0.88%,MQ=93%).
2.3 揮發(fā)性有機(jī)物對(duì)淡色庫(kù)蚊產(chǎn)卵選擇性的影響
在本研究中,根據(jù)相關(guān)性分析(見(jiàn)表3),帖烯類(lèi)化合物與OAI值呈顯著負(fù)相關(guān)關(guān)系,且單萜烯類(lèi)也呈顯著負(fù)相關(guān),說(shuō)明萜烯類(lèi)對(duì)蚊蟲(chóng)產(chǎn)卵的抑制效果主要取決于單萜烯類(lèi)成分的含量,而Matasyoh等[25]研究顯示胡椒揮發(fā)性成分的殺幼蚊作用主要是由于其倍半萜類(lèi)的高含量.苯類(lèi)化合物對(duì)蚊蟲(chóng)有較高的致死率,同時(shí)對(duì)成蚊產(chǎn)卵具有一定的抑制作用[26],而在本研究中,苯化合物與OAI值呈顯著正相關(guān)關(guān)系(p<0.05),即苯類(lèi)化合物對(duì)淡色庫(kù)蚊的產(chǎn)卵有一定的引誘或刺激作用,可能是由于植物中各類(lèi)揮發(fā)物的組成及相對(duì)含量的差異,使得混合后苯類(lèi)化合物表現(xiàn)出一定的引誘性.綠薄荷提取出的化學(xué)物質(zhì)主要是帖烯類(lèi)、酮類(lèi)和醇類(lèi),與Govindarajan等研究[21]相近,且這3種揮發(fā)性成分在不同的濃度下對(duì)蚊幼均有致死作用.Perry等發(fā)現(xiàn)含有甲基和乙基短鏈脂肪酸酯(比如丙酸乙酯和丁酸甲酯)的水體能吸引懷孕的埃及伊蚊[27].對(duì)于鏈長(zhǎng)較長(zhǎng)的脂肪酸酯,比如十六烷戊酸酯、十四烷庚酸酯和十三烷辛酸酯,在0.001‰和0.01‰濃度時(shí)對(duì)白紋伊蚊和埃及伊蚊均有趨避作用,而丙基硬脂酸對(duì)這兩種蚊蟲(chóng)有引誘作用.本研究在香菇草和魚(yú)腥草中發(fā)現(xiàn)了柏木腦成分(分別為0.02%、1.46%),柏木腦是倍半萜烯醇,大量存在于松柏類(lèi)植物的揮發(fā)物中,也常見(jiàn)于其他各類(lèi)植物,能夠引誘岡比亞按蚊產(chǎn)卵[28].5種植物中僅檢測(cè)出兩種醛類(lèi),分別為粉綠狐尾藻中的庚醛和石菖蒲中的十六醛,而醛類(lèi)對(duì)懷孕雌蚊具有引誘作用[26],而酸類(lèi)物質(zhì)僅在粉綠狐尾藻中測(cè)出.
已有大量的研究報(bào)道不同種植物,甚至同種植物在不同的地理位置能夠釋放出不同的揮發(fā)物[21,25],且不同的蚊蟲(chóng)棲息地中植物揮發(fā)物的結(jié)構(gòu)和化學(xué)復(fù)雜度各不相同,蚊蟲(chóng)根據(jù)這些信息選擇產(chǎn)卵地,盡管有些成分在各種植物中普遍存在,但由于其組成成分和比例的變化,使得蚊蟲(chóng)產(chǎn)生不同的反饋[29].同種植物揮發(fā)物質(zhì)在不同的濃度下對(duì)蚊蟲(chóng)的影響也有差別,比如3一甲基吲哚對(duì)于致倦庫(kù)蚊在0.01μg/L的濃度下具有排斥作用,而在1 μg/L及10μg/L的濃度下具有引誘劑作用[30].甚至在不同的研究中,有些結(jié)果可能會(huì)相互矛盾,比如4-甲酚在相似濃度下對(duì)埃及伊蚊既可能是刺激物又可能是抑制物[24,31].
3 結(jié)論
(1)淡色庫(kù)蚊在不同植物種植條件下,其產(chǎn)卵數(shù)量排序?yàn)槭牌?gt;粉綠狐尾藻>魚(yú)腥草>香菇草/綠薄荷,其中,石菖蒲的OAI值為+0.58,可視為引誘物,而魚(yú)腥草(-0.64)、香菇草(-0.70)和綠薄荷(-1.00)的OAI值均小于-0.3,可視為抑制物,其中綠薄荷的抑制作用最強(qiáng),在河道修復(fù)中種植綠薄荷驅(qū)蚊效果最好.
(2)5種植物中可分離出的揮發(fā)性有機(jī)物數(shù)量為石菖蒲62種、香菇草30種、魚(yú)腥草77種、粉綠狐尾藻69種、綠薄荷60種.其中,綠薄荷的帖烯類(lèi)含量顯著高于其他4種植物(p<0.01),主要成分為單萜烯類(lèi)的右旋萜二烯(RC=34.59%,MQ=94%),還含有較豐富的香芹酮(RC=24.53%,MQ=96%)和香芹醇(3.24%,MQ=98%),是綠薄荷抑制性較強(qiáng)的主要原因.石菖蒲、香菇草和魚(yú)腥草中的萜烯類(lèi)成分以倍半萜烯類(lèi)為主.5種植物中,僅在石菖蒲和粉綠狐尾藻中檢測(cè)出醛類(lèi)化合物,對(duì)淡色庫(kù)蚊具有引誘產(chǎn)卵作用.
(3) OAI值與苯類(lèi)化合物呈顯著正相關(guān)(r=0.90,p<0.05),與帖烯類(lèi)中的單帖烯類(lèi)呈顯著負(fù)相關(guān)(r=-0.90,p<0.05).
[參考文獻(xiàn)]
[1]RANSON H, LISSENDEN N. Insecticide resistance in African anopheles mosquitoes: A worsening situation thatneeds urgent action to maintain malaria control [J]. Trends in Parasitology, 2016, 32(3): 187-196.
[2]RANSON H, N'GUESSAN R, LINES J, et al. Pyrethroid resistance in African anopheline mosquitoes: Whatare the implications for malaria control? [J]. Trends in Parasitology, 2011, 27(2): 91-98.
[3]MUEMA J M: BARGUL J L, NJERU S N, et al. Prospects for malaria control through manipulation of mosquitolarval habitats and olfactory-mediated behavioural responses using plant-derived compounds [J]. Parasites &Vectors, 2017(10): 184.
[4]RUSSELL T L. GOVELLA N J, AZIZI S, et al. Increased proportions of outdoor feeding among residual malariavector populations following increased use of insecticide-treated nets in rural Tanzania [Jl Malaria Journal,2011(10): 80.
[5] NEAFSEY D E: WATERHOUSE R M, ABAI M R, et al. Highly evolvable malaria vectors: Thegenomes of16Anophelesmosquitoes [J] Science, 2015, 347(6217): 1258522.
[6]RUSSELL T L, BEEBE N W, COOPER R D, et al. Successful malaria elimination strategies require interventionsthat target changing vector behaviours [J]. Malaria Journal, 2013(12): 56.
[7]NAVARRO-SILVA M A, MARQUES F A, DUQUE L J E. Review of semiochemicals that mediate the ovipositionof mosquitoes: A possible sustainable tool for the control and monitoring of Culicidae [J]. Revista Brasileira deEntomologia, 2009, 53(1): 1-6.
[8]MOLLER-JACOBS L L, MURDOCK C C, THOMAS M B. Capacity of mosquitoes to transmit malaria dependson larval environment [J]. Parasites & Vectors, 2014(7): 593.
[9]TAKKEN W, KNOLS B G J. Odor-mediated behavior of afrotropical malaria mosquitoes [J]. Annual Review ofEntomology, 1999, 44(17): 131-157.
[10]WANG G R, CAREY A F., CARLSON J R, et al. Molecular basis of odor coding in the malaria vector mosquitoAnopheles gambiae [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2010, 107(9): 4418-4423.
[11] TUMLINSON J H. The importance of volatile organic compounds in ecosystem functioning [J]. Journal ofChemical Ecology,2014, 40(3): 212.
[12]HERRERA-VARELA M, LINDH J, LINDSAY S W, et al. Habitat discrimination by gravid Anopheles gambiaesensu latoa push-pull system [Jl Malaria Journal, 2014, 13: 133.
[13]MA M H, HUANG M S, LENG P E. Abundance and distribution of immature mosquitoes in urban riversproxi-mate to their larval habitats [J]. Acta Tropica, 2016, 162: 121-129.
[14]RAJKUMAR S: JEBANESAN A. Larvicidal and oviposition activity of Cassia obtusifolia Linn (Family: Legu-minosae) leaf extract against malarial vector, Anopheles stephensi Liston (Diptera: Culicidae) [J]. ParasitologyResearch, 2009, 104(2): 337-340.
[15]GOVINDARAJAN M, MATHIVANAN T, ELUMALAI K, et al. Ovicidal and repellent activities of botanicalextracts against Culex quinquefasciatus, Aedes aegypti and A'nopheles stephensi (Diptera: Culicidae) [J]. AsianPacific Journal of Tropical Biomedicine, 2011: 1(1): 43-48.
[16] 黃民生,馬明海,曹承進(jìn),等.城市水體環(huán)境及治理:析 [M].北京:中國(guó)建筑工業(yè)出版社, 2017.
[17] 史睿杰,謝壽安,趙薇,等.青海云杉針葉和枝條的揮發(fā)性化合物的固相微萃 GC/MS分析 [J].西北林學(xué)院學(xué)報(bào), 2011, 26(6):95-99.
[18] GANESAN K, MENDKI M J, SURYANARAYANA M V S, et al. Studies of Aedes aegypti (Diptera: Culici-dae) ovipositional responses to newly identified semiochemicals from conspecific eggs [J]. Australian Journal of Entomology, 2006, 45: 75-80.
[19]KRAMER W L, MULLA M S. Oviposition attractants and repellents of mosquitoes: Oviposition responses ofculex mosquitoes to organic infusions [J]. Environmental Entomology, 1979, 8(6): 1111-1117.
[20] GAO Y, JIN Y J, LI H D, et al. Volatile organic compounds and their roles in bacteriostasisin five coniferSpecies [J]. Journal of Integrative Plant Biology, 2005, 47(4): 499-507.
[21] GOVINDARAJAN M, SIVAKUMAR R, RAJESWARI M, et al. Chemical composition and larvicidal activityof essential oil from Mentha spicata (Linn.) against three mosquito species [J]. Parasitology Research, 2012,110(5): 2023-2032.
[22]盛辛辛,蓸謹(jǐn)玲,趙鳳岐,等,蘆葦和美人蕉及薄荷用作人工濕地植物對(duì)中水的凈化效果[J],湖南業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2013, 39(4): 423-428.
[23]霍張麗 ,朱廣龍,張江汀,等.模擬人工濕地植物對(duì)富營(yíng)養(yǎng)化水體的修復(fù)研究 [J] . 水土保持研究 : 2014, 21(5) : 267-271.
[24] BAAK-BAAK C M, RODRIGUEZ-RAMfREZ A D, GARcfA-REJON J E. et al. Development and laboratoryevaluation of chemically-based baited ovitrap for the monitoring of Aedes aegypti [J] . Journal of Vector Ecology, 2013, 38(1): 175-181.
[25]MATASYOH J C, WATHUTA E M, KARIUKI S T, et al. Chemical composition and larvicidal activity of Piper capense essential oil against the malaria vector: Anopheles gambiae [Jl Journal of Asia-Pacific Entomology, 2011, 14(1) : 26-28.
[26]? ?AUTRAN E S, NEVES I A, DA SILVA C S B: et al. Chemical composition, oviposition deterrent and larvicidal activities against Aedes aegypti of essential oils from Piper marginatum Jacq. (Piperaceae) [J]. Bioresource Technology, 2009, 100(7): 2284-2288.
[27]? PERRY A S, FAY R W. Correlation of chemical constitution and physical properties of fatty acid esters with
oviposition response of Ae. aegypti [J]. Mosquito News, 1967, 27(2): 175-183.
[28]? SHARMA K R. SEENIVASAGAN T, RAO A N, et al. Oviposition responses of Aedes aegypti and Aedes
albopictus to certain fatty acid esters [J]. Parasitology Research, 2008, 103(5): 1065-1073.
[29]? ?NYASEMBE V 0, TORTO B. Volatile phytochemicals as mosquito semiochemicals [J]. Phytochemistry Letters,2014, 8(1): 196-201.
[30]? DU Y J, MILLAR J G. Electroantennogram and oviposition bioassay responses of culex quinquefasciatus andcutex tarsalis (Diptera: Culicidae) to chemicals in odors from bermuda grass infusions [J]. Journal of Medical Entomology, 1999, 36(2): 158-166.
[31]? AFIFY A, GALIZIA C G. Gravid females of the mosquito Aedes aegypti avoid oviposition on m-cresol in the presence of the deterrent isomer p-cresol [Jl Parasites & Vectors, 2014(7): 315.
(責(zé)任編輯:張晶)
收稿日期:2018-08-07
基金項(xiàng)目:國(guó)家自然科學(xué)基金(51278192);國(guó)家科技重大專(zhuān)項(xiàng)(2013ZX07101012);普陀區(qū)高層次人才科研創(chuàng)新項(xiàng)目(普人才2014-A-18)
第一作者:肖 冰,女,碩士研究生,研究方向?yàn)槌鞘兴h(huán)境與蚊蟲(chóng)孳生.
E-mail: xiaobing_19940430@163.com.
通信作者:黃民生,男,教授,博士生導(dǎo)師,研究方向?yàn)樗h(huán)境治理與修復(fù).
E-mail: mshuang@des.ecnu.edu.cn.