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葡萄雜交后代灰霉病抗性鑒定與遺傳分析

2018-07-25 03:43:54任志華郭印山張軍輝劉鎮(zhèn)東高宏艷李坤郭修武
中外葡萄與葡萄酒 2018年4期
關(guān)鍵詞:灰霉病侵染霉菌

任志華,郭印山*,張軍輝,劉鎮(zhèn)東,高宏艷,李坤,郭修武*

(沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,遼寧沈陽 110866)

據(jù)農(nóng)業(yè)部統(tǒng)計,2017年我國葡萄的栽植面積為81.2萬 hm2,位居世界第二位,鮮食葡萄產(chǎn)量位居世界第一位,在世界葡萄生產(chǎn)中占有重要的經(jīng)濟地位[1]。在我國多個主要葡萄栽培種植地區(qū),灰霉病的危害非常嚴重[2-3],嚴重制約著葡萄與葡萄酒的生產(chǎn)[4-5]。葡萄灰霉菌不僅會危害葡萄幼果[6],成熟期果實[7],也會危害葉片[8]。目前,主要通過化學(xué)藥劑來控制灰霉病,但是,這會增加成本,而且藥劑的殘留會危害人體健康,長期使用還會造成環(huán)境污染[9]。灰葡萄孢菌具有高基因漂移潛力和較大的種群尺度,是高風險病菌,對環(huán)境的適應(yīng)性強,容易產(chǎn)生抗藥性菌株,而且用藥歷史和用藥水平與抗藥性頻率相關(guān)[10]。而培育出抗病品種是解決問題的根本途徑。因此,優(yōu)質(zhì)高抗品種的培育已經(jīng)成為育種工作的一個重要目標。本研究采用室內(nèi)離體葉片接種法,對‘紅地球’ב金星無核’和‘著色香’ב維多利亞’為親本及雜交后代群體為試驗材料,進行灰霉病抗性鑒定,對兩個群體灰霉病抗性及遺傳傾向進行分析,為今后選育抗灰霉病的葡萄品種提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料

試驗材料為葡萄的兩個雜交群體,為歐亞種‘紅地球’(Red Globe)×歐美雜交種‘金星無核’(Venus Seedless)及其雜交后代群體179株,歐美雜交種‘著色香’(Zhuosexiang)×歐亞種‘維多利亞’(Victoria)及其雜交后代群體192株,取自于沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)葡萄資源圃,植株長勢良好。葡萄灰霉菌(Botrytis cinerea)來源于北京市農(nóng)林科學(xué)院植物保護環(huán)境保護研究所。

1.2 方法

利用PDA培養(yǎng)基對灰霉菌進行培養(yǎng)。稱取干凈的馬鈴薯切成200 g的小塊置于電飯鍋中,加入自來水1 L,待其沸騰30 min,用兩層紗布趁熱過濾,去除濾渣。濾液補充自來水到1000 mL。加入20 g的瓊脂粉和20 g的葡萄糖攪拌均勻。使用高壓蒸汽滅菌鍋(型號:MLS-3751L-PC)滅菌30 min。在超凈工作臺中進行灰霉菌接種,用封口膜封好之后,轉(zhuǎn)入通用環(huán)境實驗箱(型號:MLR-352H-PC)中,在22 ℃黑暗條件下培養(yǎng)5 d。采集新生枝條頂端生長點往下第5、6片健康的葉片,平整放在8號自封袋里,封口時留一半不封,便于葉片透氣,編號后將葉片放在冰盒里,及時帶回實驗室進行灰霉菌侵染試驗。用無菌水沖洗葉片3遍。在培養(yǎng)皿內(nèi)鋪濾紙,濾紙鋪在培養(yǎng)皿的蓋上,并用無菌水將濾紙潤濕,以濾紙完全浸濕但不滴水為宜。每個株系挑選3片洗凈的葉片平鋪在培養(yǎng)皿的底部,葉片的背面朝上,用滅菌烘干之后的濾紙將葉片的水滴吸干。用消毒后的孔徑為7 mm的打孔器在培養(yǎng)5 d后的灰霉菌菌落邊緣打下若干個的菌餅,再用滅菌后的鑷子將菌餅夾起來,菌落的面朝下,倒扣在葉背面上,使得灰霉菌菌絲與葉片接觸,接種到葉片的背面3處不同位置上,避開葉片的主葉脈,并且稍微遠離葉片邊緣,預(yù)留一定的葉面積供灰霉菌侵染擴散。將接菌后的葉片放到通用環(huán)境實驗箱(型號:MLR-352H-PC)中,在溫度為22 ℃,黑暗條件下,相對濕度為90%的條件下培養(yǎng)。葉片接菌24 h后,用滅菌后的鑷子將葉片上的灰霉菌菌絲塊挑出來,然后繼續(xù)在同型號實驗箱中培養(yǎng)4 d?;颐咕臃N葉片5 d后,采用智能葉面積測量儀(型號:YMJ-C)統(tǒng)計葉面積及病斑面積。

2 結(jié)果與分析

2.1 葡萄灰霉菌培養(yǎng)結(jié)果

培養(yǎng)了5 d后的灰霉菌,培養(yǎng)基周圍菌絲生長旺盛,分布均勻,沒有產(chǎn)生孢子且菌絲為白色,活力及致病力都較強,并且整個PDA培養(yǎng)基上無雜菌生長,保證了灰霉菌的純度,符合侵染要求。

2.2 ‘紅地球’ב金星無核’群體灰霉病抗性鑒定結(jié)果

在實驗室內(nèi)對‘紅地球’ב金星無核’試驗群體的離體葉片進行灰霉菌菌絲侵染。圖1是試驗親本接種灰霉菌菌絲結(jié)果,可明顯看出,‘紅地球’的病斑比‘金星無核’的病斑大。圖2為試驗群體中部分后代單株葉片受到灰霉菌菌絲侵染后發(fā)病情況。結(jié)果顯示,試驗群體單株病斑大小存在明顯差異,抗病性呈現(xiàn)出多態(tài)性。

圖1 葡萄灰霉菌菌絲侵染親本離體葉片結(jié)果Figure 1 The infection of Botrytis cinerea to parental detached leaves

根據(jù)群體灰霉病抗性鑒定所得的表型數(shù)據(jù)可知,母本‘紅地球’的病斑大小為1085.57 mm2,父本‘金星無核’的病斑大小為326.70 mm2,供試的179株雜交后代接種灰霉菌后,不同株系間病斑大小有明顯差異,在這些單株中,雖然有51株后代的病斑比‘紅地球’的病斑大,超高親率為28.49%,而有28株后代的病斑比父本‘金星無核’小,超低親率為15.64%,但是從后代中選擇抗灰霉病的單株依然有很大的潛力。利用SPSS軟件得到該群體的抗性頻率分布直方圖(圖3),由圖可知雜交后代群體灰霉病抗性呈現(xiàn)連續(xù)性分布,具有典型的數(shù)量性狀遺傳的特征。

圖2 試驗群體部分后代發(fā)病情況Figure 2 The lesion area identification of some offspring in the experimental group

圖3 ‘紅地球’ב金星無核’群體灰霉病抗性分布Figure 3 Botrytis cinerea resistance distribution histogram of offspring from 'Red Globe'×'Venus Seedless'

2.3 ‘著色香’ב維多利亞’群體灰霉病抗性鑒定結(jié)果

在試驗室里對‘著色香’ב維多利亞’群體的離體葉片進行灰霉菌菌絲侵染。圖4是試驗親本接種灰霉菌菌絲結(jié)果,從圖中可明顯看出,‘維多利亞’的病斑比‘著色香’的病斑大。圖5為試驗群體中部分后代單株葉片受到灰霉菌菌絲侵染后發(fā)病情況。結(jié)果顯示,試驗群體單株病斑大小存在明顯差異,抗病性呈現(xiàn)出多態(tài)性,呈連續(xù)性分布,具有典型的數(shù)量性狀遺傳特征。

圖4 葡萄灰霉菌菌絲侵染親本離體葉片結(jié)果Figure 4 The infection of Botrytis cinerea to parental detached leaves

圖5 試驗群體部分后代發(fā)病情況Figure 5 The lesion area identification of some offspring in the experimental group

根據(jù)群體灰霉病抗性鑒定所得的表型數(shù)據(jù)可知,母本‘著色香’的病斑大小為523.90 mm2,父本‘維多利亞’的病斑大小為1240.96 mm2,供試的192株雜交后代接種灰霉菌之后,不同株系間病斑大小有明顯差異。在這些單株中,有23株后代的病斑比父本‘維多利亞’的病斑大,超高親率為11.98%,而有29株后代的病斑比母本‘著色香’的病斑小,超低親率為15.10%,變異系數(shù)為37.80%,說明從后代中選擇抗灰霉病的單株的潛力較大。利用SPSS軟件得到該群體的抗性頻率分布直方圖(圖6),由圖可知雜交后代群體灰霉病抗性呈現(xiàn)連續(xù)性分布,具有典型的數(shù)量性狀遺傳的特征。

2.4 雜交后代抗灰霉病的遺傳分析

由表1可以看出,在‘紅地球’ב金星無核’雜交群體中,‘金星無核’的抗病性顯著高于‘紅地球’,雜交組合的變異系數(shù)為56.18%,雜交后代的病斑大小分布范圍為127.27~2364.44 mm2,后代的病斑大小的平均值高于親中值,說明后代群體灰霉病抗性受‘紅地球’的影響較大。在‘著色香’ב維多利亞’的雜交群體后代中,‘著色香’的抗病性顯著高于‘維多利亞’,雜交組合后代的變異系數(shù)為37.80%,雜交后代的病斑大小分布范圍分別為200.11~1799.41 mm2,后代的病斑大小的平均值低于親中值,說明后代群體的灰霉病抗性受‘著色香’的影響較大。兩個雜交組合后代中都出現(xiàn)了一定比例的超低親單株,具有較大的選擇抗病單株的潛力。

圖6 ‘著色香’ב維多利亞’群體灰霉病抗性分布Figure 6 Botrytis cinerea resistance distribution histogram of offspring from 'Zhuosexiang'×'Victoria'

3 討論與結(jié)論

葡萄灰霉菌(Botrytis cinerea)即葡萄孢霉,是一種廣泛寄生性的腐生菌。溫度是灰霉菌生長繁殖的關(guān)鍵因子。灰霉菌的菌絲生長適合溫度區(qū)間為2~31 ℃,最適合溫度區(qū)間為20~23 ℃,濕度達到90%以上時灰霉菌生長最好[11]。而光照對灰霉菌菌絲的生長幾乎沒有什么影響[12]。一些營養(yǎng)物質(zhì)也會對葡萄灰霉菌生長和繁殖帶來一定的影響。本試驗中,參照前人研究基礎(chǔ)及預(yù)試驗結(jié)果,采用的培養(yǎng)基為PDA培養(yǎng)基,在溫度為22 ℃,濕度為90%,暗條件下的通用型環(huán)境實驗箱中培養(yǎng)灰霉菌及接菌后的離體葉片。

葡萄灰霉病的抗性遺傳研究中,如何保證灰霉病抗性鑒定準確性是關(guān)鍵之處。灰霉病是一種灰葡萄孢菌引起的真菌病害,不僅能夠引起葡萄花序和果實的病害,也能夠致使新梢、嫩葉和莖等部位受損[13]。而在灰霉病抗性鑒定中,主要通過灰霉菌孢子和灰霉菌菌絲進行侵染,侵染的部位主要是葡萄果實和葉片。本試驗結(jié)合前人研究基礎(chǔ)及預(yù)試驗結(jié)果,利用灰霉菌菌絲在室內(nèi)侵染葡萄離體葉片,通過智能葉面積測量儀測定灰霉菌病斑大小進行測定,設(shè)置試驗單株葉片多次重復(fù),然后對每個單株、每個重復(fù)進行求平均值,使計算得到的病斑面積更加準確。在室內(nèi)進行人工接種,保證了植株可以和病菌均勻接觸,而且侵染的環(huán)境容易控制,既可以反映植株在田間的感病性,又可以避免環(huán)境的不穩(wěn)定性,但是鑒于葡萄對灰霉病抗性遺傳的復(fù)雜性,因此在今后的試驗中,從多方面進行研究,還將結(jié)合多年的田間自然鑒定,更加精確的鑒定葡萄灰霉病抗性[14]。

表1 葡萄雜交后代抗病性的遺傳變異Table 1 Genetic variation of disease resistance in hybrid offspring of grape

迄今,培育出抗性高且優(yōu)質(zhì)的新品種,一直都是國內(nèi)外研究者的目標??共》N質(zhì)資源成為主要的研究對象。葡萄灰霉病抗性種質(zhì)資源的篩選和鑒定研究也有相關(guān)報道。Gabler等[15]發(fā)現(xiàn)使用灰葡萄孢子侵染42個不同品種的成熟漿果,結(jié)果發(fā)現(xiàn)具有較高抗性的品種是圓葉葡萄和美洲葡萄。段慧[16]探究了灰霉菌誘導(dǎo)4種刺葡萄基因型,檢測相關(guān)基因的表達量,確定了2種感病葡萄和2種抗病葡萄,2號和3號刺葡萄具有感病性,1號和4號刺葡萄具有抗性。姜彩鴿等[17]利用孢子懸浮液侵染將6個不同葡萄品種的果實刺傷,對各葡萄品種的內(nèi)含物-花青素、酚類物、糖分、總抗壞血酸或VC及VE等進行檢測,鑒定出了不同葡萄品種對灰霉病抗性的強弱順序為‘赤霞珠’‘美樂’‘西拉’‘雷司令’‘霞多麗’‘白詩南’。萬然[18]利用灰霉菌孢子懸浮液對葉片進行侵染,對我國30份野生葡萄種質(zhì)資源進行了對灰霉菌的抗性調(diào)查,證明了中國野生葡萄種質(zhì)資源中存在對灰霉菌具有抗性的葡萄基因型,抗性最高的6個基因型都來自中國野生葡萄種質(zhì),即山葡萄‘雙優(yōu)’‘通化3號’和‘泰山-11’;燕山葡萄‘燕山-1’和秦嶺葡萄‘平利-5’和蘡薁葡萄‘泰山-2’。本研究選用歐亞種‘紅地球’和‘維多利亞’、歐美雜交種‘金星無核’和‘著色香’為試驗材料,由試驗結(jié)果可知,‘金星無核’的抗病性顯著高于‘紅地球’,‘著色香’的抗病性顯著高于‘維多利亞’。這兩個雜交后代群體對灰霉病的抗病性均發(fā)生顯著分離,呈連續(xù)性分布,且分布廣泛,表現(xiàn)出數(shù)量性狀遺傳的特征?!t地球’和‘金星無核’雜交后代群體的變異系數(shù)為56.18%,超高親率為28.49%,說明后代受‘紅地球’的影響比較大?!恪汀S多利亞’后代群體的抗病性的變異系數(shù)為37.80%,超低親率達到15.10%,說明群體后代受‘著色香’的影響較大,后代中選育抗灰霉病單株的潛力較大。這些群體是開展葡萄灰霉病遺傳研究的良好材料,今后我們進一步深入開展研究,結(jié)合分子遺傳圖譜,完成灰霉病抗性QTL定位,篩選抗病候選基因,為今后開展葡萄灰霉病分子標記輔助育種及調(diào)控機制研究提供理論依據(jù)。

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