倪 洋 范柳萍 徐學(xué)碗
(1. 江南大學(xué)食品學(xué)院,江蘇 無錫 214122;2. 江蘇港城中藥養(yǎng)生有限公司,江蘇 泰州 225321 )
白果濁汁飲料屬于一種淀粉質(zhì)植物蛋白飲料,由于淀粉糊化后易老化,飲料在生產(chǎn)過程中和貨架存放期內(nèi)易出現(xiàn)析水分層、膠凝結(jié)塊和沉淀的現(xiàn)象。目前,工業(yè)上常用的方法是利用淀粉酶和糖化酶對原料里的淀粉進行酶解處理[1]24。利用淀粉酶酶解植物原料中的淀粉制備植物蛋白飲料已經(jīng)有很多研究,比如史銀銀[2]利用中溫α-淀粉酶、中性蛋白酶和糖化酶酶解白果淀粉制備白果飲料;楊婧曦[3]使用α-淀粉酶、果膠酶、β-淀粉酶和糖化酶酶解白果中淀粉研制白果飲料;Zhang等[4]利用響應(yīng)面優(yōu)化α-淀粉酶和蛋白酶的酶解條件制備白果濁汁;賈可華[5]18-19應(yīng)用淀粉酶酶解大麥淀粉制備乳濁液;姜紹通[6]28以板栗為原料采用淀粉酶酶解板栗淀粉制備板栗飲料,潘麗軍等[7]用中溫α-淀粉酶、葡萄糖糖化酶酶解原料紫薯,與蘋果汁進行復(fù)配制得紫薯復(fù)合飲料等等。這些研究很多只是把淀粉酶酶解淀粉作為一種手段,通過優(yōu)化酶解條件以充分酶解淀粉,然后過濾或者離心得到酶解液,研究對象主要集中在復(fù)配穩(wěn)定劑對于植物蛋白飲料穩(wěn)定性方面,但是忽略了由于淀粉酶解導(dǎo)致體系物理性質(zhì)改變,并且過濾和離心工序會損失很多營養(yǎng)物質(zhì)。同時淀粉被充分酶解后,飲料中的還原糖含量比較高,由于植物蛋白飲料屬于中性飲料,滅菌條件為121 ℃,20 min。含有豐富還原糖和蛋白質(zhì)的體系在高溫和長期貯存的條件下容易發(fā)生美拉德反應(yīng)[8]。在高強度的滅菌條件下,淀粉高度酶解的飲料其顏色變化會很大,影響感官。淀粉被酶解后飲料體系中像黏度、Zeta電位等物理性質(zhì)也會發(fā)生很大改變,這些物理性質(zhì)與飲料體系的穩(wěn)定性有很大的關(guān)聯(lián)性。
目前,白果濁汁飲料穩(wěn)定性的研究主要集中在復(fù)配穩(wěn)定劑方面,很少單獨研究淀粉的酶解程度對飲料體系穩(wěn)定性的影響。本試驗通過酶解工序制備淀粉不同酶解程度的白果濁汁,分析不同酶解程度白果濁汁的穩(wěn)定性,并結(jié)合酶解后黏度、電位和粒徑等物理性質(zhì)的變化闡明白果濁汁中淀粉酶解與體系穩(wěn)定性的關(guān)系,以期為白果飲料的工業(yè)生產(chǎn)提供酶解條件和理論依據(jù)。
白果:大佛指,購于江蘇泰州;
中溫α-淀粉酶:酶活2 000 U/mL,無錫杰能科酶試劑有限公司;
糖化酶:酶活1 200 U/g,東京化成工業(yè)株式會社。
均質(zhì)機:AH-2010型,安拓思納米技術(shù)(蘇州)有限公司;
紫外分光光度計:UV-2600型,日本島津公司;
流變儀:DHR-3型,美國沃特世公司;
激光粒度分析儀:S3500型,美國Microtrac公司;
多角度粒度與高靈敏度Zeta電位分析儀:Nano Brook Omni型,美國布魯克海文儀器公司;
高精度分光測色儀:UltraScan Pro1166型,美國Hunterlab公司。
1.3.1 白果濁汁制備工藝 根據(jù)Zhang等[4]的濁汁制備工藝修改為:
原料白果→挑選→清洗→去殼、去內(nèi)種皮→預(yù)煮糊化→膠體磨→過200目篩→酶解→均質(zhì)→殺菌→白果濁汁
預(yù)煮糊化:白果放入0.2% Na2CO3的沸水中加熱20 min,將白果中的淀粉充分糊化,同時熱處理還可以去除氰化物以及部分銀杏酚酸。
膠體磨:按照料液比1∶10 (g/mL)的比例,用膠體磨研磨5 min。
酶解:中溫α-淀粉酶和糖化酶共同作用。
均質(zhì):均質(zhì)壓力為40 MPa,均質(zhì)2次。
滅菌:滅菌條件為121 ℃,20 min。
1.3.2 酶解的正交優(yōu)化 在前期單因素試驗的基礎(chǔ)上,選擇中溫α-淀粉酶添加量、糖化酶添加量和酶解溫度作為試驗因素,固定料液比1∶10 (g/mL)、酶解時間60 min,以DE值作為指標(biāo),進行三因素三水平的正交優(yōu)化。正交試驗因素水平見表1。
1.3.3 不同酶解程度白果濁汁的制備 取5份相同體積的白果漿液,在優(yōu)化后的酶解條件下,分別進行10,30,60,90,120 min的酶解,酶解結(jié)束后立即滅酶滅菌,得到淀粉不同酶解程度的白果濁汁。
1.3.4 還原糖含量的測定 采用3,5-二硝基水楊酸比色法[6]12。
表1 正交試驗因素水平表Table 1 Factor levels of orthogonal experiment
1.3.5 總固形物含量的測定 吸取5 mL樣品,在105 ℃下烘干至恒重[5]20,稱重,計算總固形物含量。
1.3.6 DE值的計算 DE值為葡萄糖當(dāng)量,是還原糖占糖漿干物質(zhì)的比重[9],按式(1)計算DE值。
(1)
式中:
c——DE值,%;
m1——還原糖含量,mg/mL;
m2——總固形物含量,mg/mL。
1.3.7 懸浮穩(wěn)定性的測定 根據(jù)Sims等[10]的方法修改如下:取10 mL 飲料,于3 000 r/min離心10 min,取上清液用去離子水稀釋100倍,以去離子水作為參照,于660 nm處測定離心前后的吸光值。按式(2)計算懸浮穩(wěn)定性。
(2)
式中:
c——懸浮穩(wěn)定性,%;
A1——濁汁離心后的吸光度;
A2——濁汁離心前的吸光度。
1.3.8 流變性質(zhì)的測定 利用流變儀進行測定。取適量白果濁汁樣品加入流變儀平板上,間距設(shè)為0.100 mm,剪切速率為0~100 s-1,用40 mm的2°錐板模具于(25.0±0.1) ℃下測量白果濁汁流變性質(zhì)[11]。
1.3.9 粒徑的測定 用激光粒度分析儀進行測定。在室溫下吸取一定量的白果濁汁至去離子水中測定白果濁汁的粒徑,記錄平均粒徑D50、體積平均粒徑D[4,3]和面積平均粒徑D[3,2][1]36[12]。
1.3.10 Zeta電位的測定 根據(jù)趙光遠等[13]的方法修改如下:將樣品用去離子水稀釋100倍,震蕩混勻后放入電極中利用Zeta電位儀測量電位。
1.3.11 貯藏試驗 將滅菌后的白果濁汁放置于4 ℃冰箱中,讓淀粉加速老化,2 d后觀察濁汁穩(wěn)定性。
1.3.12 色差的測定 以未酶解的白果濁汁作為對照,利用高精度激光測色儀測量不同酶解時間白果濁汁滅菌前后的L、a、b值,按式(3)計算△E。L值表示亮度,a值代表紅綠偏向,b值代表有色物質(zhì)的黃藍偏導(dǎo)率;△E為色差,計算公式見式(3)?!鱁數(shù)值越高則表明試驗原料的顏色變化越大[10,14]。
(3)
式中:
△E——色差;
△L——L樣-L標(biāo);
△a——a樣-a標(biāo);
△b——b樣-b標(biāo)。
采用SPSS 17.0統(tǒng)計分析軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析,利用Origin 9.0進行繪圖。
白果中含有66%的淀粉(干基)[2]31,淀粉的酶解對濁汁飲料的穩(wěn)定起著至關(guān)重要的作用。淀粉處于糊化狀態(tài),有利于淀粉酶的酶解,因此充分糊化白果中的淀粉很有必要,20 min 的蒸煮可以使得淀粉充分糊化。同時由于白果中含有一定的有毒物質(zhì)(主要為氰化物和銀杏酚酸),通過Na2CO3浸泡結(jié)合加熱處理可以有效去除氰化物和部分銀杏酚酸,白果濁汁飲料中的銀杏酚酸含量小于2015版《中國藥典》限定的10 mg/kg。
由表2可以看出,3個因素對酶解效率影響的順序為:酶解溫度>α-淀粉酶添加量>糖化酶添加量,其中酶解溫度為65 ℃的試驗組比60,70 ℃的效率高,α-淀粉酶添加量越多酶解效率越高。表3表明,α-淀粉酶添加量和酶解溫度對酶解效率有顯著影響,而糖化酶添加量對酶解效率沒有顯著影響。所以綜合極差及方差分析結(jié)果最優(yōu)方案為:A3B3C2,即α-淀粉酶添加35 U/g·果肉,糖化酶添加60 U/g·果肉,酶解溫度為65 ℃。在此條件下,酶解的效率最高,經(jīng)過驗證實驗DE值為(55.63±0.56)%。
不同酶解程度白果濁汁的穩(wěn)定性情況見表4和圖1。
由表4可知,隨著酶解時間的延長,DE值和可溶性固形物持續(xù)增長,而懸浮穩(wěn)定性是先增加后穩(wěn)定再下降。由于淀粉酶和糖化酶對濁汁中的淀粉持續(xù)酶解,大分子的淀粉被酶解成還原糖和糊精,使得DE值以及可溶性固形物的含量增加,酶解120 min后DE值可以達到70%以上。懸浮穩(wěn)定性值越大代表飲料越穩(wěn)定[2]28,因此從懸浮穩(wěn)定性數(shù)據(jù)可知,濁汁穩(wěn)定性在酶解前30 min不斷升高,隨后在30~60 min時較穩(wěn)定,60 min后開始下降,圖1也可以看見相似的現(xiàn)象,說明一定時間內(nèi)酶解淀粉有助于提高濁汁的穩(wěn)定性,但是酶解時間過長反而會降低濁汁的穩(wěn)定性。
表2 正交試驗設(shè)計和結(jié)果Table 2 The orthogonal experiment design and results
表3 方差分析結(jié)果?Table 3 Results of variance analysis
? *表示F檢驗有顯著差異;**表示F檢驗有極顯著差異,F(xiàn)0.05(2,2)=19.0;F0.01(2,2)=99.0。
表4不同酶解時間下白果濁汁DE值、可溶性固形物
和懸浮穩(wěn)定性?
Table 4 DE value, soluble solid and suspension stability of ginkgo cloudy juice under different enzymatic hydrolysis time(n=3)
酶解時間/minDE值/%可溶性固形物/Brix懸浮穩(wěn)定性/%1020.21±1.16a5.52±0.12a22.18±1.20c3040.59±0.68b6.10±0.09b25.36±0.62d6055.47±1.37c6.45±0.15c24.52±0.94d9065.82±0.83d6.62±0.11cd21.51±1.32b12073.34±1.26e6.80±0.10d18.38±0.53a
? 同列不同字母表示顯著差異(P<0.05)。
將白果濁汁放置在4 ℃環(huán)境下,使得體系加速不穩(wěn)定。由于是濁汁飲料,含有豐富的淀粉、蛋白和纖維等大顆粒物質(zhì)。它們有些不溶于水,是以懸浮的狀態(tài)存在于濁汁體系中,懸浮在飲料中的物質(zhì)越多,說明濁汁的體系越穩(wěn)定。從圖1可以看出,不同酶解時間(即不同酶解程度)的白果濁汁具有不一樣高度的上清液和懸浮物。隨著酶解的進行懸浮物高度先升高,然后不變,60 min后懸浮物高度下降。尤其酶解120 min的白果濁汁,懸浮物大部分已經(jīng)沉入瓶底,濁汁此時很不穩(wěn)定。說明酶解30~60 min(DE值為40%~55%)的白果濁汁有較好的穩(wěn)定性。
圖1 于4 ℃放置2 d后不同酶解時間白果濁汁 的懸浮物高度Figure 1 The height of suspended particles of ginkgo juice after 2 days in the 4 ℃ stored
由圖2可知,隨著剪切速率的增加,不同酶解時間下白果濁汁的表觀黏度均逐漸減小,白果濁汁表現(xiàn)出剪切變稀的假塑性流體特征[15]。酶解10 min的濁汁對比未酶解的濁汁,其黏度迅速下降,當(dāng)酶解時間進一步增加,白果濁汁的黏度緩慢下降,最后趨于不變。可能是白果濁汁中淀粉等鏈狀大分子物質(zhì)在水溶液中相互纏繞、連接,形成三維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),增加了分子間的作用力,會使得濁汁的黏度比較大[1]33-34。當(dāng)?shù)矸勖负吞腔讣尤霛嶂?,體系中大分子鏈狀的淀粉可能迅速被切斷,三維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)難以維持,濁汁的黏度也迅速下降,當(dāng)酶解繼續(xù)進行,淀粉含量降低,濁汁黏度也會進一步降低,最后隨著淀粉的完全酶解,濁汁黏度變的很小。
圖2 不同酶解時間下白果濁汁的黏度Figure 2 The viscosity of ginkgo cloudy juice under different hydrolysis time
濁汁經(jīng)過酶解后其流變性質(zhì)發(fā)生很大改變,表觀黏度的變化是最宏觀的體現(xiàn)[16]。由于黏度的降低會使得一些不溶大顆粒物質(zhì)在重力作用下沉入瓶底,如圖1中酶解120 min 的白果濁汁其大部分的懸浮物質(zhì)都已經(jīng)沉入瓶底。
由圖3可知,白果濁汁Zeta電位的絕對值隨著酶解時間的延長先迅速升高然后又緩慢降低。當(dāng)Zeta電位的絕對值>30 mV,說明體系比較穩(wěn)定,顆粒間的靜電排斥力比較大,顆粒不容易吸附[17]。酶解30,60 min 時白果濁汁Zeta電位的絕對值都大于30 mV,說明此時白果濁汁中微粒間有較大的排斥力,不容易相互吸附。當(dāng)酶解時間超過60 min,濁汁體系Zeta電位的絕對值又緩慢下降。原因可能是在酶解剛開始的時候,濁汁體系中的鏈狀淀粉高分子被切斷,被淀粉分子包裹的果膠、蛋白等一些帶電物質(zhì)暴露在體系中,使得Zeta電位迅速下降[18]。隨著酶解的進一步進行,大量的淀粉被酶解,體系黏度進一步降低,使得其他顆粒之間更容易接觸吸附,從而導(dǎo)致Zeta電位又緩慢上升。
圖3 不同酶解時間下白果濁汁的Zeta電位Figure 3 Zeta potential of ginkgo cloudy juice under different hydrolysis time
不同酶解時間的白果濁汁表現(xiàn)出不同的Zeta電位,酶解時間長的白果濁汁Zeta電位的絕對值相對較小,同時體系黏度很低,使得白果濁汁中一些蛋白、果膠等帶電的顆粒更容易吸附在一起,從而進一步引起濁汁體系的不穩(wěn)定。因此,并非酶解時間越長越好。
D[4,3]可以反映白果濁汁體系中大顆粒的變化,D[3,2]可以反映白果濁汁中小顆粒的變化,D50表示的是中位粒徑[1]36。由圖4可知,隨著酶解時間的延長,D[4,3]的增長趨勢比D[3,2]大的多,同時D50的變化趨勢和D[4,3]的相似,說明白果濁汁粒徑變化的主要原因來源于大顆粒物質(zhì)的增加??赡苡捎诿附夂篌w系的黏度很快降低,同時當(dāng)酶解30 min以后,Zeta電位絕對值隨著酶解的增加而降低,使得體系中蛋白和果膠等大分子物質(zhì)更容易吸附在一起,導(dǎo)致體系粒徑的增大。
結(jié)合表4可知,濁汁體系中的可溶性固形物隨著酶解時間的延長不斷增加,說明淀粉被酶解成糊精和一些小分子糖類溶入濁汁中。由試驗結(jié)果可知,濁汁體系的粒徑隨著酶解的進行反而增加,這并不利于濁汁飲料的穩(wěn)定性,但另一方面如果白果濁汁中淀粉不進行酶解,經(jīng)過加熱糊化后,淀粉會很快老化,濁汁口感粗糙,放置一段時間就會整體出現(xiàn)分層現(xiàn)象,因此淀粉的酶解是有必要的。但隨著淀粉被酶解,濁汁體系中的黏度、粒徑、Zeta電位都會變化,它們之間會相互影響,相互作用,并且由圖1可知并不是酶解時間越長飲料就越穩(wěn)定。
圖4 不同酶解時間下白果濁汁的粒徑Figure 4 Particle size of ginkgo cloudy juice under different hydrolysis time
由圖5可知,滅菌前濁汁的△E值隨著酶解時間的延長逐漸增大,說明酶解時間對濁汁色澤有一定的影響。相同酶解時間下濁汁滅菌前后的△E值變化很大,說明滅菌工藝顯著影響濁汁的色澤。△E值是指總色差的大小,當(dāng)△E值在3以下認(rèn)為色差在可接受范圍,與對照樣品的顏色相差比較??;當(dāng)△E值大于3,視覺上可以分辨出顏色的差別[14]。酶解60 min以上的白果濁汁滅菌后的△E值都顯著大于3,說明此時白果濁汁的色澤變化可以被肉眼所觀察,呈現(xiàn)一種暗黃色。含有豐富的淀粉、還原糖以及蛋白質(zhì)的體系在高溫和長期貯儲時容易發(fā)生美拉德反應(yīng)[8]。白果濁汁經(jīng)過淀粉酶酶解后產(chǎn)生大量的還原糖,在121 ℃的滅菌高溫下與蛋白質(zhì)、氨基酸等物質(zhì)很容易發(fā)生美拉德反應(yīng),使得顏色變暗,酶解時間越長還原糖的含量越多,濁汁的顏色變化越深。因此,濁汁中淀粉的酶解程度對濁汁色澤也有很大的影響。
圖5 不同酶解時間白果濁汁滅菌前后的色差變化Figure 5 The change of color of ginkgo cloudy juice under different hydrolysis time
白果濁汁經(jīng)過酶解處理以后,整個體系的黏度、電位、粒徑等物理性質(zhì)均會發(fā)生顯著變化,這些變化會直接影響白果濁汁的穩(wěn)定性。研究表明當(dāng)酶解DE值為40%~55%時,白果濁汁具有較好的穩(wěn)定性。同時,酶解時間過長會影響濁汁色差。本研究為白果渾濁型飲料的加工生產(chǎn)提供了一定的理論依據(jù)。
雖然酶解工藝可以影響白果濁汁的穩(wěn)定性,但是僅僅依靠酶解并不能長期穩(wěn)定白果濁汁飲料。因此為保證白果濁汁飲料的長期穩(wěn)定,還需要進一步研究酶解和穩(wěn)定劑、均質(zhì)等工藝的結(jié)合,尋找出更高效、更經(jīng)濟、更穩(wěn)定的工藝方法。