皮雙雙,王靜祎,陳亞淑,胡 凱,謝筆鈞,孫智達(dá)
(華中農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,湖北武漢 430070)
膳食纖維是繼碳水化合物、蛋白質(zhì)、脂肪、水、維生素、礦物質(zhì)六大營養(yǎng)素之外的人體“第七營養(yǎng)素”[1]。根據(jù)在水中的溶解性,膳食纖維可分為兩大類:可溶性膳食纖維(soluble dietary fibre,SDF)和不溶性膳食纖維(Insoluble dietary fibre,IDF)[2]。膳食纖維可以促進(jìn)腸道蠕動,促進(jìn)糞便的排出,增加飽腹感,能有效降低血清中膽固醇水平以及腸道對葡萄糖的吸收,增加對礦物質(zhì)的吸收,消除外源性有害物質(zhì),降低結(jié)腸癌、心腦血管疾病的發(fā)病率等[3-4]。
玉米(ZeamaysL.)是禾本科玉米屬一年生草本植物,全世界每年種植玉米1.77億多公頃,總產(chǎn)量9.7億多噸,約占全球糧食總量的30%~35%。我國玉米產(chǎn)量占全世界總產(chǎn)量的20%左右,居世界第二[5]。玉米芯作為玉米加工的副產(chǎn)物,具有安全、無毒、來源廣泛、資源充足等優(yōu)點。我國玉米芯資源豐富,然而長期以來,除了極少一部分被用作牛羊等飼料外,絕大部分被當(dāng)做廢棄物丟棄,不僅浪費資源,而且造成了環(huán)境的污染[6]。黑糯玉米是一種保健果蔬玉米,口感黏糯,外觀烏黑發(fā)亮。玉米籽粒富含水溶性黑色素及各種人體必需的微量元素和各種氨基酸,營養(yǎng)成分含量明顯高于其他谷類作物,黑糯玉米芯中也富含較多的花色苷[7]。我國的黑糯玉米資源十分豐富,每年生產(chǎn)加工過程中會產(chǎn)生大量的黑糯玉米芯廢棄物。如能對其進(jìn)行有效的開發(fā)利用,不僅可以避免資源浪費,也能增加天然食品色素的種類,促進(jìn)食品工業(yè)的發(fā)展[8]。SDF在很多方面比IDF有更強(qiáng)的生理功能,由于玉米芯主要是纖維素和木質(zhì)素組成,因此運用纖維素酶解法使IDF轉(zhuǎn)化為SDF[9]。
本實驗以玉米芯為原料,采用α-淀粉酶、糖化酶、中性蛋白酶對原料進(jìn)行預(yù)處理,采用纖維素酶法制備膳食纖維,在單因素的基礎(chǔ)上進(jìn)行正交實驗,確定了最佳提取工藝。然后對提取的膳食纖維進(jìn)行結(jié)構(gòu)表征,并用多種方法對膳食纖維進(jìn)行了抗氧化分析,以期為以后深入開發(fā)利用黑糯玉米芯提供參考。
黑糯玉米 吉林祥裕食品有限公司;華玉15號玉米 來源于華中農(nóng)業(yè)大學(xué);α-淀粉酶(10000 U/mL) 北京雙旋微生物培養(yǎng)基制造廠;糖化酶(10萬U/g)、中性蛋白酶(100 U/mg)、纖維素酶(50 U/mg) 上海源葉生物科技有限公司;無水乙醇、95%乙醇、氫氧化鈉、鹽酸、硫酸、亞甲藍(lán)、甲基紅、DPPH(1,1-二苯基-2-三硝基苯肼)等 上海國藥化學(xué)試劑有限公司;福林酚試劑 美國Sigma公司;上述化學(xué)試劑均為分析純。
ZK-82B型真空干燥箱 德國CHRIST公司;SHZ-82A恒溫水浴振蕩器 常州國華電器有限公司;分析天平 上海倫捷公司;818型pH計 瑞士Mettler-Toledo FE20;RE-111旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 瑞士Buchi公司;5805AN冷凍離心機(jī) 德國Eppendorf公司;JP-100A-02型高速多功能粉碎機(jī) 上海久品工貿(mào)有限公司;JSM-6390LV掃描電鏡 日本NTC公司;UV-2100型紫外可見分光光度計 上海尤尼柯儀器有限公司。
1.2.1 玉米芯基本成分測定 水分含量測定參照GB 5009.3-2016直接干燥法;蛋白質(zhì)含量測定參照GB 5009.5-2016凱氏定氮法;淀粉含量測定參照GB 5009.9-2016酶水解法;脂肪測定參照GB 5009.6-2016索氏抽提法;灰分含量測定參照GB 5009.4-2016直接灰化法;膳食纖維測定參照GB 5009.88-2014。
1.2.2 SDF制備工藝流程 黑糯玉米芯→干燥→粉碎→酶解→離心→濾液→減壓蒸餾濃縮→醇沉→沉淀冷凍干燥→SDF
1.2.3 操作要點 干燥、粉碎:將黑糯玉米人工剝粒,取芯放入烘干箱中,在50 ℃下干燥至恒重后放入高速多功能粉碎機(jī)中破碎,過60目篩,密封放置備用。
酶解:稱量一定質(zhì)量的原料粉,按一定的料液比均勻分散在水中,用0.10 mol/L NaOH調(diào)節(jié)至pH5.0,加入原料粉質(zhì)量4%的混合酶(α-淀粉酶∶糖化酶=1∶3),在60 ℃下水解60 min,沸水浴5 min滅酶。調(diào)節(jié)pH7.0,加入原料粉質(zhì)量1%的中性蛋白酶,溫度50 ℃水解60 min,沸水浴5 min滅酶。然后加入一定量的纖維素酶,在一定溫度下水解一定時間,沸水浴5 min滅酶[10]。
離心:將酶解滅酶后的樣液以7656×g離心10 min,使液渣分離,收集上清液。
蒸餾濃縮:將濾液放置在旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀上45 ℃蒸發(fā)濃縮至樣液體積為原來三分之一停止。
醇沉:將濃縮后的樣液用0.1 mol/L的NaOH調(diào)節(jié)pH7.0,加入預(yù)熱到60 ℃的4倍其體積95%的乙醇進(jìn)行沉淀過夜[11]。
離心:醇沉后的樣液以7656×g離心10 min,沉淀進(jìn)行真空冷凍干燥,即為可溶性膳食纖維。
1.2.4 黑糯玉米芯SDF提取工藝單因素實驗
1.2.4.1 料液比對SDF提取得率的影響 稱取黑糯玉米芯粉5 g,在pH為4.5,加酶量為1%,酶解溫度為50 ℃,酶解時間70 min的條件下,研究料液比為1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30 g/mL對SDF提取得率的影響。
1.2.4.2 加酶量對SDF提取得率的影響 稱取黑糯玉米芯粉5 g,在料液比為1∶25 g/mL,pH為4.5,酶解溫度為50 ℃,酶解時間70 min的條件下,研究加酶量為0.5%、1.0%、1.5%、2.0%、2.5%對SDF提取得率的影響。
1.2.4.3 酶解溫度對SDF提取得率的影響 稱取黑糯玉米芯粉5 g,在料液比為1∶25 g/mL,pH為4.5,加酶量為2.0%,酶解時間70 min的條件下,研究酶解溫度為30、40、50、60、70 ℃對SDF提取得率的影響。
1.2.4.4 酶解時間對SDF提取得率的影響 稱取黑糯玉米芯粉5 g,在料液比為1∶25 g/mL,pH為4.5,加酶量為2.0%,酶解溫度50 ℃下,研究酶解時間為30、50、70、90、110 min對SDF提取得率的影響。
1.2.5 黑糯玉米芯SDF提取的正交實驗 在單因素實驗的基礎(chǔ)上,以料液比、加酶量、酶解溫度、酶解時間四個影響因素為自變量,以SDF提取得率為指標(biāo),采用L9(34)進(jìn)行正交實驗設(shè)計[9],因素水平見表1。
表1 酶解正交實驗的實驗因素和水平Table 1 Experimental factors and levelsTable of enzyme orthogonal test
1.2.6 SDF提取得率的計算
1.2.7 還原糖含量的測定 準(zhǔn)確吸取1 mL不同濃度梯度的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液(濃度為0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mg/mL),加入2 mL DNS(3,5-二硝基水楊酸)試劑,混勻后沸水浴5 min進(jìn)行顯色,然后迅速冷卻,稀釋10倍后在540 nm處測定其吸光度,并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線[12],得到其線性回歸方程為y=0.5085x-0.0107,R2=0.9993。
配制一定濃度的黑糯玉米芯SDF和華玉15號SDF溶液,按上述方法測定其還原糖含量。
1.2.8 總酚含量的測定 準(zhǔn)確吸取0.2 mL不同濃度梯度的沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)溶液(濃度為0、10、20、30、40、50、60、70 μg/mL),加入1 mL福林酚試劑,加入0.8 mL 7.5%的碳酸鈉溶液,充分混勻后避光放置2 h,在765 nm處測定吸光值,并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線[13],得到其線性回歸方程為y=0.008x+0.011,R2=0.999。
配制一定濃度的黑糯玉米芯SDF和華玉15號SDF溶液,按上述方法測定其總酚含量。
1.2.9 花色苷含量的測定 采用pH示差法[14],準(zhǔn)確吸取1 mg/mL的樣品溶液1 mL,分別用pH1.0(0.2 mol/L KCl∶0.2 mol/L HCl=25∶67,v/v)和pH4.5(0.2 mol/L NaAc∶0.2 mol/L HAc=45∶50,v/v)的緩沖溶液稀釋至5 mL,40 ℃下靜置平衡30 min,用蒸餾水加相應(yīng)緩沖溶液為空白對照,分別在520 nm和700 nm波長下測定吸光值,總花色苷含量以矢車菊色素-3-葡萄糖苷計,計算公式如下:
花色苷含量(mg/L)=A×MW×DF×1000/(ε×L)
A=(A520-A700)pH1.0-(A520-A700)pH4.5
式中:ε為矢車菊-3-葡萄糖苷消化系數(shù),26900 L·(cm·mg)-1;L為光程,1 cm;DF為稀釋倍數(shù);MW為矢車菊-3-葡萄糖苷相對分子質(zhì)量,449.2。
1.2.10 熱穩(wěn)定性分析 準(zhǔn)確稱取SDF樣品5 mg,將其均勻的平鋪在鋁坩堝底盤中,用壓片機(jī)將坩堝蓋與坩堝底盤緊密壓合,用鑷子將坩堝置于差示掃描量熱儀中。設(shè)置加熱溫度范圍為50~300 ℃,以15 ℃/min的加熱速率升溫,氣氛為60 mL/min流量的高純氮[15]。
1.2.11 紅外光譜分析 稱取2 mg干燥的SDF樣品和100 mg的干燥溴化鉀粉末,置于瑪瑙研缽中,并在紅外燈附近研磨均勻。用壓膜機(jī)壓制透明完整的樣品薄片,置于紅外掃描儀中,迅速掃描,得到樣品的紅外光譜圖。
1.2.12 超微結(jié)構(gòu)分析 取少量干燥的SDF粉末,過100目篩,用濺射鍍膜法進(jìn)行鍍金處理,并置于掃描電鏡(SEM)下觀察[16]。
1.2.13 DPPH自由基的清除能力的測定 準(zhǔn)確吸取不同質(zhì)量濃度的樣品溶液2 mL,加入0.2 mmo1/L的DPPH自由基乙醇溶液2 mL,使其充分均勻混合,在室溫條件下避光反應(yīng)30 min,置于紫外517 nm條件下測其吸光值,空白組用等體積無水乙醇代替DPPH自由基溶液,對照組用等體積蒸餾水代替樣品溶液[17]。按以下方法計算SDF對DPPH自由基的清除率:
式中:A0為對照組吸光值;Ai為樣品組吸光值;Aj為空白組吸光值。
1.2.14 總還原能力的測定 準(zhǔn)確吸取不同質(zhì)量濃度的樣品溶液2.5 mL,依次加入2.5 mL0.2 mol/L磷酸鹽緩沖液(PBS,pH6.6)2.5 mL和1%六氰合鐵酸鉀溶液(K3Fe(CN)6)2.5 mL,在50 ℃條件下水浴20 min后快速冷卻,加入10%三氯乙酸溶液2.5 mL,以3000 r/min離心10 min,取上清液5 mL,加入5 mL蒸餾水、0.1%的三氯化鐵溶液1 mL,混勻混合后靜置10 min,于700 nm波長條件下處測定其吸光值(蒸餾水作參比,調(diào)零),吸光值越大即表示還原力越強(qiáng)[18]。
1.2.15 羥自由基清除能力的測定 準(zhǔn)確吸取1 mL 4.5 mmo1/L的FeSO4,加1 mL濃度為4.5 mmol/L的水楊酸-乙醇溶液,再加入不同溶度的待測樣液1 mL,最后加入1 mL濃度為4.4 mmol/L的H2O2,使其充分均勻混合。37 ℃下恒溫水浴30 min,用蒸餾水調(diào)零,置于紫外510 nm條件下測其吸光值,空白組用等體積蒸餾水代替樣品溶液,對照組用等體積蒸餾水代替H2O2[19]。按以下方法計算SDF對羥自由基的清除率:
式中:A0為對照組吸光值;Ai為樣品組吸光值;Aj為空白組吸光值。
采用正交設(shè)計助手設(shè)計正交實驗方案,用Origin 8.0軟件作圖。
由表2可知,黑糯玉米芯中蛋白質(zhì)、淀粉、灰分、SDF的含量均高于華玉15號,華玉15號玉米芯中的脂肪和TDF含量高于黑糯玉米芯。玉米芯基本成分的差異可能使它們具有不同的物理性質(zhì)。
表2 玉米芯的基本成分(%,w/w)Table 2 Content of corncob proximate compositon(%,w/w)
2.2.1 料液比對SDF提取得率的影響 由圖1可以看出,隨著料液比從1∶10~1∶30 g/mL逐漸遞增時,黑糯玉米芯SDF的提取得率先增大后減小。在料液比為1∶25 g/mL時,SDF提取得率最大為2.98%。因此料液比在1∶25 g/mL左右時具有較高的SDF提取得率,料液比在此時更能使玉米芯在水中充分溶解,有利于酶的水解作用。當(dāng)料液比較小時,玉米芯不能充分?jǐn)U散,不能與酶充分接觸,不利于水解;當(dāng)料液比過大時,溶液被稀釋,酶的作用效果減弱,因此適宜料液比為1∶25 g/mL。
圖1 料液比對SDF提取得率的影響Fig.1 Effect of the liquid ratio on the extraction rate of SDF
2.2.2 加酶量對SDF提取得率的影響 由圖2可以看出,隨著加酶量從0.5%~2.0%的增加,玉米芯SDF的提取得率逐漸增加;當(dāng)加酶量繼續(xù)增加時,玉米芯SDF的提取得率有所下降。當(dāng)加酶量在2.0%時,SDF提取得率達(dá)到最大為3.63%。根據(jù)酶促動力學(xué)原理,底物濃度一定時,當(dāng)加酶量達(dá)到底物所需濃度時,隨著酶用量的增加,會加速酶解過程。但進(jìn)一步增大酶用量,由于酶解反應(yīng)會有一個誘導(dǎo)期,會在一定的程度上增加了酶之間的競爭作用,反而達(dá)不到增加產(chǎn)物的效果[20]。因此,適宜加酶量為2.0%。
圖2 加酶量對SDF提取得率的影響Fig.2 Effect of the enzyme amount on the extraction rate of SDF
2.2.3 酶解溫度對SDF提取得率的影響 由圖3可以看出,隨著酶解溫度從30~70 ℃依次上升時,SDF提取得率先是增加然后降低,當(dāng)酶解溫度在50 ℃時,SDF的提取得率最高為4.34%。因為酶都有其最適溫度范圍,超過其最適范圍隨著溫度不斷上升,酶的活性有部分喪失,所以提取得率會下降。因此,酶解的適宜溫度為50 ℃。
圖3 酶解溫度對SDF提取得率的影響Fig.3 Effect of the enzymatic hydorlysis temperature on the extraction rate of SDF
2.2.4 酶解時間對SDF提取得率的影響 由圖4可以看出,隨著酶解時間從30 min增加到90 min,SDF的提取得率隨時間增加而增大,當(dāng)酶解90 min時,提取得率達(dá)到最高為3.73%。SDF提取得率在90 min后隨時間增加有所下降,因為隨著時間的延長,酶的活力有所下降。因此,適宜酶解時間為90 min。
圖4 酶解時間對SDF提取得率的影響Fig.4 Effect of the enzymatic hydorlysis time on the extraction rate of SDF
由表3可知,對正交實驗進(jìn)行極差分析結(jié)果顯示,影響黑糯玉米芯SDF提取得率因素的主次順序為酶解溫度>加酶量>料液比>酶解時間。通過正交實驗結(jié)果可以得出黑糯玉米芯SDF提取的最優(yōu)組合方案為A2B3C1D1,即料液比為1∶25 g/mL、加酶量為2.5%、酶解溫度為45 ℃、酶解時間為70 min,此時SDF 提取得率最大為4.36%。
表3 正交實驗設(shè)計及結(jié)果Table 3 Orthogonal experimental design and result
按照黑糯玉米芯SDF最佳提取工藝分別提取兩種玉米芯的SDF。由圖5可以看出,黑糯玉米芯SDF的還原糖含量和總酚含量均高于華玉15號SDF。SDF1的還原糖含量為SDF2的1.65倍,SDF1總酚含量是SDF2的2.10倍。根據(jù)還原糖含量和總酚含量可以推測,SDF1的抗氧化性要高于SDF2。
圖5 兩種膳食纖維中還原糖和總酚含量Fig.5 Content of glucose and total phenol in two kinds of dietary fiber注:SDF1為黑糯玉米芯可溶性膳食纖維, SDF2為華育15號可溶性膳食纖維;圖8~圖11同。
由表4可知,黑糯玉米芯中富含花色苷,含量為(33.14±1.24) mg/g,而華玉15號玉米芯不含花色苷。以這兩種不同的原料提取的SDF中花色苷含量也不同,SDF1中含有少量花色苷,含量為(0.17±0.013) mg/g,而SDF2不含花色苷?;ㄉ盏拇嬖诳赡苁筍DF1具有更好的抗氧化活性和生理功能。
表4 不同原料中花色苷含量Table 4 Anthocyanin content in different materials
通過差示掃描量熱法來測定玉米芯SDF的熱穩(wěn)定性。如圖6所示SDF在114.79~171.83 ℃有一個大的吸熱峰,126.23 ℃為最大熱裂解溫度,而SDF2的熱裂解從118.62 ℃開始,到209.53 ℃基本完成,最大熱裂解溫度為130.08 ℃。結(jié)果表明SDF2起始和最大熱裂解溫度均高于SDF1,說明SDF2熱穩(wěn)定性略高于SDF1。
圖6 SDF的熱穩(wěn)定性分析圖Fig.6 Thermal stability analysis of SDF
兩種玉米芯SDF的紅外吸收光譜圖如圖7所示,由圖可以看出,兩種樣品的光譜圖大體相似,均具有多糖紅外圖譜的典型特征。圖中3420 cm-1處呈現(xiàn)的吸收較強(qiáng)的寬峰是O-H的伸縮振動峰且SDF1的吸收強(qiáng)度顯著大于SDF2,這可能是SDF1中所含花色苷苯環(huán)上的羥基引起的;2950 、2930cm-1處的弱峰是由糖類的-CH2-上C-H的收縮振動引起的;1730 cm-1是-C=O的伸縮振動峰,且SDF1的吸收強(qiáng)度強(qiáng)于SDF2,可能是由SDF1中含有的花色苷中的羰基所引起的;1200~1500 cm-1呈現(xiàn)的是C-H的變角振動峰;1100、1070 cm-1處最強(qiáng)吸收峰是糖類C-O的收縮振動峰。818 cm-1和802 cm-1處的吸收峰是呋喃糖衍生物的特征吸收峰[21]。
圖7 SDF的紅外圖譜Fig.7 Infrared spectra of SDF
通過不同放大倍數(shù)的掃描電鏡觀察兩種SDF的樣品表面結(jié)構(gòu)如圖8所示。由圖a和b可以看出黑糯玉米芯SDF表面結(jié)構(gòu)疏松,高倍鏡下呈現(xiàn)有規(guī)律的多孔狀網(wǎng)格結(jié)構(gòu),具有較大的表面積。由圖c和d可以看出華玉15號玉米芯SDF表面較平滑緊密,但無規(guī)則,高倍鏡下只有數(shù)量較少的孔狀結(jié)構(gòu),大部分呈大小不一結(jié)構(gòu)。以上均表明黑糯玉米芯SDF結(jié)構(gòu)具有更大的表面積,與其他物質(zhì)結(jié)合時可以形成更多的結(jié)合位點,從而較華玉15號玉米芯SDF有更強(qiáng)的生物活性。
圖8 玉米芯可SDF的掃描電鏡圖Fig.8 SEM micrograph of corncob SDF
DPPH自由基是一種很穩(wěn)定的氮中心的自由基,具有未成對電子。它的醇溶液呈現(xiàn)紫色,在517 nm處有最大吸收,吸光度與濃度呈線性關(guān)系。向其中加入自由基清除劑時,可以結(jié)合或替代DPPH自由基,使自由基數(shù)量減少,吸光度變小,溶液顏色變淺,借此可評價清除自由基的能力[22]。由圖9可以看出,兩種SDF均具有一定的清除DPPH自由基的能力,且隨著濃度的增加,清除率呈現(xiàn)先增大后趨于平緩的趨勢,且SDF1和SDF2對DPPH自由基的清除能力順序為:SDF1>SDF2,它們的IC50值分別為0.59、0.80 mg/mL。
圖9 玉米芯SDF清除DPPH自由基能力Fig.9 Corncob SDF scavenging effects on DPPH radical
由圖10可知,兩種SDF具有一定的總還原能力,且隨著濃度的升高,溶液的吸光值提高,即總還原力提高。兩種SDF的總還原力順序為:SDF2>SDF1,它們的A0.5分別為3.25、3.70 mg/mL。由此可得,黑糯玉米芯SDF的總還原力弱于華玉15號玉米芯SDF。
圖10 玉米芯SDF的總還原力Fig.10 The reduction ability of corncob SDF
羥自由基是活性最強(qiáng)的氧自由基,也是最活潑、毒性最大的自由基,半衰期短,反應(yīng)迅速。H2O2和Fe2+發(fā)生Fenton反應(yīng),可生成很高活性的羥基自由基。水楊酸能有效捕捉羥自由基并生成有色物質(zhì),在510 nm處有最大吸收。反應(yīng)體系中含有具有清除羥自由基的物質(zhì)會與水楊酸競爭,從而減少有色物質(zhì)的產(chǎn)生。由圖11可知,SDF1和SDF2的羥自由基清除能力都隨濃度升高而增強(qiáng),并且SDF1的清除率遠(yuǎn)高于SDF2。當(dāng)濃度為1.5 mg/mL時,SDF1對羥自由基的清除率為44.90%±3.66%,而SDF2對羥自由基的清除率為9.05%±1.54%;SDF1的IC50值為1.70 mg/mL,而SDF2對羥自由基的清除能力很弱,其IC50值>3.50 mg/mL。因此SDF1對 羥自由基的清除能力遠(yuǎn)大于SDF2。
圖11 玉米芯SDF清除羥自由基能力Fig.11 Corncob SDF hydroxyl radical scavenging ability
黑糯玉米芯SDF的提取最佳條件為:料液比為1∶25 g/mL,纖維素酶加酶量為2.5%,酶解溫度在45 ℃,酶解時間為70 min,以此條件提取SDF,測定提取得率為4.36%。在此條件下提取黑糯玉米芯和華玉15號玉米芯的SDF,實驗表明黑糯玉米芯SDF的酚含量和還原糖含量比華玉15號玉米芯SDF高,原因可能在于黑糯玉米芯SDF當(dāng)中含有花色苷;比較兩者的紅外光譜分析和熱穩(wěn)定性分析,發(fā)現(xiàn)兩種SDF均具有多糖的紅外吸收,并且華玉15號玉米芯SDF的熱穩(wěn)定性要強(qiáng)于黑糯玉米芯SDF;比較兩種SDF的表面結(jié)構(gòu),發(fā)現(xiàn)黑糯玉米芯SDF表面呈疏松、有規(guī)律的多孔狀結(jié)構(gòu),而華玉15號玉米芯SDF表面較平滑結(jié)構(gòu)無規(guī)則,高倍鏡下只有數(shù)量較少的孔狀結(jié)構(gòu),大部分呈大小不一結(jié)構(gòu),可以看出黑糯玉米芯SDF結(jié)構(gòu)具有更大的表面積,與其他物質(zhì)結(jié)合時可以形成更多的結(jié)合位點,從而較華玉15號玉米芯SDF有更強(qiáng)的生物活性。抗氧化活性實驗表明:與華玉15號玉米芯SDF相比,黑糯玉米芯SDF除總還原能力稍弱外,對DPPH自由基的清除能力,羥自由基清除能力均更高,顯示了良好的抗氧化活性。
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