崔鵬,陳志冉,史雷革
(1.黃河水利職業(yè)技術學院環(huán)境與化學工程系,河南開封475004;2.開封市綠色涂層材料重點實驗室,河南開封475004)
微波提取無花果葉中的總黃酮及其體外抗氧化活性研究
崔鵬1,2,陳志冉1,史雷革1
(1.黃河水利職業(yè)技術學院環(huán)境與化學工程系,河南開封475004;2.開封市綠色涂層材料重點實驗室,河南開封475004)
采用微波法提取無花果葉中的總黃酮,考察乙醇體積分數(shù)、液料比、提取功率、提取時間對總黃酮提取率的影響,并進行四因素四水平正交試驗,得到總黃酮的最佳提取工藝條件為:乙醇體積分數(shù)90%,液料比55∶1(mL/g),提取功率200 W,提取時間3min,黃酮的含量為20.56mg/g;該提取物對DPPH自由基去除率達66.67%,羥基自由基去除率達30.49%,證明其具有較好的體外抗氧化能力。
無花果葉;正交試驗;黃酮;抗氧化性
無花果為落葉灌木或喬木。分布在我國中部、西北部、南部諸省。無花果種植歷史悠久,有極高的營養(yǎng)價值,除果實外其葉藥用價值也很高。文獻詳述無花果葉的藥理性,其具有抗腫瘤、降血脂、降血糖、抗菌、抗病毒等[1]。無花果葉中含有黃酮類物質、香豆類物質、維生素C、氨基酸、蛋白質等化學成分[2]。目前常見的黃酮類物質提取方法有溶劑提取法、超聲波輔助提取法、微波輔助提取法、超臨界CO2萃取法[3-4]。其中溶劑提取法時間長,操作繁瑣,不適用于規(guī)模生產;超聲波法耗時短,簡單易行,但容易形成超聲空白區(qū)影響提取效率[5-9];超臨界CO2萃取法提取率高、提取物純度高,無污染,但其所需設備成本高,運行成本昂貴;而微波法因耗時短,提取效率高,成本適中成為目前研究的熱點[10-13]。黃酮的測定方法常見的有三氯化鋁比色法和亞硝酸鈉-硝酸鋁-氫氧化鈉分光光度法,前者因不能排除非黃酮類物質的干擾存在局限性;后者穩(wěn)定性較高抗干擾能力強,是目前應用廣泛的檢測方法[14-20]。因此,選擇微波輔助進行提取,亞硝酸鈉-硝酸鋁-氫氧化鈉分光光度法檢測黃酮的含量,并用正交試驗對相應試驗條件進行探討,為開發(fā)利用無花果葉提供部分參考。
無花果葉:市售;蘆丁標準品(色譜純):中國食品藥品檢定研究院;無水C2H5OH(分析純)、氫氧化鈉(分析純):天津市德恩化學試劑有限公司;亞硝酸鈉(分析純):天津登科化學試劑有限公司;硝酸鋁(分析純):天津恒興化學試劑制造有限公司;過氧化氫(分析純):天津市富宇精細化工有限公司;硫酸亞鐵(分析純):天津市大茂化學試劑廠;水楊酸(分析純):天津市永大化學試劑有限公司;1,1-二基-2-苦基肼自由基(DPPH)(分析純):如吉生物科技。
ISO9001超聲微波組合反應系統(tǒng):南京先歐儀器制造有限公司;FA2004N電子分析天平:上海精密儀器有限公司;V-1200紫外分光光度計:上海美譜達儀器有限公司;101-1A電熱鼓風干燥箱:天津市泰斯特儀器有限公司。
樣品:清洗,烘干,破碎,過200目篩,存于棕色瓶中備用。
蘆丁標準溶液濃度為0.20mg/mL。
標準曲線的繪制:吸量管吸取不同體積(mL)蘆丁標準液于10mL的比色管,分別加入0.40 mL5%亞硝酸鈉溶液,0.40 mL10%硝酸鋁,搖勻放置5min后加入2.00 mL4%氫氧化鈉,并用濃度30%無水乙醇定容。在波長為505 nm條件下,以同樣濃度的乙醇作空白,測定吸光度。以蘆丁標準品質量濃度C(mg/mL)和吸光度A為橫、縱坐標繪制標準曲線,得到回歸方程:Y=1.6X-0.010 3,R2=0.999 3(n=6)。該標準曲線在 0~10mg/L范圍內呈線性關系。
稱取1.000 0 g待測樣,加入不同體積分數(shù)的提取液,選擇不同的液料比及提取溫度,提取時間后過濾轉移定容,得到黃酮提取液,低溫保存。
吸黃酮提取液0.20mL~10mL比色管,分別加入0.40 mL5%亞硝酸鈉溶液,0.40 mL10%硝酸鋁,搖勻放置5min后加入2.00 mL4%氫氧化鈉,并用濃度30%無水乙醇定容,測定吸光度。代入方程得黃酮類成分的含量。黃酮提取率的計算公式如下:
式中:ρ為黃酮類物質提取率,mg/g;C為黃酮質量濃度,mg/mL;V為總黃酮提取液體積,mL;m為樣品質量,g。
設計單因素試驗條件,考察不同因素對無花果葉中黃酮提取率的影響,具體見表1。
表1 單因素試驗條件Table 1 Experimental conditions of single-factor
在單因素試驗的基礎上,確定提取液料比、微波功率、C2H5OH濃度、提取時間,設計四因素四水平正交試驗,探索最佳試驗參數(shù)。
以DPPH自由基和·OH自由基的去除率來考察無花果葉中黃酮的抗氧化性。
1.3.7.1 DPPH自由基的去除
配制濃度是0.2 g/L DPPH溶液,冷凍避光保存待用。取不同濃度樣品2mL,加入濃度為0.2mg/mL DPPH溶液,搖勻,避光反應20min。以無水乙醇做參比,于515 nm測定吸光度。去除率公式為:
式中:Ai為DPPH溶液吸光度值;Ax為樣品液和DPPH溶液吸光度值;Ae為不含DPPH溶液時樣品液吸光度值。
1.3.7.2 ·OH的去除
參照賈之慎[21]等方法有部分改動,采用水楊酸比色法測定羥基自由基去除率。取不同濃度梯度樣品1mL,加入2mL硫酸亞鐵,1.5mL水楊酸,再加入0.1mL過氧化氫啟動反應。以蒸餾水做參比,于510 nm測定吸光度。去除率公式為:
式中:A0為生成的羥基自由基溶液吸光度值;A1為樣品液和生成羥基自由基溶液吸光度值;A2為樣品液吸光度值。
稱取1.000 0 g待測樣,依據(jù)單因素試驗條件序號Ⅰ進行試驗。測定、計算黃酮提取率見圖1。
圖1 乙醇濃度對無花果葉黃酮提取率的影響Fig.1 Effect of concentration of ethanol on the extraction rate of flavonoids from Ficus carica leaves
由圖1可以看出,提取率隨乙醇濃度的增大逐漸提高,在乙醇濃度90%時提取率最高,確定此點為最佳乙醇濃度。
稱取1.000 0 g待測品,依據(jù)單因素試驗條件序號Ⅱ進行試驗。測定、計算黃酮提取率見圖2。
圖2 液料比對無花果葉黃酮提取率的影響Fig.2 Effect of ratio of liquid to material on the extraction rate of flavonoids from Ficus carica leaves
由結果圖2可以看出,提取率隨液料比的升高逐漸增大并在55∶1(mL/g)時最高,繼續(xù)增加反而降低,分析原因可能是由于液料比增加使得待測物中黃酮類物質濃度減少從而提取率降低造成。因此確定55∶1(mL/g)為最佳液料比。
稱取1.000 0 g待測物,依據(jù)單因素試驗條件序號Ⅲ進行試驗。測定、計算黃酮提取率見圖3。
圖3 微波時間對無花果葉黃酮提取率的影響Fig.3 Effect of microwave time on the extraction rate of flavonoids in Ficus carica leaves
由結果圖3可以看出,提取率隨著微波時間增大而增大,在微波時間4min時最高,繼續(xù)增加提取率反而下降。由于微波時間較長時,乙醇被蒸干情況嚴重,導致提取率下降。
稱取1.000 0 g待測品,依據(jù)單因素試驗條件序號Ⅳ進行試驗。測定、計算黃酮提取率見圖4。
圖4 微波功率對無花果葉黃酮提取率的影響Fig.4 Effect of microwave power on the extraction rate of flavonoids in Ficus carica leaves
由結果圖4可以看出,隨著提取時間的增加提取率逐漸增大,在微波功率400 W時最高,微波功率繼續(xù)增大提取率下降明顯,推測是由于提取溫度隨著提取功率的增大而升高,C2H5OH揮發(fā)的越快,從而影響試驗效果,因此選擇400 W為最佳微波功率。
為確定本試驗的最佳條件,采用正交試驗方法測定。稱取待測物1.000 0 g共16份,按照正交試驗表2進行試驗。
表2 黃酮提取條件優(yōu)化正交試驗結果與分析Table 2 Factors and levels of orthogonal experiments for flavonoids extraction conditions optimization
試驗結果顯示,黃酮成分提取率受各因素的影響次序:C2H5OH濃度A>液料比C>微波功率D>微波時間B。最佳方案是A3B1C3D1,即C2H5OH濃度90%,微波時間 3min,液料比 55 ∶1(mL/g),微波功率 200 W。該試驗條件未在單因素試驗及正交試驗中出現(xiàn),進一步對該方案進行驗證,依照上述試驗條件重復提取5次進行測定計算,結果如下:提取率分別是21.10%、20.98%、21.12%、20.93%、21.07%,相對標準偏差為0.45%。平均值高于正交試驗中的任一提取率,說明此方案可實施性較強。
按照1.3.7.1步驟進行DPPH自由基去除試驗,并計算去除率見圖5。
圖5 無花果葉提取液濃度對DPPH自由基去除率影響Fig.5 DPPH radical scavenging activity of different extract concentrations from Ficus carica leaves
圖5顯示當樣液濃度越大對DPPH自由基去除率越大,呈正相關,在7mg/mL時,對DPPH自由基去除率達到66.7%,樣液濃度在7mg/mL~10mg/mL時對DPPH自由基去除率相接近。無花果葉黃酮提取液具有一定的抗氧化性。
按照1.3.7.2步驟進行·OH去除試驗,并計算去除率見圖6。
圖6 無花果葉提取液濃度對·OH去除率的影響Fig.6·OH scavenging activity of different extract concentrations from Ficus carica leaves
圖6顯示當樣液濃度增大,去除率也逐漸增大,在樣液濃度為8mg/mL時去除率達到最大30.49%,樣液濃度在8mg/mL~10mg/mL之間時·OH自由基去除率近似相等。
1)本試驗研究對象為無花果葉子,采用正交試驗方法進行,對無花果葉黃酮類成分的提取即含量測定進行探討,確定最佳提取條件。試驗結果表明,試驗中選取因素的主次關系為C2H5OH濃度>液料比>微波功率>微波時間,最佳條件:C2H5OH濃度90%、微波時間3min、液料比 55 ∶1(mL/g)、微波功率 200 W,無花果葉中黃酮類物質提取率為20.56mg/g。結果顯示無花果中黃酮類成分含量豐富。
2)進行體外抗氧化性試驗得出,無花果葉提取液對DPPH自由基去除率達66.67%,對·OH去除率達30.49%,證明無花果葉中黃酮類成分有較強的抗氧化能力,可以抑制癌細胞的增長、提高機體免疫能力,對細胞過氧化衰老有一定抑制作用。
[1]莊奕筠,張吟.無花果葉的藥用研究進展[J].海峽藥學,2011,11(12):1-4
[2]杜文靜,羅莉.無花果葉的藥用研究進展[J].中國醫(yī)導報,2014,2(2):93-96
[3]涂華,陳碧瓊,張燕軍.天然類黃酮物質的提取工藝研究進展[J].中國實驗方劑學雜志,2011,3(6):277-279
[4]姜紅波.黃酮類物質的提取和含量測定方法研究進展[J].化工時刊,2010,11(11):45-48,49
[5]張夢軍,金建鋒,李伯玉,等.微波輔助提取甘草黃酮的研究[J].中成藥,2002,24(5):334-336
[6]韓頌,徐穎,于喜水,等.纖維素酶在甘草提取工藝中的應用總結[J].中醫(yī)藥學報,2003,31(3):46
[7]楚紅英,李瑜.菊花中總黃酮及鐵含量的測定[J].江蘇農業(yè)科學,2013,41(3):293-295
[8]張亮亮,陳笳鴻,汪詠梅,等.海南蒲桃葉黃酮的提取及抗氧化性研究[J].生物質化學工程,2010,44(2):27-30
[9]蔣益花.破銅錢總黃酮的提取工藝研究[J].生物質化學工程,2007,41(2):38-40
[10]廉琪,鄭學芳,彭友舜,等.微波輔助提取蘆筍粉中總黃酮的研究[J].中國釀造,2011,30(12):85-87
[11]李娜,魯曉翔.微波提取紅花黃酮類化合物的研究[J].中國釀造,2010,29(7):105-109
[12]黃菊,何偉平,董黎明,等.微波輔助提取石榴皮黃酮及抗氧化活性研究[J].保鮮與加工,2016,16(6):92-97
[13]薩茹麗,木其爾,王翠芳,等.沙蔥總黃酮提取工藝優(yōu)化及其體外抗氧化、抗菌作用[J].食品科學,2014(24):25-32
[14]王彥平,湯高奇,孫瑞林,等.微波輔助提取葡萄皮渣總黃酮及其抗氧化性研究[J].食品研究與開發(fā),2017,38(2):51-55
[15]Zhong Z,Zheng H.Optimization for decolorization of azo dye acid green 20 by ultrasound and H2O2using response sreface methodology[J].J Hazard Mater,2009,172(2):1388-1393
[16]韓雪梅,許效群,王緣,等.苦蕎葉總黃酮提取純化工藝研究[J].山西農業(yè)大學學報(自然科學版),2017,37(2):134-140
[17]朱耀華,楊建雄,代斌.高粱紅色素的體外抗氧化研究[J].陜西師范大學學報(自然科學版),2009,5(3):66-69
[18]Cristina L,Timothy J M.Microwave and ultrasonic processing:now a realistic option for industry[J].Chem Eng Process:Process Inten,2010,49(9):885-900
[19]Chen Y Y,Gu X H,Huang S Q,et al.Optimization of ultrasonic/microwave assisted extraction(UMAE)of polysaccharides from Inonotus obliquus and evaluation of its anti-tumor activities[J].Int J Biol Macromol,2010,46(4):429-435
[20]Khuri A I,Mukhopadhyay S.Response surface methodology[J].Wiley Interdis Rev:Comput.Statis,2010,2(2):128-149
[21]賈之慎,鄔建敏,唐孟成.比色法測定Fenton反應產生的羥基自由基[J].生物化學與生物物理進展,1996,23(2):184-186
Microwave Extraction and Free Radical Scavenging Activity of Total Flavonoids from Ficus carica Leaves
CUI Peng1,2,CHEN Zhi-ran1,SHI Lei-ge1
(1.Department of Environment and Chemical Engineering,Yellow River Conservancy Technical Institute,Kaifeng 475004,Henan,China;2.Key Laboratory of Green Coating Materials of Kaifeng City,Kaifeng 475004,Henan,China)
Microwave-assisted flavonoids extraction from Ficus carica leaves and the best experimental conditions were studied.Total flavonoids were determined in Ficus carica leaves.The result showed that the optimal extraction condition as follows:alcohol concentration was 90%,material-water ratio was 55 ∶1mL/g,extraction power was 200 W,reflux time was 3min and the flavonoid extraction rate from Ficus carica leaves were 20.56mg/g.The extract showed that the DPPH clearance rate was 66.67%,the removal of·OH was 30.49%,it was proved that it had good anti-oxidative activity.
Ficus carica leaves;orthogonal experiment;flavonoids;antioxidative activity
崔鵬,陳志冉,史雷革.微波提取無花果葉中的總黃酮及其體外抗氧化活性研究[J].食品研究與開發(fā),2018,39(1):41-45
CUI Peng,CHEN Zhiran,SHI Leige.Microwave Extraction and Free Radical Scavenging Activity of Total Flavonoids from Ficus carica Leaves[J].Food Research and Development,2018,39(1):41-45
10.3969/j.issn.1005-6521.2018.01.009
崔鵬(1977—),女(漢),講師,碩士,研究方向:化學化工、環(huán)境領域的教學與研究工作。
2017-09-08