黃春萍,吳福忠,楊萬勤,岳 楷,張 川,張 健*(.四川農(nóng)業(yè)大學(xué)生態(tài)林業(yè)研究所,林業(yè)生態(tài)工程重點實驗室,四川 成都 630;2.四川師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,四川 成都 60068)
川西高寒森林溪流好氧不產(chǎn)氧光合細菌多樣性
黃春萍1,2,吳福忠1,楊萬勤1,岳 楷1,張 川1,張 健1*(1.四川農(nóng)業(yè)大學(xué)生態(tài)林業(yè)研究所,林業(yè)生態(tài)工程重點實驗室,四川 成都 611130;2.四川師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,四川 成都 610068)
為了探明好氧不產(chǎn)氧光合菌(AAPB)在川西高寒森林溪流極端環(huán)境中的生態(tài)分布和群落結(jié)構(gòu)及其環(huán)境影響因子,本實驗結(jié)合同步溫度動態(tài)和水環(huán)境特征監(jiān)測,采用實時熒光定量PCR和克隆文庫的方法,檢測了川西高寒森林溪流季節(jié)性凍融循環(huán)3個關(guān)鍵時期(凍結(jié)前期、深凍期和融化期)AAPB的豐度和多樣性變化及其與環(huán)境因子之間的相關(guān)性.結(jié)果表明:AAPB豐度在凍結(jié)前期非常低,僅(2.80±0.19)×104bp/mL;深凍期迅速增加到(4.65±0.30)×104bp/mL;融化期達到(5.79±0.19)×104bp/mL.系統(tǒng)發(fā)育分析顯示,凍結(jié)前期AAPB類群主要為α-變形菌綱細菌;而深凍期和融化期以β-變形菌綱細菌占據(jù)主要地位.相關(guān)性分析表明,在季節(jié)性凍融循環(huán)過程中,葉綠素a、可溶性有機碳和溫度是AAPB菌群豐度和多樣性的主要影響因子.實驗結(jié)果表明冬季的川西高寒森林溪流中,AAPB類群的豐度低,但是它們高度動態(tài)變化,并且與其他淡水環(huán)境中的該類群的同源性低.
好氧不產(chǎn)氧光合菌;豐度和多樣性;高寒森林溪流;季節(jié)性凍融循環(huán)
好氧不產(chǎn)氧光合菌(AAPB)是一類含有細菌葉綠素 a,且能同時進行光合代謝和有機物質(zhì)代謝吸收能量的原核生物[1-2].海洋中的AAPB已經(jīng)被深入研究,這類原核生物在自然環(huán)境中占據(jù)著廣泛的生態(tài)位[2-5].然而,淡水環(huán)境中的這一類群被關(guān)注的相對較少[6-7].另一方面,AAPB的豐度只維持極小的比例,并在不同的環(huán)境中差異極大[8-9]. AAPB具有靈活的代謝活性, 并廣泛分布在水體透光層,AAPB在水生食物鏈和整個生物地球化學(xué)循環(huán)過程中具有十分重要的作用[10].已有研究表明,絕大多數(shù)的AAPB都歸屬于α-、β-和 γ-變形菌綱,并且在不同的環(huán)境中,α-或者 γ-變形菌綱占據(jù)群落優(yōu)勢地位,群落結(jié)構(gòu)組成也隨著不同的生態(tài)環(huán)境而發(fā)生變化[11].但是,在極端的高寒森林溪流環(huán)境中相關(guān)研究比較匱乏.
光、可溶性有機碳(DOC)、鹽、硝態(tài)氮和氨等,都可能影響水體中AAPB的分布、豐度和群落組成[10-11].在河口和海洋中的研究結(jié)果表明AAPB與葉綠素a的含量呈顯著正相關(guān)性[12].同時,基于pufM基因?qū)APB季節(jié)性變化的研究結(jié)果表明,AAPB會受到環(huán)境因子、溫度、DOC、葉綠素 a以及光照的深刻影響從而表現(xiàn)出高度的季節(jié)性動態(tài)特征[13].但是,在溫帶的高寒森林中,關(guān)于環(huán)境因子對AAPB類群的組成結(jié)構(gòu)及多樣性的調(diào)控研究非常缺乏,致使對AAPB這一類群在高寒森林溪流環(huán)境中的分布、豐度、活性及其季節(jié)性動態(tài)的理解也變得薄弱.
川西高山/亞高山森林地處青藏高原東緣和長江上游地區(qū),是長江流域的水源涵養(yǎng)地,為全球氣候變化最敏感的區(qū)域之一[14],她也是長江流域最重要的“水塔”,在水源涵養(yǎng)、指示全球氣候變化、生物多樣性保育等方面具有十分重要且不可替代的作用和地位,其結(jié)構(gòu)和功能直接關(guān)系到岷江流域乃至整個長江上游的生態(tài)安全[15].課題組在研究區(qū)域海拔3600~3700m典型高寒森林范圍內(nèi),沿主河道兩岸一共找到 18條森林溪流匯入其中[16],這些不同性質(zhì)的溪流將森林、河岸和河流(湖泊)連接成為一個巨大的水源涵養(yǎng)體.這些溪流作為開放的生態(tài)系統(tǒng)并且廣泛分布,鮮有人為干擾,低鹽寡營養(yǎng)、低溫以及具有高寒森林典型的特點,包括從冬季雪被的完全覆蓋到夏季高輻射強度的季節(jié)性變化.本文結(jié)合同步溫度動態(tài)和水環(huán)境特征監(jiān)測,采用實時熒光定量PCR和克隆文庫的方法檢測了川西高寒森林溪流冬季凍融循環(huán)3個關(guān)鍵時期(凍結(jié)前期、深凍期和融化期)AAPB的豐度、結(jié)構(gòu)組成和多樣性及其季節(jié)性變化,探究影響AAPB群落結(jié)構(gòu)季節(jié)性變化的主要環(huán)境因子,以期為深入研究全球氣候變暖下,高寒森林溪流環(huán)境對微生物群落的影響,理解氣候變暖情景下高寒森林生態(tài)系統(tǒng)的區(qū)域響應(yīng)提供一定科學(xué)理論依據(jù).
1.1 研究區(qū)域概況
研究區(qū)域位于四川省理縣畢棚溝高山森林生 態(tài) 系統(tǒng) 定 位站(31°14′~31°19′N,102°53′~102°57′E,海拔 2458~4619m),地處青藏高原東緣與四川盆地的過渡帶.區(qū)域氣候?qū)俚ぐ?松潘半濕潤氣候,隨著海拔上升,氣候呈現(xiàn)暖溫帶、溫帶、寒溫帶、亞寒帶和冰凍帶的垂直分布規(guī)律.該區(qū)域年降水量隨著海拔高度的變化而變化,大約為801~850mm,降雨主要分布在 6~9月,年均氣溫2~4℃,最高氣溫(7月)23℃,最低氣溫(1月)-18℃.研究區(qū)域土壤季節(jié)性凍結(jié)期為每年 11月初~次年4月中旬,且季節(jié)性凍融期長達5~6個月,凍融作用明顯.區(qū)域集水區(qū)系岷江上游的雜谷腦河第二大支流梭羅溝的支流,集水區(qū)面積 179km2,河長31km,年平均流量3.7m3/s.高寒森林由四川紅杉和方枝柏構(gòu)成冠層優(yōu)勢物種;康定柳和高山杜鵑構(gòu)成了高寒森林河岸優(yōu)勢植物[14,16-17].
1.2 樣品采集
圖1 研究樣地溪流采樣位點(A, B和C)Fig.1 A pattern diagram showing the experimental streams (A, B and C) in the study site
基于前期調(diào)查的結(jié)果[26],本實驗在研究區(qū)域內(nèi)沿主河道海拔 3582m 的位置選擇3條典型的高寒森林溪流作為重復(fù)采樣位點(圖 1).分別于2013年12月23日(凍結(jié)前期)、2014年3月10日(深凍期)和2014年4月23日(融化期)在各采樣點用滅菌的安剖瓶采集表層10~20cm的溪流水,低溫保存帶回實驗室.在每次采樣時即時測定采樣點水樣pH值和流速,并且在各采樣點放置1個紐扣式溫度計,同步記錄采樣點水溫每兩小時變化情況(圖2).
圖2 2013-11-13~2014-04-30高寒森林溪流和大氣溫度動態(tài)Fig.2 Temperature dynamics of the stream and the atmosphere in the alpine fir forest from Nom 13, 2013 to Aug 30, 2014)
1.3 樣品分析
將各水樣500mL用0.22μm的微孔濾膜過濾,濾液采用雙指示劑中和法測定碳酸氫根(HCO32)含量,紫外分光光度法測定磷酸根(PO43)含量,離子色譜測定銨態(tài)氮(NH4+N)和硝態(tài)氮(NO3N),multi N/C 2100, analytikjena測定水溶性有機碳(DOC)等[18],結(jié)果見表1.
表1 采樣期溪流水特征、AAPB pufM基因豐度及pufM基因所占細菌16S rRNA基因的比例Table 1 Stream water physicochemical characteristics, AAPB puf M gene numbers and % pufM gene of bacterial 16S rRNA gene in the researched area during each sampling time
濾膜采用-80℃冷凍干燥[19],一部分按照文獻[20-21]的方法,采用高效液相色譜法檢測葉綠素a和細菌葉綠素 a的含量.為了保證色素不被光降解,樣品均在暗光條件下處理[21],在采樣期內(nèi)均未檢測到細菌葉綠素a,結(jié)果見表1.
另一部分濾膜參照文獻[22]的方法對總DNA進行提取與純化.AAPB pufM 基因引物為pufM-557F (5-TACGGSAACCTGTWCTAC-3)/ pufM-750R (5-CCATSGTCCAGCGCCAGAA-3),細菌 16S rRNA 基因引物為 338f (5-CCTACGGGAGGCAGCAG-3)/518r(5-ATTACCGCGGCTGCTGG-3)[2,6,23].采用經(jīng)過瓊脂糖凝膠電泳回收純化后的總DNA 10~100ng作模板,進行PCR擴增.擴增得到的pufM基因產(chǎn)物純化后與pUC19載體進行連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)細胞DH5α,在含有Ampicillin、IPTG和X-Gal的LB瓊脂平板培養(yǎng)基上37℃培養(yǎng)24h,挑選陽性克隆.共創(chuàng)建 3個 pufM 基因克隆文庫(S-FP、S-FPD和S-TP).用M13-47和RV-M引物對進行菌落PCR擴增后,選取陽性克隆并提取質(zhì)粒供qPCR反應(yīng)的標準曲線使用.質(zhì)粒濃度采用ScanDrop100超微量核酸蛋白測定儀測定,然后分別進行10倍梯度系列稀釋以作為定量PCR擴增的標準品進行擴增,根據(jù)所得標準曲線計算得出樣品中的基因拷貝數(shù),最后以每克樣品(干重)中的基因拷貝數(shù)為單位進行分析.PCR反應(yīng)效率和標準曲線的相關(guān)系數(shù)分別為:細菌,107.5%和r2= 0.998; AAPB,103.3%和r2= 0.995.
1.4 數(shù)據(jù)處理與分析
測序結(jié)果采用DNAstar和Cluster軟件進行序列分析,下載最相似的菌株序列作為系統(tǒng)發(fā)育樹的參考序列.采用 MEGA軟件,Neighborjoining法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,自展數(shù)為 1000.克隆文庫的 Shannon-Weaver等指數(shù)采用 PAST program基于OTU水平計算.基因豐度和多樣性指數(shù)采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件進行單因素方差分析(ANOVA),多重比較采用最小顯著差異法(LSD),AAPB多樣性和基因豐度與環(huán)境因子的相關(guān)關(guān)系采用Pearson法分析,AAPB群落與理化因子的冗余分析(RDA)采用Canoco for Windows 4.5軟件.數(shù)據(jù)整理、計算與作圖均采用Microsoft Excel 2013軟件.測序所得的基因序列在GenBank中的登錄號為KT279202 ~KT279344.
2.1 AAPB pufM基因豐度
熒光定量PCR結(jié)果顯示,冬季不同凍融時期的溪流水中均檢測到 AAPB pufM基因.從凍結(jié)前期到融化期,AAPB pufM基因豐度呈顯著增加趨勢,凍結(jié)前期、深凍期和融化期每毫升溪流水中的拷貝數(shù)分別為(2.80±0.19)×104、(4.65±0.30)× 104和(5.79±0.19)×104;各個時期AAPB pufM基因所占細菌16S rRNA基因的比例則表現(xiàn)出先降低再升高的趨勢,3個時期分別為 1.625%、1.562%和1.630%(表1).
2.2 AAPB pufM 基因多樣性
表2 不同克隆文庫pufM 基因多樣性Table 2 Diversity of pufM gene in different clone libraries
圖3 AAPB pufM基因克隆文庫稀釋曲線Fig.3 Rarefaction curve analysis of the AAPB pufM genes
采用克隆文庫的方法檢測了 3個不同時期的AAPB群落結(jié)構(gòu),構(gòu)建了3個克隆文庫(S-FP、S-FPD和S-TP).總共獲得了143 條pufM 基因序列用于系統(tǒng)發(fā)育分析,其中S-FP 49條,S-FPD 53條,S-TP 41條.這些條帶在各自庫中的覆蓋度分別為 S-FP 83.67%,S-FPD 60.38%及 S-TP 63.41%(表2).稀釋曲線(圖3)顯示3個克隆文庫并未飽和,說明在 3個關(guān)鍵時期依然存在更豐度的AAPB物種.基于Zeng等的研究,pufM基因序列以cutoff = 0.06和0.15分別在種和屬水平進行同源性和系統(tǒng)發(fā)育分析[24],本實驗將得到的 143條序列,以cutoff = 0.06分為78個OTUs,主要歸屬于 α-變形菌綱(18 OTUs,占所有序列的23.68%)和 β-變形菌綱(19 OTUs,占所有序列的24.36%)(圖 4).α-變形菌綱主要包括紅假單胞菌屬(Rhodopseudomonas sp.)、 甲基桿菌 屬(Methylobacterium sp.)和 玫 瑰 桿 菌 屬(Roseobacter sp.)的細菌,而 β-變形菌綱主要包括紅長命菌屬(Rubrivivax sp.)、纖毛菌屬(Leptothrix sp.)和3個其他類群的細菌.另外,還有7個OTUs屬于γ-變形菌綱.通過分析3個克隆文庫,從凍結(jié)前期到融化期,占優(yōu)勢地位的 AAPB類群發(fā)生一定的改變,凍結(jié)前期以 α-變形菌綱為主要類群,而β-變形菌綱在深凍期和融化期占據(jù)優(yōu)勢地位.
圖4 AAPB pufM基因序列系統(tǒng)發(fā)育分析Fig.4 Phylogenetic relationship (neighbor-joining tree ) of pufM gene clone sequences
2.3 AAPB群落結(jié)構(gòu)與環(huán)境因子的相關(guān)性
為了解環(huán)境因子對AAPB的影響,對AAPB豐度及其群落結(jié)構(gòu)與環(huán)境因子之間的相關(guān)性進行了分析,結(jié)果見表3.AAPB pufM基因豐度分別與細菌16S rRNA基因豐度,葉綠素a和溫度呈極顯著的正相關(guān)性(P<0.01),且與DOC呈顯著正相關(guān)性(P<0.05),將環(huán)境因子與 AAPB群落結(jié)構(gòu)進行冗余分析(RDA)(圖 5),結(jié)果顯示葉綠素 a、溫度和DOC與α-變形菌綱細菌、β-變形菌綱細菌及一些未知細菌類群關(guān)系密切,呈正相關(guān)性;而葉綠素a、溫度和DOC均與γ-變形菌綱細菌呈負相關(guān)性.γ-變形菌綱細菌受到水流流速、銨態(tài)氮含量、硝態(tài)氮含量、碳酸氫根含量、磷酸根含量及 pH值的深刻影響,均呈正相關(guān)性.同時這些因子均與 α-變形菌綱細菌、β-變形菌綱細菌及未知的細菌類群呈負相關(guān)性.另外,所檢測的環(huán)境因子與AAPB的Shannon-Wiener多樣性指數(shù)呈正相關(guān)性.
表3 AAPB pufM基因豐度、細菌16S rRNA基因豐度與環(huán)境因子之間的相關(guān)性分析Table 3 Pearson’s correlation analyses among the abundance of bacteria 16S rRNA gene and AAPB pufM gene, and environmental variables
圖5 環(huán)境因子與AAPB群落結(jié)構(gòu)的RDA排序Fig.5 RDA ordination diagrams showing correspondence between AAPB community structures and environmental variables
AAPB群落結(jié)構(gòu)及其動態(tài)對微生物生態(tài)學(xué)過程十分重要,海洋和河口環(huán)境中AAPB類群的系統(tǒng)發(fā)育,結(jié)構(gòu)組成及其與環(huán)境之間的關(guān)系都有深入的研究[12].但是,溫帶高寒森林溪流生境中這類菌群的研究相對較少[13].因此,本研究對冬季凍融時期高寒森林溪流 AAPB的豐度和結(jié)構(gòu)動態(tài)的深入理解具有十分重要的生態(tài)學(xué)意義.
冬季土壤凍融循環(huán)的3個關(guān)鍵時期,川西高寒森林溪流中均檢測到 AAPB,其豐度較低并呈動態(tài)變化,豐度值在已有研究的范圍內(nèi)[13].凍融循環(huán)是高寒森林生態(tài)系統(tǒng)關(guān)鍵的季節(jié)性轉(zhuǎn)變時期[14,17],其凍融特征的差異使得微生物結(jié)構(gòu)存在顯著的變化.AAPB豐度從凍結(jié)前期到融化期呈增加趨勢,而其所占細菌豐度的比例卻先降低后增長,這些結(jié)果反映了AAPB這一類群與其他微生物類群不同的季節(jié)性模式和作用,以及與其他生理類群的細菌不同的環(huán)境響應(yīng).這可能是因為AAPB個體和基因組都較普通細菌個體大,這使得它們需要更多的生存能量[25],因此在寡營養(yǎng)的高寒森林溪流中,相對于普通細菌,盡管AAPB能通過光合作用獲得能量,卻沒有競爭優(yōu)勢.
已有研究認為光照、營養(yǎng)物質(zhì)、溫度和葉綠素a可能是調(diào)控AAPB豐度的主要因子[10,13].本實驗結(jié)果表明溫度、葉綠素a和DOC是川西高寒森林溪流中AAPB時空分布的主要影響因子,它們強烈影響AAPB的豐度和結(jié)構(gòu),同時可溶性磷和流速也有一定程度的貢獻.與其它生境中的研究結(jié)果不同,川西高寒森林溪流中AAPB豐度與pH值、碳酸氫根、銨態(tài)氮和硝態(tài)氮呈負相關(guān)性.同時,AAPB豐度與溫度的相關(guān)性極強,這也與其它高山湖泊中的較弱相關(guān)性結(jié)果截然不同[5].自從被發(fā)現(xiàn)以來,AAPB的光合代謝方式在寡營養(yǎng),尤其是低碳的環(huán)境中具有重要的競爭優(yōu)勢[8],大部分的研究認為 AAPB在環(huán)境較好的條件下生長更好[3,6],但也有研究得到相反結(jié)果[12-13].本研究結(jié)果顯示川西高寒森林溪流中 AAPB豐度隨著葉綠素a和DOC的增加而增加,均呈極顯著正相關(guān)性(P<0.01),這與寡營養(yǎng)高山湖泊和海洋中DOC是調(diào)控AAPB豐度的主要因子之一的研究結(jié)果一致[26].同時可以推測,在寡營養(yǎng)的高寒森林溪流中,光合作用相關(guān)基因的表達并不活躍,但是營養(yǎng)物質(zhì)濃度參與決定了pufM基因攜帶者的存在和豐度.比如,本研究中AAPB的豐度比富營養(yǎng)化的太湖中AAPB的豐度低3個數(shù)量級[27].
本研究中 AAPB的群落結(jié)構(gòu)多樣性也與淡水環(huán)境中的相關(guān)研究結(jié)果有差異[5].稀釋曲線顯示所構(gòu)建的克隆文庫并不完全飽和,而且各個時期 OTUs的精確數(shù)量可能被低估,但是實驗結(jié)果依然可以表明各個時期pufM基因的高度多樣性.同時 Shannon-Weaver指數(shù)(2.48-3.17)也表現(xiàn)出較其它環(huán)境中高的特點,甚至比烏梁素海Shannon-Weaver指數(shù)還高[28].系統(tǒng)發(fā)育分析結(jié)果顯示AAPB豐富的遺傳結(jié)構(gòu)組成除了α-變形菌綱的紅假單胞菌屬、甲基桿菌屬、玫瑰桿菌屬,β-變形菌綱的紅長命菌屬和纖毛菌屬及 γ-變形菌綱的一些類群外,還有一些與 Arctic spring bacterium sp.和Roseateles sp.同源性較高的類群.甚至還有許多未知的AAPB類群,它們在系統(tǒng)發(fā)育分析中組成另一支,并未與參考序列混淆,這表明了川西高寒森林溪流中可能蘊藏著攜帶pufM基因的新的微生物資源.已有大量研究表明β-變形菌綱是淡水生境中的優(yōu)勢 AAPB類群[7],但是本研究發(fā)現(xiàn),β-變形菌綱并不總是在川西高寒森林溪流環(huán)境中占據(jù)優(yōu)勢地位,α-變形菌綱的優(yōu)勢地位在冬季凍結(jié)前期較β-變形菌綱更突出,只是隨著時間的推移以及環(huán)境因子的變化,這種優(yōu)勢地位開始下降.另一方面,與海洋環(huán)境聯(lián)系緊密的γ-變形菌綱在川西高寒森林溪流中也被檢測到.但是,被認為在高山湖泊和河流中廣泛分布的紅育菌屬(Rhodoferax sp.)和鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas sp.),卻沒有被檢測到.這可能與溫度有關(guān),也可能是由于溪流環(huán)境冬季紫外輻射較低的原因[7,9].
4.1 川西高寒森林冬季溪流中AAPB豐度較低,在凍融循環(huán)凍結(jié)前期僅(2.80±0.19)×104bp/mL;深凍期迅速增加到(4.65±0.30)×104bp/mL;融化期達到(5.79±0.19)×104bp/mL.同時,AAPB 群落結(jié)構(gòu)多樣性豐富且高度動態(tài)變化,凍融循環(huán)凍結(jié)前期α-變形菌綱細菌為 AAPB 優(yōu)勢類群,而深凍期和融化期則由β-變形菌綱細菌占據(jù)優(yōu)勢地位.
4.2 環(huán)境因子共同調(diào)控著AAPB的豐度、多樣性及其群落結(jié)構(gòu).其中,葉綠素 a、可溶性有機碳和溫度是主要的調(diào)控因子,并正調(diào)控α-變形菌綱和β-變形菌綱,負調(diào)控γ-變形菌綱.
[1]Boeuf D, Humily F, Jeanthon C. Diversity of Arctic Pelagic Prokaryotes with an emphasis on photoheterotrophic bacteria: a review [J]. Biogeosciences Discussions, 2014,11(2):2419—455.
[2]Béjà O, Suzuki M T, Heldelberg J F, et al. Unsuspected diversity among marine aerobic anoxygenic phototrophs [J]. Nature, 2002, 415:630—633.
[3]Kolber Z S, Plumley F G, Lang A S, et al. Contribution of aerobic photoheterotrophic bacteria to the carbon cycle in the ocean [J]. Science, 2001,292:2492—2495.
[4]Kalashnikov A M, Gaisin V A, Sukhacheva M V. Anoxygenic phototrophic bacteria from microbial communities of Goryachinsk thermal spring (Baikal Area, Russia) [J]. Microbiology, 2014,83(4):407—421.
[5]Ma?ín M, Nedoma J, Pechar L, et al. Distribution of aerobic anoxygenic phototrophs in temperate freshwater systems [J]. Environmental Microbiology, 2008,10:1988—1996.
[6]Joan C, Emilio O C. Environmental controls and composition ofanoxygenic photoheterotrophs in ultraoligotrophic high-altitude lakes (Central Pyrenees) [J]. Environmental Microbiology Reports, 2004,6(2):145—151.
[7]Salka I, Cuperova Z, Ma?ín M, et al. Rhodoferax-related pufM gene cluster dominates the aerobic anoxygenic phototrophic communities in German freshwater lakes [J]. Environmental Microbiology, 2011,13:2865—2875.
[8]Kolber Z S, Van Dover C L, Niederman R A, et al. Bacterial photosynthesis in surface waters of the open ocean [J]. Nature, 2000,407:177—179.
[9]Waidner L A, Kirchman D L. Aerobic anoxygenic photosynthesis genes and operons in uncultured bacteria in the Delaware River [J]. Environmental Microbiology, 2005,7:1896—1908.
[10]Monica R S, Matthew T C, David L K. Leucine incorporation by aerobic anoxygenic phototrophic bacteria in the Delaware estuary [J]. International Society for Microbial Ecology, 2014,8:2339—2348.
[11]Jeanthon C, Boeuf D, Dahan O, et al. Diversity of cultivated and metabolically active aerobic anoxygenic phototrophic bacteria along an oligotrophic gradient in the Mediterranean Sea [J]. Biogeoscience, 2011,8:1955—1970.
[12]Lehours A C, Cottrell M T, Dahan O, et al. Summer distributionand diversity of aerobic anoxygenic phototrophic bacteria in the Mediterranean Sea in relation to environmental variables [J]. FEMS Microbiology Letters, 2010,74:397—409.
[13]Ferrera I, Borrego C M, Salazar G, et al. Marked seasonality of aerobic anoxygenic phototrophic bacteria in the coastal NW Mediterranean Sea as revealed by cell abundance, pigment concentration and pyrosequencing of pufM gene [J]. Environmental Microbiology, 2014,16(9):2953—2965.
[14]岳 楷,楊萬勤,彭 艷,等.高寒森林溪流對凋落葉分解過程中木質(zhì)素降解的影響 [J]. 植物生態(tài)學(xué)報, 2016,40(9):893—901.
[15]何奕忻,吳 寧,朱求安,等.青藏高原東北部5000年來氣候變化與若爾蓋濕地歷史生態(tài)學(xué)研究進展 [J]. 生態(tài)學(xué)報, 2014,34(7):1615—1625.
[16]李 俊,吳福忠,楊萬勤,等.長江上游高山森林小溪流磷輸出及其匯流特征 [J]. 環(huán)境科學(xué)學(xué)報, 2015,35(4):1136—1142.
[17]He W, Wu F Z, Zhang D J, et al. The effects of forest gaps on cellulose degradation in the foliar litter of two shrub species in an alpine fir forest [J]. Plant and Soil, 2015,393(1):109—122.
[18]Chon K, Sarp S, Lee S, et al. Evaluation of a membrane bioreactor and nanofiltration for municipal waste water reclamation: Trace contaminant control and fouling mitigation [J]. Desalination, 2011,272(1):128—134.
[19]白 潔,劉小沙,侯 瑞,等.南海南部海域浮游細菌群落特征及影響因素研究 [J]. 中國環(huán)境科學(xué), 2014,34(11):2950—2957.
[20]Mantoura R F C, Llewellyn C A. The rapid determination of algal chlorophyll and carotenoid pigments and their breakdown products in natural waters by reverse-phase high performance liquid chromatography [J]. Analytica Chimica Acta, 1983,151:297—314.
[21]Ruivo M, Cartaxana P, Cardoso M I, et al. Extraction and quantification of pigments in aerobic anoxygenic phototrophic bacteria [J]. Limnology and Oceanography: Methods, 2014,12:338—350.
[22]Wang A, Wu F Z, Yang W Q, et al. Abundance and composition dynamics of soil ammonia-oxidizing archaea in an alpine fir forest on the eastern Tibetan Plateau of China [J]. Canadian Journal of Microbiology, 2012,58:572—580.
[23]Bakkea I, Schryverb P De, Boonb N, et al. PCR-based community structure studies of Bacteria associated with eukaryotic organisms: A simple PCR strategy to avoid co-amplification of eukaryotic DNA [J]. Journal of Microbiological Methods, 2011,84(2):349—351.
[24]Zeng Y H, Chen X H, Jiao N Z. Genetic diversity assessment of anoxygenic photosynthetic bacteria by distance based grouping analysis of pufM sequences [J]. Letters in Applied Microbiology, 2007,45(6):639?645.
[25]Sieracki M E, Gilg I C, Thier E C, et al. Distribution of planktonic aerobic anoxygenic photoheterotrophic bacteria in the northwest Atlantic [J]. Limnology and Oceanography, 2006,51(1):38—46.
[26]張 瑤.海洋典型功能細菌群的生態(tài)過程研究 [D]. 廈門:廈門大學(xué), 2006.
[27]Shi L M, Cai Y F, Chen Z T, et al. Diversity and abundance of aerobic anoxygenic phototrophic bacteria in two cyanobacterial bloom-forming lakes in China [J]. Annales De Limnologie-International Journal of Limnology, 2010,46:233—239.
[28]何一平.基于 pufM 基因的烏梁素海好氧不產(chǎn)氧光合細菌系統(tǒng)發(fā)育多樣性分析 [D]. 呼和浩特:內(nèi)蒙古大學(xué), 2010.
The diversity of aerobic anoxygenic phototrophic bacteria in a high-frigid forest stream of West Sichuan
HUANGChun-ping1,2, WU Fu-zhong1, YANG Wan-qin1, YUE Kai1, ZHANG Chuan1, ZHANG Jian1*(1.Key laboratory of Ecological Forestry Engineering of Sichuan Province, Institute of Ecology & Forest, Sichuan Agricultural University, Chengdu 611130, China;2.College of life science, Sichuan Normal University, Chengdu 610101, China). China Environmental Science, 2017,37(6):2332~2339
In order to understand AAPB community structure and distribution in a high-frigid forest stream with cold environment, here, a field investigation was carried out in West Sichuan, China. Water was sampled in the stream at onset of the freezing period (FP), the deep freezing period (FPD) and the thawing period (TP). The methods of real-time fluorescent quantitative PCR and clone library were used to check the richness and diversity of AAPB. Temperature and other water characters were also observed to analysis the relationships between environment and AAPB. The results showed that low abundance (2.80 ± 0.19) ×104bp / mL of AAPB was observed, at FP, but which rapidly increased to (4.65 ± 0.30) ×104bp / mL at FPD, then reached to (5.79 ± 0.19) ×104bp / mL at TP. Phylogenetic relationships from clone libraries displayed that Alphaproteobacteria classes dominated AAPB at FP, but Betaproteobacteria classes dominated AAPB at both FPD and TP. In addition, correlationships revealed that the concentration of chlorophyll a and dissolved organic carbon, as well as average temperature had closely relationships with AAPB abundance and diversity during the seasonal freeze-thaw period. All the results suggest that AAPB have low abundance but exhibit highly dynamical patters in the high-frigid forest streams and their communities share low homology with those in other freshwater.
aerobic anoxygenic phototrophic bacteria (AAPB);abundance and diversity;high-frigid forest stream;seasonal freeze-thaw cycle
X172
A
1000-6923(2017)06-2332-08
黃春萍(1980-),女,四川樂山人,副教授,博士,主要從事微生物生態(tài)學(xué)和環(huán)境微生物學(xué)方向研究.發(fā)表論文20余篇.
2016-11-10
國家自然科學(xué)基金資助項目(31500358,31570445, 31570601)
* 責(zé)任作者, 教授, sicauzhangjian@163.com