王芳+康超+李永霞
摘要:根據(jù)GenBank中弗氏檸檬酸桿菌ompA基因序列,設(shè)計(jì)1對特異性引物,PCR擴(kuò)增弗氏檸檬酸桿菌ompA基因片段,T克隆到pMD-18T載體上構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)陽性質(zhì)粒。通過SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR反應(yīng)條件優(yōu)化,建立弗氏檸檬酸桿菌SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR診斷方法,結(jié)果顯示重復(fù)性好、特異性高,靈敏度可達(dá)1.0×101拷貝/μL,說明建立的弗氏檸檬酸桿菌SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR方法適合于弗氏檸檬酸桿菌病臨床疑似病料樣品的快速診斷。對分離得到的83株弗氏檸檬酸桿菌進(jìn)行藥敏試驗(yàn),結(jié)果表明冷水魚養(yǎng)殖中耐藥性問題日益嚴(yán)重。
關(guān)鍵詞:弗氏檸檬酸桿菌;熒光定量PCR;快速診斷;耐藥性
中圖分類號: S855.1+2 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號:1002-1302(2016)11-0286-04
弗氏檸檬酸桿菌(Citrobacter freundii)是革蘭氏陰性菌、短桿菌,該菌在水體、土壤中廣泛存在,是一種條件致病菌,可引起人、畜、魚類的敗血癥[1-3]。近幾年,貴州省冷水魚的養(yǎng)殖發(fā)展迅速,主要品種有虹鱒、金鱒、斑點(diǎn)鱒鮭、鱘魚、大鯢。隨著冷水魚養(yǎng)殖場(戶)集約化程度不斷提高,苗種流通交換量不斷加大,病害逐漸增多,病情不斷愈趨復(fù)雜。目前,弗氏檸檬酸桿菌感染的病害報(bào)道主要集中在鱘魚、蝦、中華鱉,而鱒鮭魚、大鯢報(bào)道較少。感染該菌的鱘魚、蝦、中華鱉、鱒鮭魚和大鯢出現(xiàn)消化不良或拒食,頭部、腹部腫大,輕度腹水,皮下有出血點(diǎn)等癥狀[4-7]。傳統(tǒng)的細(xì)菌分離鑒定耗時(shí)較長,不能快速、準(zhǔn)確地得到鑒定結(jié)果。熒光定量PCR技術(shù)進(jìn)行疾病病原菌的鑒定和診斷,較普通PCR反應(yīng)程序快、特異性強(qiáng)、靈敏度高、重復(fù)性好、結(jié)果簡單可視。本研究根據(jù)GenBank中弗氏檸檬酸桿菌ompA序列,設(shè)計(jì)1對特異性引物,PCR擴(kuò)增出ompA基因片段,克隆到pMD-18T載體上,構(gòu)建陽性標(biāo)準(zhǔn)品。通過對熒光定量PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化,建立弗氏檸檬酸桿菌的SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR診斷方法,以期對弗氏檸檬酸桿菌臨床疑似病樣進(jìn)行快速檢測和診斷。同時(shí),對冷水魚養(yǎng)殖場分離得到的弗氏檸檬酸桿菌進(jìn)行耐藥性分析,為探討防治弗氏檸檬酸桿菌病提供科學(xué)依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)材料
試驗(yàn)菌株包括弗氏檸檬酸桿菌、致病性嗜水氣單胞菌、熒光假單胞菌、黃桿菌、遲緩愛德華菌,由貴州重大疫病監(jiān)測防制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保存。
主要試劑包括普通PCR酶、SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR酶、核酸染料Goldview、1×TAE電泳緩沖液、DL2000、DH5α感受態(tài)細(xì)胞、細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒、PBS緩沖液等、pMD-18T連接載體,均購自生工生物工程(上海)股份有限公司;藥敏試紙片,購自杭州微生物試劑有限公司;其他為國產(chǎn)分析純試劑。
1.2 試驗(yàn)方法
1.2.1 引物設(shè)計(jì) 根據(jù)GenBank中弗氏檸檬酸桿菌ompA序列,設(shè)計(jì)1對引物,上游引物為5′-CTTGCTCCTTGGGTGACGAGTGG-3′,下游引物為5′-TCTGGGGTCTCCTTCGTAAATGC-3′,預(yù)計(jì)擴(kuò)增產(chǎn)物大小為117 bp,引物為生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
1.2.2 核酸的提取
1.2.2.1 組織樣品 取患病冷水魚肝臟組織約2.0 g,加入0.1 mol/L PBS緩沖液5 mL進(jìn)行研磨,然后置于-70 ℃低溫冰箱中反復(fù)凍融3次,5 000 r/min離心5 min,取上清液 970 μL 加入10% SDS 20 μL,20 mg/mL蛋白酶K 10 μL,55 ℃ 孵育30 min,5 000 r/min離心5 min,取上清液200 μL,用細(xì)菌基因組DNA試劑盒提取基因組。
1.2.2.2 細(xì)菌樣品 細(xì)菌樣品DNA的提取參照細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒說明書進(jìn)行。
1.2.3 pMD-18T- fre陽性標(biāo)準(zhǔn)品的制備 通過PCR擴(kuò)增獲得弗氏檸檬酸桿菌ompA基因片段,PCR反應(yīng)程序?yàn)椋?4 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,退火溫度55 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min,30個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min。將擴(kuò)增的PCR產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒回收DNA片段,與pMD-18T克隆載體連接,轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞DH5α,重組體命名為pMD-18T-fre,同時(shí)送往生工生物工程(上海)股份有限公司測序。用紫外分光光度計(jì)測定測序正確的重組質(zhì)粒pMD-18T-fre在260、280 nm處的吸光度,得到重組質(zhì)粒的濃度和純度,進(jìn)行10倍梯度倍比稀釋。
1.2.4 熒光定量PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化 熒光定量PCR反應(yīng)體系為25 μL,對退火溫度在50、55、60 ℃等3個(gè)溫度上進(jìn)行優(yōu)化,引物濃度在5、10、20 μmol/L等3個(gè)濃度上進(jìn)行優(yōu)化,以確定最佳反應(yīng)條件。反應(yīng)體系為:上下游引物各1 μL,Premix Ex Taq 12.5 μL,ROX Reference Dye 0.5 μL,模板 1 μL,用超純水補(bǔ)足至25 μL,同時(shí)以超純水作為空白對照。反應(yīng)條件為:94 ℃ 10 s;94 ℃ 10 s,退火溫度(50、55、60 ℃)10 s,72 ℃ 10 s,40個(gè)循環(huán)。
1.2.5 熒光定量PCR反應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)曲線的構(gòu)建 用紫外分光光度計(jì)測定pMD-18T-fre質(zhì)粒,計(jì)算出濃度、純度和DNA拷貝數(shù),將標(biāo)準(zhǔn)陽性質(zhì)粒進(jìn)行10倍倍比稀釋,以“1.2.4”節(jié)下優(yōu)化好的條件進(jìn)行擴(kuò)增,每個(gè)稀釋倍數(shù)進(jìn)行3次重復(fù),以核酸拷貝數(shù)為橫坐標(biāo),以Ct值為縱坐標(biāo)建立標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.6 敏感性試驗(yàn) 將10倍倍比稀釋后的pMD-18T-fre質(zhì)粒分別進(jìn)行熒光定量PCR反應(yīng),每個(gè)稀釋倍數(shù)3次重復(fù),以研究建立的熒光定量PCR診斷的敏感性。
1.2.7 特異性試驗(yàn) 分別以弗氏檸檬酸桿菌、致病性嗜水氣單胞菌、熒光假單胞菌、黃桿菌、遲緩愛德華菌DNA進(jìn)行熒光定量PCR反應(yīng),每種細(xì)菌DNA 3次重復(fù),以研究建立的熒光定量PCR診斷方法的特異性。
1.2.8 重復(fù)性試驗(yàn) 應(yīng)用建立的熒光定量PCR方法重復(fù)檢測弗氏檸檬酸桿菌DNA標(biāo)準(zhǔn)陽性樣品3次,以研究檢驗(yàn)結(jié)果的可靠性。
1.2.9 建立的熒光定量PCR對臨床樣品的檢測 對2013年1月至2015年5月貴州省貴陽市、黔西南、銅仁地區(qū)幾個(gè)規(guī)?;V鮭魚、大鯢養(yǎng)殖場以及散養(yǎng)戶采集的356份疑似鱒鮭魚、大鯢病料(肝臟),135份大鯢餌料魚病料,184份發(fā)病鱒鮭魚、大鯢養(yǎng)殖場水樣,應(yīng)用建立的熒光定量PCR方法進(jìn)行檢測,同時(shí)應(yīng)用傳統(tǒng)的細(xì)菌分離鑒定進(jìn)行檢測比對。
1.2.10 弗氏檸檬酸桿菌的耐藥性分析 對2013年1月至2015年5月貴州省貴陽市、黔西南、銅仁地區(qū)幾個(gè)規(guī)?;渌~養(yǎng)殖場分離得到的弗氏檸檬酸桿菌運(yùn)用藥敏紙片法檢測分離菌對18種抗生素藥物的敏感性,藥敏試紙片包括青霉素、氨芐西林、頭孢噻吩、頭孢拉定、頭孢唑林、鏈霉素、慶大霉素、諾氟沙星、恩諾沙星、氟苯尼考、強(qiáng)力霉素、紅霉素、利福平、呋喃唑酮、卡那霉素、土霉素、林可霉素、磺胺二甲嘧啶鈉。
2 結(jié)果與分析
2.1 pMD-18T-fre陽性標(biāo)準(zhǔn)品的制備
擴(kuò)增的弗氏檸檬酸桿菌ompA片段大小為117 bp,無非特異性片段產(chǎn)生(圖1)。將生工生物工程(上海)股份有限公司測序結(jié)果與GenBank中的ompA基因序列進(jìn)行比對,核苷酸相似度為98.9%~100.0%。
2.2 熒光定量PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化
通過熒光定量PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化,在25 μL反應(yīng)體系中,最佳反應(yīng)條件為Premix Ex Taq 12.5 μL、ROX Reference Dye 0.5 μL、10 μmol/L上下游引物各1 μL、模板2 μL、超純水8 μL,反應(yīng)條件為:94 ℃ 10 s;94 ℃ 10 s,退火溫度55 ℃ 10 s,72 ℃ 10 s,40個(gè)循環(huán)。
2.3 熒光定量PCR反應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)曲線的構(gòu)建
將標(biāo)準(zhǔn)樣品進(jìn)行10倍倍比稀釋,分別取1.0×101、1.0×102、1.0×103、1.0×104、1.0×105拷貝/μL的重組質(zhì)粒為模板,進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增反應(yīng),得到擴(kuò)增反應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖2),線性回歸方程為Ct=-2.980×lg(核酸拷貝數(shù))+9.27(r2=0.999)。
2.4 熔解曲線分析
擴(kuò)增產(chǎn)物的熔解溫度Tm為84.6~85.4 ℃,無引物二聚體和非特異性產(chǎn)物等峰值出現(xiàn)(圖3)。
2.5 敏感性試驗(yàn)
將標(biāo)準(zhǔn)樣品進(jìn)行10倍倍比稀釋,分別取1.0×100、1.0×101、1.0×102、1.0×103、1.0×104、1.0×105拷貝/μL重組質(zhì)粒作為模板,進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,結(jié)果(圖4)顯示其靈敏度為1.0×101拷貝/μL。
2.6 特異性試驗(yàn)
以弗氏檸檬酸桿菌、致病性嗜水氣單胞菌、熒光假單胞菌、黃桿菌、遲緩愛德華菌DNA進(jìn)行熒光定量PCR反應(yīng),每個(gè)菌株進(jìn)行3次重復(fù),結(jié)果顯示弗氏檸檬酸桿菌為陽性,而致病性嗜水氣單胞菌、熒光假單胞菌、黃桿菌、遲緩愛德華菌為陰性(圖5)。
2.7 重復(fù)性試驗(yàn)
應(yīng)用建立的熒光定量PCR方法檢測弗氏檸檬酸桿菌DNA,樣品重復(fù)3次,以檢驗(yàn)結(jié)果的重復(fù)性,結(jié)果均一致。
2.8 臨床樣品的檢測結(jié)果
應(yīng)用建立的熒光定量PCR方法進(jìn)行檢測采集的356份鱒鮭魚、大鯢病料(肝臟)弗氏檸檬酸桿菌陽性率為26.4%(94/356),135份大鯢餌料魚病料陽性率為 11.1%(15/135),64份發(fā)病鱒鮭魚、大鯢養(yǎng)殖場水樣陽性率20.3%(13/64)。傳統(tǒng)的細(xì)菌分離鑒定356份鱒鮭魚、大鯢病料(肝臟)弗氏檸檬酸桿菌陽性率為19.1%(68/356),135份大鯢餌料魚病料陽性率為7.4%(10/135),64份發(fā)病鱒鮭魚、大鯢養(yǎng)殖場水樣陽性率7.8%(5/64)。熒光定量PCR方法敏感性均高于傳統(tǒng)的細(xì)菌分離鑒定。
2.9 弗氏檸檬酸桿菌的耐藥性分析
將2013年1月至2015年5月貴州省貴陽市、黔西南、銅仁地區(qū)幾個(gè)規(guī)模化冷水魚養(yǎng)殖場分離得到83株弗氏檸檬酸桿菌進(jìn)行藥敏試驗(yàn),結(jié)果見表1。
3 結(jié)論與討論
目前,臨床常用的病原菌鑒定方法主要有傳統(tǒng)平板分離培養(yǎng)及生化鑒定。隨著生物技術(shù)的快速發(fā)展,與傳統(tǒng)鑒定方法相比,基于SYBR GreenⅠ的實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)具有快速、準(zhǔn)確的優(yōu)勢,適合于臨床樣品的快速診斷。余波等利用傳統(tǒng)鑒定方法結(jié)合PCR測序?qū)Υ篥F細(xì)菌性敗血癥病原進(jìn)行分離鑒定,從對病原菌分離、培養(yǎng)、純化,到生化鑒定整個(gè)過程最快需要1周[8]。胡秀彩等采用弗氏檸檬酸桿菌16S rDNA V3區(qū)的PCR-SSCP圖譜進(jìn)行菌株鑒別效果良好[9]。余波等研制的致病性嗜水氣單胞菌 SYBR Green Ⅰ實(shí)時(shí)熒光定量 PCR試劑盒具有特異、靈敏、快速等特點(diǎn),敏感度達(dá)到1.0×101拷貝/μL[10]。本研究根據(jù)GenBank中弗氏檸檬酸桿菌ompA基因序列,設(shè)計(jì)1對引物,PCR擴(kuò)增獲得ompA基因片段,將其克隆到pMD-18T載體上構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)品陽性質(zhì)粒。通過SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化,建立弗氏檸檬酸桿菌SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR診斷方法,靈敏度可達(dá)1.0×101拷貝/μL。傳統(tǒng)細(xì)菌分離和熒光定量均能檢測到養(yǎng)殖用水和餌料魚中存在弗氏檸檬酸桿菌,表明該菌是在冷水魚養(yǎng)殖中廣泛存在的,當(dāng)養(yǎng)殖密度提高以及鱒鮭魚、大鯢大鯢免疫力下降時(shí)就容易發(fā)病。因此,控制好水質(zhì)、餌料,提高冷水魚自身的免疫力,對弗氏檸檬酸桿菌的防治至關(guān)重要。
目前,弗氏檸檬酸桿菌的耐藥性報(bào)道較少,Chuang等報(bào)道了弗氏檸檬酸桿菌對頭孢噻肟耐藥性[11],Nawaz等報(bào)道了耐四環(huán)素的弗氏檸檬酸桿菌的分離鑒定[12]。本研究藥敏試驗(yàn)結(jié)果表明,分離得到的83株弗氏檸檬酸桿菌對目前應(yīng)用較為廣泛的青霉素、鏈霉素、土霉素等產(chǎn)生了較強(qiáng)的耐藥性,僅頭孢類和氟苯尼考敏感,說明目前在冷水魚養(yǎng)殖中耐藥性問題也較嚴(yán)重,抗生素的濫用在冷水魚上要引起重視。
參考文獻(xiàn):
[1]何曉青. 檸檬酸桿菌屬的分類與鑒定[J]. 中國衛(wèi)生檢驗(yàn)雜志,2005,15(12):1535-1536.
[2]周 聯(lián),張希圣,劉添發(fā),等. 一起弗氏檸檬酸桿菌引起的食物中毒[J]. 現(xiàn)代預(yù)防醫(yī)學(xué),2002,29(5):678-678, 680.
[3]陳紅蓮,宋光同,何吉祥,等. 克氏原螯蝦弗氏檸檬酸桿菌的分離鑒定與藥敏試驗(yàn)[J]. 淡水漁業(yè),2014,43(1):73-77.
[4]楊移斌,夏永濤,趙 蕾,等. 鱘源弗氏檸檬酸桿菌分離鑒定及藥敏特性研究[J]. 水生生物學(xué)報(bào),2013,37(4):766-771.
[5]楊移斌,曹海鵬,夏永濤,等. 41種中草藥對3種鱘源病原茵的體外抑菌效果[J]. 淡水漁業(yè),2013,43(4):80-84.
[6]田飛焱,歐陽敏,張曉燕,等. 中華鱉弗氏檸檬酸桿菌的分離、鑒定及藥物敏感性試驗(yàn)[J]. 水產(chǎn)學(xué)雜志,2013,26(4):42-46.
[7]高正勇,曾令兵,孟 彥,等. 患病大鯢中弗氏檸檬酸桿菌的分離與鑒定[J]. 微生物學(xué)報(bào),2012,52(2):169-176.
[8]余 波,徐景峨,譚詩文,等. 大鯢細(xì)菌性敗血癥病原的分離鑒定與藥敏特性[J]. 中國獸醫(yī)雜志,2011,47(1):30-31.
[9]胡秀彩,王 藝,呂愛軍. 弗氏檸檬酸桿菌的分離鑒定與PCR-SSCP分析[J]. 微生物學(xué)雜志,2011,31(4):12-18.
[10]余 波,羅永成,馬永兵,等. 大鯢致病性嗜水氣單胞菌SYBR Green Ⅰ 熒光定量PCR診斷試劑盒的研制[J]. 基因組學(xué)與應(yīng)用生物學(xué),2014,33(5):1098-1103.
[11]Chuang Y M, Tseng S P, Teng L J, et al. Emergence of cefotaxime resistance in Citrobacter freundii causing necrotizing fasciitis and osteomyelitis[J]. The Journal of Infection, 2006, 53(3):e161-e163.
[12]Nawaz M, Khan A A, Khan S, et al. Isolation and characterization of tetracycline-resistant Citrobacter spp. from catfish[J]. Food Microbiology,2008,25(1):85-91.