国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

棉花纖維品質(zhì)QTL定位研究進(jìn)展

2017-03-10 20:23:25葉泗洪吳德祥路曦結(jié)添長久潘宗瑾
棉花科學(xué) 2017年1期
關(guān)鍵詞:分子標(biāo)記棉花

葉泗洪 吳德祥 路曦結(jié) 添長久 潘宗瑾 楊華 吳春

摘要:為了倡導(dǎo)我國棉花生產(chǎn)以中高端品質(zhì)為主,破解“洋棉入市、國棉入庫”的困境,通過查閱資料和課題調(diào)研,綜述了我國棉花產(chǎn)業(yè)行情、棉花纖維品質(zhì)現(xiàn)狀、棉花分子標(biāo)記種類和棉花纖維品質(zhì)QTL初級定位、QTL精細(xì)定位及相關(guān)研究進(jìn)展,旨在促進(jìn)棉花分子育種、基因組選擇研究的提升。

關(guān)鍵詞:棉花;分子標(biāo)記;QTL定位;纖維品質(zhì)

中圖分類號: S562 文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A 文章編號:2095-3143(2017)01-0002-05

DOI:10.3969/j.issn.2095-3143.2017.01.001

0 引言

棉花是世界上第一大纖維作物和第二大油料作物。中國不但是一個產(chǎn)棉大國,也是用棉大國,棉花生產(chǎn)在國民經(jīng)濟(jì)中具有極其重要的地位。隨著紡紗工業(yè)技術(shù)的不斷革新,對棉纖維品質(zhì)的要求也在不斷提高,優(yōu)質(zhì)成為棉花育種的新目標(biāo)[1]。棉花品質(zhì)性狀屬于數(shù)量性狀,其表現(xiàn)型是基因型與環(huán)境共同作用的結(jié)果;因此對數(shù)量性狀的遺傳操縱能力決定了作物育種的效率[2]。近年來,生物技術(shù)的發(fā)展為作物性狀改良提供了新的途徑,通過轉(zhuǎn)基因或分子標(biāo)記輔助選擇技術(shù),可從分子水平上操作目標(biāo)基因,實(shí)現(xiàn)對目標(biāo)性狀的改良[3-5]。

農(nóng)業(yè)部纖維檢測中心(安陽)唐淑榮,等[6-7]對三大棉區(qū)纖維品質(zhì)進(jìn)行調(diào)查,提出我國棉花比強(qiáng)度有待進(jìn)一步提高,同時棉花纖維品質(zhì)結(jié)構(gòu)需優(yōu)化升級。2016年11月28日,由中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院主辦,中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院棉花研究所、新疆生產(chǎn)建設(shè)兵團(tuán)第七師、新疆生產(chǎn)建設(shè)兵團(tuán)第一師、新疆昌吉國家農(nóng)業(yè)科技園區(qū)管委會、江蘇聯(lián)發(fā)集團(tuán)股份有限公司和河南永安紡織有限公司等單位聯(lián)合承辦的國家棉花產(chǎn)業(yè)聯(lián)盟成立大會在北京召開。國家棉花產(chǎn)業(yè)聯(lián)盟的發(fā)展目標(biāo)是通過科研—生產(chǎn)—加工—流通—紡織等全產(chǎn)業(yè)鏈的通力合作,探索建立棉花生產(chǎn)供給新模式,改變傳統(tǒng)的“小而分散”生產(chǎn)方式,推動棉花產(chǎn)業(yè)供給側(cè)結(jié)構(gòu)性改革,引領(lǐng)棉產(chǎn)業(yè)向“中高端品質(zhì)”發(fā)展,提升我國棉花產(chǎn)業(yè)水平和國際競爭力。聯(lián)盟的成立對于我國棉花產(chǎn)業(yè)的一大積極影響在于:聯(lián)盟的形式有利于沖破原有產(chǎn)業(yè)鏈體制機(jī)制的桎梏,有利于打破我國棉產(chǎn)業(yè)由來已久的“生產(chǎn)跟科研分割”、“生產(chǎn)跟加工、流通分割”的尷尬局面。當(dāng)前我國棉花種植業(yè)面臨“地板升高而天花板下壓”的困境,國際競爭力不強(qiáng),亟需提質(zhì)增效、轉(zhuǎn)型升級,聯(lián)盟以全國涉棉產(chǎn)業(yè)協(xié)同創(chuàng)新之力,瞄準(zhǔn)棉花產(chǎn)業(yè)的重大問題,促進(jìn)我國棉產(chǎn)業(yè)高質(zhì)量發(fā)展。國家棉花產(chǎn)業(yè)聯(lián)盟理事長、中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院棉花研究所所長李付廣說:我國每年花260億元補(bǔ)貼棉花生產(chǎn),卻面臨“洋貨入市、國貨入庫”的困局。紡織企業(yè)不愿用國產(chǎn)棉并非崇洋媚外,而是國產(chǎn)棉的生產(chǎn)與需求嚴(yán)重脫節(jié),高等級棉嚴(yán)重短缺,低等級棉嚴(yán)重過剩,臨時收儲政策又成了棉花品質(zhì)下降的“催化劑”,因此,要力爭用5~10年的時間,在我國主產(chǎn)棉區(qū)打造出33.3萬~66.7萬hm2、產(chǎn)能60~120萬噸的中高端品質(zhì)原棉生產(chǎn)基地(相當(dāng)于1~2個澳大利亞的棉花產(chǎn)能規(guī)模)。

1 分子標(biāo)記研究進(jìn)展

分子標(biāo)記發(fā)展經(jīng)過第一代(RFLP為代表)、第二代(SSR為代表)及第三代(SNP為代表)的發(fā)展歷程。與AFLP、RFLP、RAPD和SSR標(biāo)記相比,SNP ( Single nucleotide polymorphism) 即單核苷酸多態(tài)性,具有密度高、代表性強(qiáng)、遺傳穩(wěn)定性好和易于實(shí)現(xiàn)自動化分析檢測等優(yōu)點(diǎn),現(xiàn)已廣泛應(yīng)用于植物遺傳連鎖圖譜構(gòu)建、生物物種起源與親緣關(guān)系以及生物多態(tài)性的研究等方面。同時SNP標(biāo)記的發(fā)展促進(jìn)了關(guān)聯(lián)分析、遺傳圖譜、基因定位等對植物復(fù)雜數(shù)量性狀的遺傳研究。研究證明:多數(shù)SNP變異與基因功能密切相關(guān),通過關(guān)聯(lián)分析可以發(fā)掘這些功能型位點(diǎn)變異并應(yīng)用于作物遺傳育種。隨著SNP 研究的迅猛發(fā)展,以及基因芯片技術(shù)和第二代、第三代高通量測序技術(shù)的發(fā)展,自動化程度更高的第三代SNP 標(biāo)記已迅速取代SSR、RFLP 等傳統(tǒng)標(biāo)記,在模式動植物和重要農(nóng)作物中將發(fā)揮著越來越重要的作用[8]。四倍體陸地棉全基因組測序[9-10]的完成為棉花基因組分析提供了參考序列、發(fā)掘功能基因并開發(fā)相應(yīng)的功能標(biāo)記。韓治國,等[11]根據(jù)已發(fā)表的亞洲棉FIF1基因,設(shè)計(jì)特異引物,克隆了陸地棉和海島棉中的FIF1基因,并將該基因定位在四倍棉花遺傳圖譜上。Robert,等[12]開發(fā)了四倍體棉花的SNP標(biāo)記,并進(jìn)行了定位。Wang,等[13]利用GBS測序構(gòu)建包含499萬個SNP位點(diǎn)覆蓋4024 cM的棉花遺傳圖譜。但棉花基因組測序、轉(zhuǎn)錄組測序、小RNA測序等技術(shù)興起后,產(chǎn)生的大量序列資源和新的SNV突變位點(diǎn),加之SNP技術(shù)的諸多優(yōu)點(diǎn),因此,探索、突破SNP標(biāo)記開發(fā)及檢測體系至關(guān)重要,應(yīng)用前景會非常廣闊。

2 棉花纖維品質(zhì)QTL初級定位

棉花品質(zhì)性狀屬于數(shù)量性狀,其表現(xiàn)型是基因型與環(huán)境共同作用的結(jié)果;因此對數(shù)量性狀的遺傳操縱能力決定了作物育種的效率。傳統(tǒng)育種為棉花纖維品質(zhì)的改良發(fā)揮了重大作用,但進(jìn)度相對較慢、效率較低;近年來,生物技術(shù)的發(fā)展為作物性狀改良提供了新的途徑,通過轉(zhuǎn)基因或分子標(biāo)記輔助選擇技術(shù),可從分子水平上操作目標(biāo)基因,實(shí)現(xiàn)對目標(biāo)性狀的改良。有必要通過數(shù)量基因座(quantitative trait locus, QTL)的定位,分子標(biāo)記輔助選擇,候選基因的鑒定篩選等分子手段提高棉花纖維品質(zhì)改良的效率。

纖維強(qiáng)度是棉花主要的品質(zhì)性狀,前人利用不同的群體定位了許多關(guān)于纖維強(qiáng)度的QTL。Chuanfu An,等[14]利用陸陸雜交組合MD17/FM966 F2檢測到1個控制纖維強(qiáng)度QTL,位于第16染色體上,標(biāo)記能解釋的表型變異為11.1%。孫福鼎,等[15]利用陸陸雜交組合0-153/sGK9708的F2、F2:3和重組自交系三個世代,重復(fù)檢測到控制纖維強(qiáng)度QTL中有2個,分別被定位在第7和25染色體上,所得標(biāo)記解釋的表型變異為14.25%~27.86%。張正圣,等[16]應(yīng)用陸陸雜交組合T586/Yumian1的重組自交系群體檢測到2個控制纖維強(qiáng)度QTL,位于第6和第7染色體上,所得標(biāo)記解釋的表型變異為10.2%~31.8%。賀道華,等[17]利用陸陸雜交組合Handan208/Pima90的F2分離群體,檢測到3個纖維強(qiáng)度QTL,分別位于A02和第23染色體上,所得標(biāo)記解釋的表型變異為15.26%~37.12%。沈新蓮,等[18]利用陸陸雜交組合7235/TM-1的重組自交系群體,檢測到7個控制纖維強(qiáng)度的QTL,分別位于A10、D7、D9、D6和D8染色體上,所得標(biāo)記解釋的表型變異為4.31%~16.15%。Russell J,等[19]利用陸海雜交組合TM-1/3-79的F2分離群體,檢測到4個控制纖維強(qiáng)度的QTL,分別位于染色體3b、14b、15a和25b上,共計(jì)解釋35%表型變異。Shappley,等[20]利用陸陸雜交組合HS46/MARCABUCAG8US-1-88的F2分離群體,檢測到7個控制纖維強(qiáng)度的QTL。Jiang,等[21]利用陸海雜交組合CAMD-E/seabery的F2分離群體,檢測到3個控制纖維強(qiáng)度的QTL。Wang,等[22]利用達(dá)爾文氏棉和4個栽培品種雜交,獲得一套導(dǎo)入系,再利用已發(fā)表的海陸群體圖譜上錨定的SSR標(biāo)記進(jìn)行纖維品質(zhì)QTL定位,結(jié)果表明其中的40個標(biāo)記和纖維品質(zhì)相關(guān),解釋表型變異平均為6.31%。Yu,等[23-24]用海陸回交自交系群體在兩個環(huán)境中同時檢測到了一個控制纖維強(qiáng)度的穩(wěn)定QTL,位于11號染色體上,解釋表型變異為14.95%。Cao,等[24]利用一套染色體片段置換系,將纖維強(qiáng)度、比強(qiáng)度、馬克隆值等QTL導(dǎo)入新疆棉花品種新陸早26號、新陸早41號、新陸早42號中去。以上研究結(jié)果為研究纖維強(qiáng)度QTL在棉花基因組上分布特點(diǎn)以及通過分子標(biāo)記輔助育種創(chuàng)制新材料奠定了基礎(chǔ)。

3 棉花纖維品質(zhì)QTL次級定位

棉花纖維品質(zhì)性狀方面,研究者開展了很多QTL定位工作。但大多是利用初級群體進(jìn)行QTL定位,通常存在幾個問題:①精確度不高,定位缺乏準(zhǔn)確性,無法區(qū)分目標(biāo)區(qū)段是一個效應(yīng)較大的基因還是一簇緊密連鎖的效應(yīng)較小的QTL[26-27];②遺傳率較低,對表型效應(yīng)貢獻(xiàn)較少的QTL常常不能被準(zhǔn)確鑒定出來[28];③背景噪聲對QTL定位的精確性產(chǎn)生較大的影響[29]。為了克服初級群體在QTL上的缺點(diǎn),提高QTL定位的準(zhǔn)確性,從而發(fā)展了次級分離群體。染色體片段導(dǎo)入系是目前棉花上應(yīng)用最為廣泛的次級群體之一,除目標(biāo)基因所在座位的局部區(qū)域外,基因組其余部分都是相同的,在這樣的材料間找到的多態(tài)性標(biāo)記才可能與目標(biāo)基因緊密連鎖,是QTL精細(xì)定位和圖位克隆的一類理想材料[30]。

為了克服初級群體在QTL上的缺點(diǎn),提高QTL定位的準(zhǔn)確性,從而發(fā)展了次級分離群體。染色體片段導(dǎo)入系是目前棉花上應(yīng)用最為廣泛的次級群體之一,除目標(biāo)基因所在座位的局部區(qū)域外,基因組其余部分都是相同的,在這樣的材料間找到的多態(tài)性標(biāo)記才可能與目標(biāo)基因緊密連鎖,是QTL精細(xì)定位和圖位克隆的一類理想材料。Paterson,等[31-32]利用回交群體將番茄幾個重要性狀的QTL定位在大約20 cM的區(qū)段內(nèi),通過選擇性地構(gòu)建了QTL-NIL,用代換作圖法將這些QTL進(jìn)一步定位在3 cM內(nèi)的區(qū)段。Yamamoto,等[33]利用小麥抽穗期QTL,Hd1、Hd2、Hd3分別建立了單個QTL的次級分離群體,將這3個QTL都分解為單個孟德爾因子,并進(jìn)行了精細(xì)定位。Su,等[34]利用758個棉花海陸置換系精細(xì)定位了1個控制纖維強(qiáng)度的QTL QFS D11-1,位于棉花第21染色體上,解釋表型變異為35.8%,和分子標(biāo)記NAU2950緊密連鎖、遺傳距離為0.6 cM。利用染色體片段導(dǎo)入系對QTL進(jìn)行精細(xì)定位后,就能進(jìn)一步對QTL進(jìn)行克隆。

參考文獻(xiàn)

[1] 張建,馬靖,陳笑,等. 利用復(fù)合雜交群體定位陸地棉纖維品質(zhì)性狀QTL[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報,2011,19(2):230-235.

[2] 楊昶,郭旺珍,張?zhí)煺? 陸地棉抗黃萎病、纖維品質(zhì)和產(chǎn)量等農(nóng)藝性狀的QTL定位[J]. 分子植物育種,2007,5(6):797-805.

[3] 杜春芳,李朋波,李潤植. 植物數(shù)量性狀變異的分子基礎(chǔ)與QTL克隆的進(jìn)展[J].西北植物學(xué)報,2005,25(12):2575-2580.

[4] 秦永生,劉任重,梅鴻獻(xiàn),等. 陸地棉產(chǎn)量相關(guān)性狀的QTL定位[J]. 作物學(xué)報,2009,35(10):1812-1821.

[5] 鄭風(fēng)敏. 陸地棉F2與F(2:7)重組近交系群體圖譜比較[D]. 重慶:西南大學(xué),2010.

[6] 唐淑榮,金石橋,付小瓊,等. “六五”至“十二五”期間我國棉花品種纖維品質(zhì)評價分析[J]. 中國棉花,2015, 42(9):18-24.

[7] 唐淑榮,馬磊,魏守軍,等. 談我國棉花質(zhì)量安全監(jiān)控現(xiàn)狀與應(yīng)對措施[J]. 中國纖檢,2016(1): 36-39.

[8] 鄭德波,楊小紅,李建生,等. 基于SNP 標(biāo)記的玉米株高及穗位高QTL 定位[J]. 作物學(xué)報,2013,39(3):549-556.

[9] Li F, Fan G, Lu C, et al. Genome sequence of cultivated Upland cotton (Gossypium hirsutum TM-1) provides insights into genome evolution[J]. Nat Biotechnol, 2015, 33: 524-530.

[10] Zhang TZ, Hu Y, Jiang WK, et al. Sequencing of allotetraploid cotton (Gossypium hirsutum L. acc. TM-1) provides a resource for fiber improvement[J]. Nat Biotechnol, 2015, 33:531-537.

[11] 韓志國,郭旺珍,張?zhí)煺? 一個FIF1基因的SNP及定位研究[J]. 作物學(xué)報,2007,33(2): 256-261.

[12] Robert L. Byers, David B. Harker, Scott M. Yourstone, et al. Development and mapping of SNP assays in allotetraploid cotton[J]. Theor Appl Genet, 2012, 124: 1201-1214.

[13] Sen Wang,Jiedan Chen,Wenpan Zhang, et al. Sequence-based ultra-dense genetic and physical maps reveal structural variations of allopolyploid cotton genomes[J]. Genome Biology, 2015, 16:108.

[14] Chuanfu An,Johnie N,Jenkins et al. Use of fiber and fuzz mutants to detect QTL for yield components, seed, and fiber traits of upland cotton[J]. Euphytica,2010,172:21-34.

[15] FuDing Sun, JianHong Zhang, ShuFang Wang. QTL mapping for fiber quality traits across multiple generations and environments in upland cotton [J]. Mol Breeding, 2012, 30(1): 569-582.

[16] ZhengSheng Zhang,MeiChun Hu,Jian Zhang. Construction of a comprehensive PCR-based marker linkage map and QTL mapping for fiber quality traits in upland cotton (Gossypium hirsutum L.) [J]. Mol Breeding, 2009, 24:49-61.

[17] DaoHua He, ZhongXu Lin, XianLong Zhang. QTL mapping for economic traits based on a dense genetic map of cotton with PCR-based markers using the interspecific cross of Gossypium hirsutum × Gossypium barbadense[J]. Euphytica, 2007, 153:181-197.

[18] Xinlian Shen,Wangzhen Guo,Qiongxian Lu, et al. Genetic mapping of quantitative trait loci for fiber quality and yield trait by RIL approach in Upland cotton[J]. Euphytica, 2007, 155: 371-380.

[19] Russell J,Kohel, John Yu, et al. Molecular mapping and characterization of traits controlling fiber quality in cotton[J]. Euphytica, 2001, 121: 163-172.

[20] Shappley Z W, Jenkins J N, Meredithw R, et al. An RFLP link-age map of upland cotton,Gossypium hirsutum[J]. Theor Appl Genet, 1998, 97:756-761.

[21] Jiang C X,Wrightr J,El Zikkm, et al. Polyploid formation created unique avenues for response to selection inGossypium (cotton) [J]. Proc Natl Acad Sci USA,1998,95:4419-4424.

[22] Wang B, Nie Y, Lin Z, et al. Molecular diversity, genomic constitution,and QTL mapping of fiber quality by mapped SSRs in introgression lines derived from Gossypium hirsutum × G. darwinii Watt [J]. Theor Appl Genet, 2012, 125(6): 1263-1274.

[23] Yu J W, K Zhang, S Y Li, et al. Mapping quantitative trait loci for lint yield and fiber quality across environments in a Gossypium hirsutum 9 Gossypium barbadense backcross inbred line population[J]. Theor Appl Genet, 2013, 126, 275-287.

[24] Hong Chen, Neng Qian, Wangzhen Guo. Using three selected overlapping RILs to fine-map the yield component QTL on Chro.D8 in Upland cotton[J]. Euphytica, 2010, 176: 321-329.

[25] Cao Z,Wang P, Zhu X,et al. SSR marker-assisted improvement of fiber qualities in Gossypium hirsutum using G. barbadense introgression lines[J]. Theor Appl Genet, 2014, 127(3): 587-594.

[26] Darvasi A,weinreb A,Minke V,et al. Deteeting marker-QTL linkage and estimating QTL gene effect and map location using a saturated genetic map[J]. Geneties,1993,134:943-951.

[27] 王鵬. 陸地棉TM-1背景的海島棉染色體片段導(dǎo)入系的培育鑒定和纖維強(qiáng)度QTL精細(xì)定位[D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2009.

[28]朱文銀,王才林. 作物染色體片段置換系研究進(jìn)展[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報,2008,24(6):963-968.

[29] 王芳. 棉花CSILs的鑒定及導(dǎo)入系(IL-19-10)單株鈴數(shù)QTL定位[D]. 泰安: 山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2012.

[30] 楊德衛(wèi). 以9311為背景的日本晴染色體片段置換系的構(gòu)建及相關(guān)QTL分析[D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué)碩士論文,2009.

[31] Paterson A H,Lander E S,Hewitt J D,et al. Resolution of quantitative traits into mendelian factors by using a complete linkage map of restriction fragment length polymorphisms[J]. Nature, 1988, 335: 721-726.

[32] Paterson A H,Deverna J W,Lanin I B,et al. Fine mapping of quantitative trait loci using seleeted overlapping recombinant chromosomes in an interspecies cross of tomato [J]. Geneties, 1990, 124: 735-742.

[33] Yamamoto T,Kuboki Y,LinsY,et al. Fine mapping of quantitative trait loci Hdl,Hd2,and Hd3,controlling heading date of rice,as single mendelian factors[J]. Theor Appl Genet, 1998, 97: 37-44.

[34] Chengfu Su, Wei Wang, Xinmian Qiu, et al.Fine-mapping a fiber strength QTL QFS-D11-1 on cotton chromosome D11 using chromosome substitution lines[J]. Plant Breeding, 2013, 132: 725-730,

猜你喜歡
分子標(biāo)記棉花
棉花是花嗎?
棉花
小讀者(2020年4期)2020-06-16 03:33:54
蘿卜抽薹相關(guān)SRAP分子標(biāo)記篩選與分析
軟棗獼猴桃性別相關(guān)的SRAP分子標(biāo)記
軟棗獼猴桃性別相關(guān)的SRAP分子標(biāo)記
大白菜種質(zhì)資源抗根腫病基因CRa和CRb的分子標(biāo)記鑒定與分析
玉米大斑病的研究進(jìn)展
快樂城的棉花糖
小布老虎(2016年8期)2016-12-01 05:46:26
山西大豆自然群體遺傳多樣性的研究
心中的“棉花糖”
灵武市| 虞城县| 耿马| 安平县| 化隆| 莱阳市| 玉龙| 防城港市| 蛟河市| 班玛县| 双城市| 卓尼县| 莲花县| 永州市| 安顺市| 临夏市| 三河市| 阳信县| 民县| 张家口市| 阿图什市| 新晃| 旺苍县| 荣成市| 锡林郭勒盟| 宁乡县| 北辰区| 九龙坡区| 通江县| 尚志市| 东城区| 苍山县| 渭源县| 西峡县| 芷江| 敦化市| 巩义市| 丹江口市| 兴山县| 罗山县| 布拖县|