陳新蘭 董 坤
(1 云南省蜜蜂資源可持續(xù)利用工程研究中心 云南農(nóng)業(yè)大學(xué)東方蜜蜂研究所 云南農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,昆明 650201;2 云南農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,昆明 650201)
在自然界中,大約85%的顯花植物依賴?yán)ハx授粉,其中蜜蜂是最理想的授粉昆蟲。據(jù)1899年Knutr記載,在植物上采集到的800多種傳粉昆蟲中,膜翅目就占了43.7%,且蜜蜂總科占其總數(shù)55.7%[1]。此外,我國吳燕如教授曾調(diào)查了獼猴桃花期中傳粉昆蟲的種類,共鑒定的16種傳粉昆蟲中,蜜蜂占68.75%[2]。由此可見,蜜蜂在植物授粉中占據(jù)著重要的地位。
蜜蜂授粉不僅可以增加農(nóng)作物的產(chǎn)量、改善果實和種子的品種以及提高后代的生活力,還有利于生態(tài)環(huán)境的改善[3]。本課題組在開展中蜂為騰沖紅花油茶授粉效果研究中發(fā)現(xiàn),中蜂自由式授粉可以顯著提高騰沖紅花油茶的坐果率及結(jié)籽率[4];此外,在研究蜜蜂為石榴授粉中發(fā)現(xiàn),蜜蜂授粉可以提高石榴的坐果率及果實品質(zhì)[5]。國內(nèi)外專家的大量研究均表明蜜蜂授粉對農(nóng)作物和果樹等的增產(chǎn)是不可估量的。
蜜蜂的授粉性能可以從三個方面考慮:測定蜜蜂訪花后的坐果率或結(jié)籽率;測定蜜蜂體表攜帶的花粉種類、數(shù)量以及柱頭上有效的花粉落置數(shù)量;測定蜜蜂授粉后植物的繁殖成功率,即生殖效率[6]。蜜蜂體表攜帶花粉的種類數(shù)量及柱頭上有效的花粉落置量,在一定程度上影響著授粉成功與否。由于繁殖成功不僅依賴于傳粉昆蟲傳播的花粉數(shù)量,也依賴于其他因素,比如:花粉和雌蕊的相互作用、雌花的選擇,所以在評估蜜蜂的授粉性能時,主要對前兩個方面進(jìn)行觀察[7]。本文主要介紹了國內(nèi)外針對蜜蜂體表攜帶花粉種類鑒定、花粉粒計數(shù)及花粉活力測定等方面的研究方法,并比較了各種方法的優(yōu)缺點,以期為其他同仁開展此類研究提供一些有益的幫助。
鑒定蜜蜂體表攜帶的花粉種類,首先需從蜜蜂體表淋洗花粉粒??赏ㄟ^沖洗或渦旋蜜蜂身體使其身上的花粉粒淋洗下,然后通過離心方法使花粉粒沉淀,得到的花粉粒用于進(jìn)一步的分析。為了研究授粉效率,蜜蜂后足花粉筐里的花粉團(tuán)在淋洗蜜蜂前應(yīng)該去掉,因為花粉團(tuán)通常對授粉沒有太大作用。如果對蜜蜂的采集行為觀察非常細(xì)致,也可只從蜜蜂身體接觸了柱頭的部位上取下花粉進(jìn)行分析鑒定[8]。
蜜蜂身上攜帶的來自不同植物的花粉,通常可以依靠診斷其性狀來區(qū)分,比如:花粉粒的大小、花粉外壁紋飾、花粉孔和花粉溝的數(shù)量及大小等[9]。光學(xué)顯微鏡是最早用于觀察研究花粉的工具,至今已有300多年的歷史,且一直沿用至今。到了20世紀(jì)60年代,掃描電子顯微鏡開始用于觀察花粉,其所得圖片不僅立體感強、清晰逼真,且能揭示很多光學(xué)顯微鏡所無法揭示的信息,近幾十年已在花粉形態(tài)研究中廣為應(yīng)用[10]。目前有研究人員也開始嘗試通過分子生物學(xué)方法鑒定花粉種類。
這是鑒定花粉運用最廣的一種方法。在花粉鑒定前,花粉要經(jīng)過醋酸水解及染色,醋酸水解溶液包括冰醋酸和濃硫酸(9:1),其水解及染色過程為[7]:
(1)加入花粉樣本于冰醋酸溶液中10 min,然后進(jìn)行離心,棄去上清液;
(2)加入少量摩爾的醋酸水解混合液(冰醋酸:濃硫酸=9:1);
(3)在水浴中將溶液緩緩加熱到沸點,并用玻璃棒不停的攪拌;
(4)將溶液冷卻幾分鐘,進(jìn)行離心,然后棄去上清液;
(5)重新懸浮在蒸餾水中,進(jìn)行離心,然后輕輕倒出上清液,重復(fù)這個步驟;
(6)用甲基綠或醋酸洋紅進(jìn)行染色,以便更好觀察。
醋酸水解及染色之后,花粉可以保存,并制成永久裝片,常用方法是用甘油膠封片。其過程如下[7]:
(1)準(zhǔn)備少量的甘油明膠,通常由10 g 明膠、30 ml 甘油和35 ml 蒸餾水混合而成;
(2)在干凈的顯微鏡載玻片上加一滴準(zhǔn)備好的甘油明膠、花粉樣本和染色劑;
(3)緩緩地對裝片加熱,攪動使其徹底地均勻混合;
(4)蓋上蓋玻片,在邊緣四周用指甲油或其他清漆封住即可。
利用光學(xué)顯微鏡觀測上述染色后的花粉或花粉永久玻片,通過花粉的外部形態(tài)和大小即可鑒定花粉的種類。該方法的優(yōu)點是操作簡便,科研人員可自己操作觀測,成本低,省時省力,對形態(tài)結(jié)構(gòu)差異大的花粉易鑒定,但是對于差異小的花粉,很難對其進(jìn)行鑒定[11]。
掃描電子顯微鏡也是鑒定花粉很普遍的方法,其一般過程是取花粉樣本,用導(dǎo)電膠將其固定樣品臺上,噴金,選用適當(dāng)電壓,然后進(jìn)行觀察[12]。用此方法可觀測到花粉外壁表面的紋飾、花粉孔及花粉溝的數(shù)量和大小,易鑒定差異小的花粉,但其成本高。由于掃描電子顯微鏡價格昂貴,通常有專門固定人員操作使用,科研人員一般只需送樣、等待電鏡圖片結(jié)果。
鑒定花粉種類還可以用分子生物學(xué)的方法。如果蜜蜂只攜帶同一個種的植物花粉粒,那這很簡單,因為大量的花粉可以合并,從而可以一起提取DNA。但是如果蜜蜂攜帶著不同種植物的混合花粉,分析混合花粉就變得很難。在這種情況下,可以用單一花粉基因型策略,即對單一花粉粒的基因組進(jìn)行PCR擴增[13]。相對于光學(xué)顯微鏡和掃描電子顯微鏡,此方法能更精準(zhǔn)的確定花粉種類,但操作復(fù)雜,耗時耗力。
這是花粉粒計數(shù)最常用的方法。血球計數(shù)板最初主要用于血細(xì)胞計數(shù),但它也可以用于計算一個標(biāo)準(zhǔn)體積的花粉粒溶液中的花粉粒數(shù)量[7]。首先,將從蜜蜂身上收集的花粉制成花粉懸液,然后在血球計數(shù)板上滴一滴一定體積的花粉懸液,再放于顯微鏡下觀察,數(shù)出這滴懸液中花粉粒的數(shù)量,就能計算整個懸液中花粉粒的總量[14]。具體操作步驟如下:
(1) 從蜜蜂身上收集花粉;
(2) 使花粉粒懸浮在已知體積的70%乙醇溶液中,進(jìn)行渦旋以確?;旌暇鶆?;
(3)用移液管取一定量的花粉粒懸液于血球計上;
(4)在顯微鏡下觀察并計數(shù)。血球計廠商規(guī)定了在觀察視野下的已知體積懸液,并提供簡單的用法說明(在初始懸液中,可以從目標(biāo)計數(shù)推回到絕對計數(shù));
(5)當(dāng)花粉粒的數(shù)量很少時,要測量的懸液可以滴在帶有刻度的顯微鏡載玻片上,然后數(shù)出所有的花粉粒。
除了運用血球計數(shù)板對花粉進(jìn)行計數(shù)外,還可使用成本更高的方法,如:電子粒子計數(shù)或基于激光的計數(shù)器。此外,也可使用立體顯微鏡直接對蜜蜂身上的花粉粒進(jìn)行計數(shù),但誤差相對更大。
這種方法主要用于測定花粉萌發(fā)前的花粉活力,此方法是基于二乙酸熒光素(FDA)的熒光反應(yīng)。FDA是一種可透過細(xì)胞膜并作為熒光素積蓄在活細(xì)胞內(nèi)的物質(zhì),因此有活力的花粉一般都能在顯微鏡下發(fā)出熒光[15]。
根據(jù)有活力的花粉粒在呼吸過程中產(chǎn)生氧化還原反應(yīng),無活力的花粉粒無此反應(yīng)的原理,當(dāng)氯化三苯基四氮唑(TTC)滲入有活力的花粉粒內(nèi),并作為氫受體被脫輔酶上的氫還原時,便由無色的TTC變?yōu)榧t色的三苯基甲唑(TTF),這種方法適用于經(jīng)干燥等加工處理后的新鮮花粉,對陳舊不新鮮的花粉不適用。具體方法步驟是:從蜜蜂身上取少量花粉放于載玻片上,加0.5%的TTC溶液1~2滴,然后蓋上蓋玻片,放于35℃左右的恒溫箱中15 min,最后用顯微鏡進(jìn)行觀察,有活力的花粉染成深紅色,敗育花粉染成綠色[16]。
有活力的花粉含有活躍的過氧化物酶,此酶能利用過氧化氫使各種多酚及芳香族胺發(fā)生氧化而產(chǎn)生顏色,依據(jù)顏色可知花粉的活性強弱。具體方法步驟是:首先將0.5%聯(lián)苯胺、0.5% α-萘酚和0.25%碳酸鈉混合均勻,然后滴1滴于載玻片上,再滴1滴0.3%過氧化氫,然后放入少量花粉,攪勻,蓋上蓋玻片,于30℃環(huán)境下放置30 min左右,最后在顯微鏡下觀察,有活力的花粉呈現(xiàn)紅色[17]。
此法常用于鑒定含淀粉質(zhì)類花粉,染成藍(lán)紫色的為發(fā)育好、活力強的花粉,呈黃褐色的為發(fā)育不良的花粉。具體方法步驟是:取少量花粉放于載玻片上,先加1滴蒸餾水,再加2滴碘-碘化鉀溶液(將2 g碘化鉀溶于10 ml蒸餾水中,再加入1 g碘,用玻璃棒攪拌至全部溶解,最后加蒸餾水定容到300 ml),蓋上蓋玻片,在顯微鏡下觀察,被染成藍(lán)色的即為有活力的花粉[17]。
蔗糖培養(yǎng)基由10%蔗糖、100 mg/kg硼酸和5 mg/kg赤霉素配制而成,其中,蔗糖的作用是維持花粉與培養(yǎng)基之間的滲透平衡,以及提供花粉萌發(fā)所需的營養(yǎng)物質(zhì)和能量來源,不同植物花粉的萌發(fā)所需要的蔗糖濃度不同;硼酸的作用是促進(jìn)糖的吸收和代謝,同時增加氧的吸收,這有利于花粉的萌發(fā),不同植物花粉萌發(fā)所需要的硼濃度也有所不同。具體方法步驟是:將新鮮花粉直接放于蔗糖培養(yǎng)基中培養(yǎng),12 h后,在顯微鏡下觀察,如果花粉管有明顯的伸長(花粉管的長度至少是花粉粒直徑的2倍),則為有活力的花粉[18]。
熒光反應(yīng)通常是測定花粉營養(yǎng)細(xì)胞質(zhì)膜的完整性和細(xì)胞質(zhì)非特異性酯酶的活性,操作簡單,反應(yīng)明顯,容易觀察,但是二乙酸熒光素具有一定的毒性;TTC法、過氧化物酶法和I-KI法都是染色法,在染色過程中存在比較大的誤差性,但是省時省力,成本低;蔗糖溶液培養(yǎng)基法實用,簡單,可直接觀察花粉管的發(fā)育情況,準(zhǔn)確性高,但耗時。
不同植物花粉的特性不同,所需要的適宜染色條件也不同[19]。TTC染色法常用于測定花粉活力的強弱,它的染色效果和花粉中的脫氫酶有一定的關(guān)系,王艷哲等[20]在研究測定玉米花粉活力發(fā)現(xiàn),TTC能準(zhǔn)確、快速的測定玉米花粉活力,但是有報道TTC法測定黎豆、辣椒等花粉活力時,效果不明顯或不能染色。I-KI染色法適宜測定淀粉質(zhì)類花粉,即對禾本科類植物的花粉進(jìn)行染色時,效果明顯。俞奔馳等[21]發(fā)現(xiàn)用I-KI法能準(zhǔn)確的測定木薯花粉的活力,但是TTC法和培養(yǎng)基法效果不理想。蔗糖溶液培養(yǎng)基培養(yǎng)法適用廣,效果明顯,對大多數(shù)植物的花粉活力測定有顯著的效果。但需要注意的是,不同植物的花粉萌發(fā)所需的蔗糖、硼酸和赤霉素比例不同。綜上所述,不同的測定方法,對植物花粉的測定效果各不同,因此,應(yīng)結(jié)合花粉特性、染色效果、染色時間及試劑比例等條件來選擇一種合適的花粉測定方法。
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