曾 杰 劉 瑤 焦薇薇 許明賀 王 杰綜述 王傳航審校
1. 中日友好醫(yī)院(北京 100029);2. 西南醫(yī)科大學(xué)護理學(xué)院
·綜 述·
糖尿病勃起功能障礙動物模型的制備
曾 杰1劉 瑤2焦薇薇1許明賀1王 杰1綜述 王傳航1審校
1. 中日友好醫(yī)院(北京 100029);2. 西南醫(yī)科大學(xué)護理學(xué)院
流行病學(xué)調(diào)查顯示,糖尿病患者中ED的發(fā)病率為19.5%~75.2%[1,2]。隨著糖尿病發(fā)病率的不斷升高,糖尿病勃起功能障礙(DMED)的發(fā)病率也日漸增高,預(yù)計我國到2025年DMED患者會達到4000萬[3]。對疾病的發(fā)病機制進行研究可以指導(dǎo)臨床診療,而制備合適的動物模型是進行高質(zhì)量實驗研究的前提。本文針對DMED動物模型的制備進行綜述。
綜合考慮實驗?zāi)康?、?jīng)費狀況、動物自身特點、飼養(yǎng)環(huán)境和與人體結(jié)構(gòu)的相似度等因素,選用恰當(dāng)?shù)脑炷游锟梢源_保實驗的科學(xué)性和可信性。實踐中常選擇大鼠、小鼠、兔、豬等動物,少數(shù)情況下也選擇靈長類動物如猴[4]。
在DMED的造模中,嚙齒類動物因為價格較低和技術(shù)成熟等原因故較多的被選用[5]。其中,大鼠盆腔及陰莖組織的神經(jīng)反射、血管走向以及相關(guān)受體分布等與人類有較強相似度,而且抗感染能力強和繁殖周期短[6],故在DMED的造模中使用最多。小鼠因體型小易捕捉,發(fā)育迅速,性成熟早,尾部血管豐富,在DMED的分子病因?qū)W機制研究中選用較多[7]。
與其他常用實驗動物相比,豬和人類在解剖結(jié)構(gòu)、生理病理等方面具有更大的相似度,與人的基因純合度為95%,人工選育的小型豬由于性格溫順而易于進行實驗操作,特別是隨著現(xiàn)代動物保護意識的增強和“3R原則[即減少(Reduction)、優(yōu)化(Refinement)和替代(Replacement)]”的實行,小型豬在動物實驗中具有更大優(yōu)勢[8]。有研究采用高脂高糖飼料喂廣西巴馬小型豬,半年后有50%小型豬產(chǎn)生糖尿病,1年后DMED的總成模率為13%[9]。
兔大小適宜、方便管理,其陰莖結(jié)構(gòu)和人很相似,尤其是在海綿體張力的神經(jīng)與非神經(jīng)因素方面[10],且沒有陰莖骨,海綿體組織相對豐富。陳國強等[11]從兔的耳緣靜脈注射四氧嘧啶,成功建立糖尿病動物模型,再通過測定海綿體內(nèi)壓,成功建立DMED動物模型。Pereira等[12]采取相同的方式建立家兔DMED模型,通過病理和免疫組化檢測,發(fā)現(xiàn)發(fā)生ED的機制是血管結(jié)構(gòu)變化,陰莖血液供應(yīng)減少。
嚙齒類動物雖然廣泛用于建立人類疾病動物模型,但是由于存在巨大的種屬差異,很多在動物研發(fā)中證明對鼠有效的藥物卻對人無效。靈長動物從生物學(xué)上來說是人類的近親,相比其他動物模型,靈長類動物可更好地復(fù)制人類疾病[13]。但是由于數(shù)量相對少、費用昂貴等因素,目前缺少使用非人類靈長類動物建立DMED模型的報道。
(一)1型糖尿?。═ype 1 diabetes mellitus,T1DM)動物模型
T1DM動物模型的建立多基于破壞動物胰島,方式有藥物誘導(dǎo)和手術(shù)切除胰腺[14]。手術(shù)切除胰腺對實驗動物傷害較嚴重,操作有一定難度,批量造模困難。藥物誘導(dǎo)簡便易操作,常用的藥物有鏈脲佐菌素(STZ)和四氧嘧啶(alloxan,ALX)。STZ和ALX對動物胰島β細胞有特異的破壞作用,可減少或終止動物胰島素分泌,引起實驗動物患糖尿病。
STZ是一種誘導(dǎo)DNA雙鍵斷裂的強烷基化藥劑,可抑制葡萄糖運轉(zhuǎn),影響葡萄糖激酶功能,損傷胰島β細胞。據(jù)報道[15],成年雄性長尾猴靜脈注射STZ,兩個月后再次注射該藥,定期靜脈抽血可發(fā)現(xiàn)長尾猴血糖水平明顯升高,內(nèi)源性胰島素明顯降低。由于大鼠和小鼠以及同種動物不同品系之間對STZ敏感性不同,藥物注射劑量和給藥方式等也有差異。有報道稱,一次性給小鼠大劑量注射STZ(100mg/kg)[16],大鼠注射STZ(55~65mg/kg)[17]可導(dǎo)致胰腺β細胞壞死,建立無炎癥性T1DM模型。也有研究報道,小鼠小劑量(40mg/kg)連續(xù)腹腔注射STZ,可引發(fā)自身免疫性損害,誘導(dǎo)產(chǎn)生免疫性T1DM動物模型[18]。
ALX對胰島β細胞具有特殊的破壞作用,可通過產(chǎn)生超氧自由基終止胰島素的分泌。以兔為造模動物,可采用耳緣靜脈注射ALX的方式,連續(xù)2次小劑量(首次按80mg/kg,24h后按照120mg/kg)給藥比1次大劑量(150mg/kg)給藥成模率更高(80%/20%),實驗動物死亡率更低(10%/70%)[19]。梁沛余等[20]認為多次ALX給藥法建立糖尿病大鼠模型時,第1次大鼠腹腔注射ALX 100 mg/kg,24h后補注相同劑量是最佳給藥時間和劑量。丁利等制備T1DM小鼠模型時[21],利用ALX腹腔兩次注射法,首次劑量為120mg/kg,24h后再次注射80mg/kg,可防止小鼠低血糖的發(fā)生,降低死亡率。
(二)2型糖尿?。═ype 2 diabetes mellitus,T2DM)動物模型
在T2DM模型動物的構(gòu)建中,為避免大劑量注射STZ導(dǎo)致T1DM和動物血糖過低而死亡,可采用煙酰胺(NAA)預(yù)先15min注射保護胰島β細胞,再給STZ破壞,能夠建立成模率高、病死率低、癥狀明顯的T2DM模型[22,23]。大鼠可預(yù)先注射NAA100~200mg/kg,小鼠可預(yù)先注射NAA120~240mg/kg,有助于清除氧自由基,減輕STZ導(dǎo)致的胰島細胞氧化損害。
飲食聯(lián)合藥物干預(yù)也是建立T2DM動物的重要手段,樂嶺等[24]利用高脂飲食喂養(yǎng)SD大鼠,8周后大鼠體質(zhì)量增加,腹腔脂肪明顯增多,以小劑量STZ腹腔注射誘導(dǎo)糖尿病,檢測發(fā)現(xiàn)大鼠出現(xiàn)甘油三酯、游離脂肪酸和胰島素抵抗指數(shù)升高,高血糖與胰島素抵抗均出現(xiàn),與人類T2DM病理生理特點相似。在利用小鼠[25]、獼猴[26]造模時,給予高脂高糖飲食飼養(yǎng)后,再使用藥物制備DM模型,也能發(fā)現(xiàn)實驗動物出現(xiàn)肥胖、高脂血癥、胰島素抵抗,符合人類T2DM的臨床特點和病理特征。因此,這種造模方法簡便可行,重復(fù)性好,是研究T2DM機制和并發(fā)癥較為理想的模型。
在實驗性DM動物模型之外,近年也有自發(fā)性T2DM動物模型應(yīng)用于相關(guān)研究。例如OLETF大鼠、GK大鼠、db/db小鼠、黑線倉鼠等,具有慢性DM病程、多食、輕度肥胖、胰腺增生等特點,早期可出現(xiàn)胰島素抵抗、糖脂代謝紊亂,繼而胰島功能逐步減退,很接近人類T2DM。而且,OLETF大鼠具有由于代謝紊亂而致的血管內(nèi)皮功能障礙的病理表現(xiàn)[27],血管內(nèi)皮功能障礙是ED的病理基礎(chǔ)之一,因此利用自發(fā)性T2DM動物建立2型糖尿病勃起功能障礙模型是值得研究的方向。
近年來基因編輯技術(shù)已成為生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域的一大熱點,通過對基因組進行精確定點修飾,可快速構(gòu)建動物模型。利用基因編輯技術(shù),研究者已經(jīng)成功制備T2DM動物模型[28]。然而,目前基因工程動物模型有成本較高、單基因模擬、繁殖時間長等缺點,也可能因脫靶效應(yīng)而引發(fā)生物安全風(fēng)險,仍需隨著基因工程技術(shù)進一步發(fā)展,建立科學(xué)安全的多基因修飾的動物模型。
DM造模成功后,下一步需評估實驗動物的勃起功能。誘導(dǎo)陰莖勃起的方法有血管活性藥物海綿體注射法、負壓吸引法、電刺激法、可視性性興奮刺激法等,在實際實驗中常使用阿撲嗎啡實驗、電刺激法以及模擬自然狀態(tài)下交配行為等。
阿撲嗎啡(APO)作為一種非選擇性的中樞多巴胺受體激動劑,可通過激動D1、D2樣受體,誘發(fā)實驗動物產(chǎn)生陰莖勃起。研究者對DM兔予APO皮下注射,觀察和記錄勃起狀態(tài),發(fā)現(xiàn)DM兔表現(xiàn)出顯著的勃起功能抑制[29]。DM大鼠成模后進行APO實驗,隨著時間延長,勃起次數(shù)和勃起率逐漸降低,從中可篩選出DMED大鼠進行研究[30]。此法評價陰莖勃起的判定標(biāo)準(zhǔn)具有一定主觀性,對于動物同樣的表現(xiàn),不同的實驗者可能會產(chǎn)生判斷上的差異。
運用電刺激動物陰莖海綿體神經(jīng)誘發(fā)勃起,再通過換能器讀取陰莖海綿體內(nèi)壓(ICP),ICP可直接反映陰莖的勃起功能,因此該法較為客觀準(zhǔn)確。用電刺激大鼠陰莖海綿體神經(jīng)后測量ICP及平均頸動脈壓(MAP),對比正常組和T2DM組大鼠的ICP和MAP,可發(fā)現(xiàn)T2DM組的ICP明顯低于正常組[31]。通過改良ICP測量方法,選擇陰莖腳作為穿刺部位,利用倒刺狀穿刺針進行穿刺,可使進針穩(wěn)定精準(zhǔn),實驗測定ICP成功率可達100%[32]。利用電刺激盆神經(jīng),也可以誘發(fā)兔[11]、狗[33]等動物陰莖勃起,評價其勃起功能。電刺激法在國外是評價陰莖勃起功能的標(biāo)準(zhǔn)方法,穩(wěn)定準(zhǔn)確,重復(fù)性較好,故應(yīng)用較為廣泛[34,35],但也有操作方法復(fù)雜、對動物創(chuàng)傷大、電刺激參數(shù)難以把握等不足。
評價動物勃起功能也可采用交配實驗,通過以藥物誘導(dǎo)雌鼠發(fā)情,隨后將雌鼠和STZ注射后的糖尿病雄鼠放在一起,觀察記錄雄鼠乘騎、插入、射精次數(shù)及射精潛伏期、射精后間隔來評價勃起功能[36]。馬凱偉等[37]將DM大鼠分為APO組、西地那非組和模型組,分別予以相應(yīng)藥物干預(yù)后用發(fā)情雌鼠與之配對,結(jié)果發(fā)現(xiàn)造模動物經(jīng)過藥物刺激后的狀態(tài)難以準(zhǔn)確體現(xiàn)勃起功能,相比之下,由發(fā)情雌鼠誘導(dǎo)更可能激發(fā)出模型雄鼠陰莖的確切勃起。該法易受環(huán)境影響,有的勃起功能正常的動物可能因與雌性動物同籠受驚,缺乏交配主動性,從而會導(dǎo)致假陽性的實驗結(jié)果。
目前,在人類身上進行性功能的相關(guān)研究受到倫理等多方因素的制約,因此研究者需要設(shè)計各種DMED的動物模型,研究并闡明糖尿病導(dǎo)致ED的發(fā)病機制、藥物的藥理作用等。在DMED實驗動物模型中,嚙齒類動物模型的建立比較成熟,在較大程度上取代其他動物成為DMED的主要動物模型。最后,探索建立更加符合人類生理病理特點的糖尿病動物模型,提高評價勃起功能的方法的準(zhǔn)確性,減少實驗動物傷害,降低實驗成本,提高成模率,是今后研究工作的著力點之一。
致謝:本課題受國家自然科學(xué)基金資助(編號:81673978)
糖尿病; 勃起功能障礙; 疾病模型, 動物
1 Mazzilli R, Elia J, Delfino M, et al. Clin Ter 2015; 166(5): e317-e320 2015; 166(5): 317-320
2 中國2型糖尿病勃起功能障礙多中心調(diào)查協(xié)作組. 中華內(nèi)分泌代謝雜志 2005; 21(4): 348-352
3 向林, 向光大. 藥品評價 2016; 13(3): 32-35, 63
4 劉晟, 蘇子慧, 艾昭東, 等. 中國組織工程研究與臨床康復(fù) 2009; 13(50): 9917-9923
5 Wu C, Kovac JR. Expert Opin Drug Discov 2016; 11(2): 185-196
6 潘衛(wèi)兵, 曹石金, 謝禮仁, 等. 海南醫(yī)學(xué) 2015; 26(5): 629-631
7 Pan F, You J, Liu Y, et al. Mol Genet Genomics 2016; 291(6): 2215-2224
8 張賀, 王承利, 王洋, 等. 中國畜牧獸醫(yī) 2012; 39(7): 263-266
9 張永斌, 鄒移海, 劉曉秋, 等. 廣東醫(yī)學(xué) 2010; 31(9): 1094-1096
10 Bischoff E. Int J Impot Res 2001;13(3):146-148
11 陳國強, 白文俊, 孔雷, 等. 中國男科學(xué)雜志 2005; 19(1): 11-13
12 Pereira VA, Abidu-Figueiredo M, Pereira-Sampaio MA, et al. Int Braz J Urol 2013; 39(3): 424-431
13 薛麗香, 張鳳珠, 孫瑞娟, 等. 中國科學(xué): 生命科學(xué) 2014; 44(9): 851-860
14 Graham ML, Schuurman HJ. Eur J Pharmacol 2015; 759: 221-230
15 Kavanagh K,Flynn DM,Nelson C, et al. J Pharmacol Toxicol Methods 2011;63(3): 296-303
16 劉曉云, 張文, 李衛(wèi)平, 等. 中國臨床藥理學(xué)與治療學(xué)2017; 22(2): 132-138
17 尤傳靜, 吳強, 孫大林, 等. 中國男科學(xué)雜志 2016; 30(4): 7-12
18 楊巍, 羅春元, 于春雷, 等. 吉林大學(xué)學(xué)報?醫(yī)學(xué)版 2006; 32(3): 432-435, 封3
19 孟建波, 康勝群, 康素嫻, 等. 河北醫(yī)藥 2009; 31(1): 19-20
20 梁沛余, 尹磊晶, 華欠桑多, 等. 青海醫(yī)學(xué)院學(xué)報 2015; 36(4): 276-279
21 丁利, 宋冰, 張浩強. 中國現(xiàn)代醫(yī)學(xué)雜志 2017; 27(3): 7-12
22 翁琰, 奚苗苗, 朱艷榮, 等. 陜西醫(yī)學(xué)雜志 2013; 42(12): 1571-1573, 1578
23 Manoka S, Sungthong B, Sato H, et al. Nat Prod Commun 2016; 11(6): 757-761
24 樂嶺, 陳璐璐. 微循環(huán)學(xué)雜志 2013; 23(2): 7-9, 封2, 插1
25 Kang S, Kim CH, Jung H, et al. Neuropharmacology 2016; 113(PtA): 467-479
26 Lu SY, Qi SD, Zhao Y, et al. Exp Clin Endocrinol Diabetes 2015; 123(1): 19-26
27 陳婧, 易瑋, 許能貴, 等. 廣州中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報 2015; 32(1): 178-182
28 Fernández AM, Kim JK, Yakar S, et al. Genes Dev 2001; 15(15): 1926-1934
29 趙禹, 李迎新, 王明久, 等. 中國醫(yī)藥導(dǎo)報 2015; 12(6): 14-17
30 潘衛(wèi)兵, 曹石金, 謝禮仁, 等. 海南醫(yī)學(xué) 2015; 26(5): 629-631
31 桂士良, 崔大偉, 騰飛, 等. 牡丹江醫(yī)學(xué)院學(xué)報 2016; 37(1): 16-19
32 吳子云, 何書華, 張濤, 等. 中國臨床解剖學(xué)雜志 2013; 31(2): 192-195
33 邱秀光, 趙升田, 孫曉明, 等. 山東醫(yī)科大學(xué)學(xué)報 2000; 38(2): 136-138
34 Das ND, Yin GN, Choi MJ, et al. J Sex Med 2016; 13(11):1618-1628
35 Facio FN Jr,Facio MF,Spessoto LF, et al. Int J Impot Res 2016; 28(6): 221-227
36 Escrig A, Marin R, Abreu P, et al. Biol Reprod 2002; 66(1): 185-189
37 馬凱偉, 宋國宏, 張秋梅, 等. 疑難病雜志 2017; 16(1): 72-74
(2017-05-30收稿)
10.3969/j.issn.1008-0848.2017.04.017
R 587.1; R 698.1