趙楚楚 胡曉麗 朱雪瓊
半乳糖凝集素3與惡性腫瘤順鉑耐藥相關(guān)性的研究進展
趙楚楚 胡曉麗 朱雪瓊
研究表明,腫瘤細胞中半乳糖凝集素3的高表達可能是導(dǎo)致腫瘤細胞對順鉑耐藥的原因之一。本文就順鉑處理后半乳糖凝集素3在腫瘤細胞中表達的變化及半乳糖凝集素3與順鉑耐藥的關(guān)系及其可能的相關(guān)機制進行綜述,以進一步指導(dǎo)惡性腫瘤尤其是晚期及復(fù)發(fā)惡性腫瘤的臨床治療。
半乳糖凝集素3 腫瘤 順鉑 耐藥
半乳糖凝集素(Galectins,Gal)即β-半乳糖苷結(jié)合蛋白,是動物凝集素家族的成員。有以下2個共同特征:(1)含特征性的氨基酸序列,由大約130個高度保守的氨基酸序列組成糖識別結(jié)構(gòu)域。(2)對β-半乳糖苷的親和性[1]。目前已分離、鑒別的15種Gal中有11種在哺乳動物中表達。研究表明[2],Gal在腫瘤、免疫、衰老等相關(guān)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)中具有重要的調(diào)控作用,特別是在腫瘤發(fā)生、發(fā)展過程中的重要作用,使其成為癌癥防治的新靶點。
半乳糖凝集素3(Gal-3)是目前研究最熱門的一種,Gal-3包含3個結(jié)構(gòu)域,除了具有糖識別域外,還包含1個由12個氨基酸殘基組成的N端結(jié)構(gòu)域,和一個富含甘氨酸、酪氨酸、脯氨酸重復(fù)序列的類膠原結(jié)構(gòu),能與多種細胞外基質(zhì)結(jié)合[3]。Gal-3主要存在于細胞漿中,也可存在于細胞核、細胞表面或者細胞外[4],參與細胞生長,細胞與細胞之間、細胞與間質(zhì)之間的黏附,炎癥反應(yīng),細胞凋亡,免疫調(diào)節(jié)及腫瘤細胞轉(zhuǎn)移、浸潤等[5]。據(jù)報道,Gal-3在前列腺癌[6-7]、骨肉瘤[8]等多種惡性腫瘤中都有抗凋亡作用。順鉑是惡性腫瘤化療中最常用的一線藥物,然而由于癌細胞內(nèi)在或者后天獲得的耐藥性,常常導(dǎo)致順鉑治療劑量加大甚至治療失敗。順鉑耐藥機制主要包括:化療藥物外排的增加、耐藥相關(guān)基因表達的改變、DNA的損傷修復(fù)能力增強、細胞凋亡受到抑制等[9]。
近年來許多研究發(fā)現(xiàn),Gal的表達情況與惡性腫瘤的進展及順鉑的療效有關(guān),提示其在腫瘤細胞中的高表達可能是導(dǎo)致腫瘤細胞對順鉑耐藥的原因之一,因此本文就順鉑處理后Gal-3在腫瘤細胞中表達的變化情況及Gal-3與順鉑耐藥的關(guān)系及其可能的相關(guān)機制進行綜述,以進一步指導(dǎo)惡性腫瘤尤其是晚期及復(fù)發(fā)惡性腫瘤的臨床治療。
Wu等[10]選取了Ⅲ、Ⅳ期的非小細胞肺癌患者320例,以鉑類為基礎(chǔ)進行化療然后評價療效,同時檢測兩種Gal-3(+191 A>C和+292 A>C)基因多態(tài)性。結(jié)果發(fā)現(xiàn)化療有效組和無效組中,Gal-3+191 A>C基因型沒有明顯差異,但是化療有效患者Gal-3+292 A>C AA基因型和A等位基因分布均顯著高于無效者,而且AA型患者的總生存率為25.6個月,明顯高于CC型患者(19.5個月)。表明Gal-3+292 A>C基因型與非小細胞肺癌患者的化療療效以及癌癥的預(yù)后相關(guān)。
選取22例接受以鉑類為基礎(chǔ)的化療方案的肺腺癌患者為研究對象,檢測其接受化療前外周血漿中抗Gal-3的IgG抗體的效價,并在化療后評價其化療療效,Yanagita等[11]發(fā)現(xiàn)化療無效組中的Gal-3抗體效價明顯高于有效組,提示化療前檢測血漿中抗Gal-3的IgG抗體水平有助于預(yù)測肺腺癌患者的化療療效。
Wang等[12]選取18只C57BL/6小鼠在其側(cè)腹皮下接種Lewis肺癌細胞,并在接種癌細胞的第14~18天于腹腔內(nèi)注射順鉑(分為0.4mg/kg組和4mg/kg組),對照組注射同等劑量的生理鹽水,另外選取15只C57BL/6小鼠不接種Lewis肺癌細胞作為對照。在最后一次注射順鉑后72h收集小鼠血漿和腫瘤組織。免疫組織化學(xué)法檢測腫瘤組織中的Gal-3表達情況,發(fā)現(xiàn)Gal-3主要在癌細胞的細胞質(zhì)中表達,且經(jīng)順鉑作用后Gal-3在Lewis肺癌細胞中的表達逐漸增強。用酶聯(lián)免疫吸附測定法檢測小鼠血漿中Gal-3的表達情況,發(fā)現(xiàn)經(jīng)順鉑作用后,血漿中的Gal-3表達升高,并且順鉑濃度較高組小鼠血漿中的Gal-3升高更加明顯(低濃度組升高125%,高濃度組升高200%)。但是未接種Lewis肺癌細胞的小鼠血漿中Gal-3濃度在順鉑作用前后無明顯變化。以上結(jié)果提示,Gal-3經(jīng)順鉑作用后在小鼠外周血和腫瘤組織表達升高是肺癌細胞應(yīng)對順鉑刺激的一種反應(yīng)。
Fukumori等[6]將外源性Gal-3轉(zhuǎn)染入原本不表達Gal-3的人前列腺癌細胞LNCaP中,發(fā)現(xiàn)Gal-3高表達的前列腺癌細胞對順鉑的敏感性顯著降低,進一步研究發(fā)現(xiàn)Gal-3高表達的前列腺癌細胞中Bad蛋白表達增加,而在順鉑作用后Bad表達量下降,磷酸化Bad蛋白增加,線粒體損傷減少,細胞色素C釋放減少和半胱天冬酶-3(caspase-3)活性受抑制。用免疫熒光染色法檢測順鉑作用前后Gal-3在LNCaP細胞的表達定位,發(fā)現(xiàn)在順鉑作用前Gal-3隨機分布在細胞核和細胞質(zhì)中,經(jīng)50μM順鉑作用48h后,Gal-3基本只在細胞質(zhì)中表達。用Western blot法進一步驗證,發(fā)現(xiàn)細胞總的Gal-3表達量沒有明顯變化,但是細胞核內(nèi)的Gal-3表達明顯減少而細胞質(zhì)內(nèi)增多,提示順鉑刺激使Gal-3從細胞核內(nèi)轉(zhuǎn)移至細胞質(zhì),抑制化療藥物對線粒體的去極化和損傷,導(dǎo)致細胞色素C釋放減少和caspase-3活性抑制,從而抑制了癌細胞的線粒體凋亡途徑,增加癌細胞對順鉑的耐藥性。
Wang等[7]選取前列腺癌Gal-3高表達細胞系PC3,分別用siGal3-11和siGal3-19轉(zhuǎn)染到細胞內(nèi)抑制Gal-3的表達,并用空載體設(shè)置對照組,然后用50μM順鉑處理,作用24h后檢測細胞凋亡以及與細胞凋亡相關(guān)蛋白的變化。結(jié)果對照組中Bcl-2表達升高,而Gal-3表達抑制組細胞內(nèi)Bcl-2表達沒有明顯改變,但是發(fā)現(xiàn)更多的DNA碎裂片段,并且細胞凋亡相關(guān)的caspase-3和caspase-9活性增強,細胞內(nèi)細胞色素C含量明顯增加。提示Gal-3表達被抑制后,阻止了順鉑誘導(dǎo)的線粒體保護因子Bcl-2的增加,從而線粒體破壞,釋放細胞色素C、caspase-3、caspase-9,使細胞凋亡增加,從而對順鉑的敏感性增加。
Lavra等[13]將突變型p53 R273H轉(zhuǎn)染入甲狀腺未分化癌細胞后,癌細胞中的Gal-3表達較空載體組增強。然后,他們選取突變型p53 R273H甲狀腺癌細胞系A(chǔ)RO(Gal-3高表達)及野生型wt-p53甲狀腺癌細胞系K1(Gal-3低表達)分別用順鉑處理24h后,發(fā)現(xiàn)Gal-3低表達的K1細胞對順鉑的敏感性明顯高于Gal-3高表達的ARO細胞,同時發(fā)現(xiàn)K1細胞在順鉑作用后,caspase-3的表達減少,聚腺苷酸二磷酸核糖轉(zhuǎn)移酶-1(PARP-1)裂解增強,而ARO細胞系中沒有明顯改變。另外,他們用RNA干擾減少ARO細胞內(nèi)源性Gal-3的表達,用順鉑處理后進行細胞克隆形成實驗,發(fā)現(xiàn)Gal-3的表達減少后形成的細胞克隆數(shù)量較未處理的ARO細胞明顯減少。提示Gal-3的表達與甲狀腺未分化癌對順鉑的敏感性相關(guān)。
4.1 Gal-3與食管癌順鉑耐藥的關(guān)系 Kim等[14]采用基因突變技術(shù),將Gal-3第64位堿基脯氨酸突變成組氨酸,并將突變前后的Gal-3基因分別轉(zhuǎn)入食管癌細胞系SNU-638中并用順鉑處理,發(fā)現(xiàn)相較于對照組,轉(zhuǎn)染入Gal-3的癌細胞對順鉑有更高的耐藥性,而且突變組的耐藥性更高。提示Gal-3基因與食管癌順鉑耐藥相關(guān)。4.2 Gal-3與膽管癌順鉑耐藥的關(guān)系 為了研究Gal-3對順鉑治療膽管癌療效的影響,Wongkham等[15]用siRNA技術(shù)抑制膽管上皮癌細胞中Gal-3的表達,同時將帶有Gal-3基因的質(zhì)粒轉(zhuǎn)染入膽管癌細胞使Gal-3過表達,然后用不同濃度順鉑處理48h,用磺酰羅丹明染色法檢測順鉑敏感性,發(fā)現(xiàn)Gal-3的表達減少后,膽管癌細胞對順鉑的敏感性較對照組提高了近10倍,而膽管上皮癌細胞中Gal-3高表達后,順鉑的作用效果明顯下降。
為了研究Gal-3在卵巢透明細胞癌中對順鉑誘導(dǎo)的細胞凋亡的影響,Oishi等[16]采用siRNA抑制細胞中Gal-3的表達,發(fā)現(xiàn)處于S期的癌細胞比例升高而且細胞周期抑制因子p27的表達下降。用10μM的順鉑處理后,Gal-3表達被抑制組中順鉑誘導(dǎo)的細胞凋亡明顯高于Gal-3未被抑制組,而且這種凋亡增強效果可以被細胞周期蛋白依賴激酶抵消,提示Gal-3對細胞周期有抑制作用,會增加卵巢癌細胞對順鉑的耐藥性。
采用流式細胞術(shù)Annexin V結(jié)合7-AAD雙染色法,Park等[8]研究人骨肉瘤細胞中Gal-3的表達對順鉑誘導(dǎo)的細胞凋亡的影響,Gal-3 siRNA抑制細胞Gal-3的表達后與順鉑共同孵育24h,發(fā)現(xiàn)Gal-3抑制組順鉑促進細胞凋亡所需的濃度明顯低于對照組,且可增加順鉑促進細胞凋亡的作用。同時發(fā)現(xiàn),促進凋亡的作用與caspase途徑的活化相關(guān)。
Cheng等[17]選取人慢性白血病細胞系K562,分別通過轉(zhuǎn)染或用短發(fā)夾RNA干擾使細胞內(nèi)Gal-3的表達升高或者降低,用10μM順鉑處理細胞24h,發(fā)現(xiàn)與對照組相比,Gal-3過表達組細胞凋亡明顯降低,而Gal-3表達被抑制后增加了順鉑導(dǎo)致的細胞凋亡。進一步研究發(fā)現(xiàn),Gal-3過表達后細胞線粒體內(nèi)Bcl-2家族中Mcl-1、Bcl-xL以及Bcl-2的表達升高。提示Gal-3能促進白血病細胞對順鉑耐藥,該作用是通過加強Bcl-2家族蛋白的作用實現(xiàn)的。
綜上所述,在多種惡性腫瘤的研究中,Gal-3與惡性腫瘤順鉑耐藥均相關(guān),即Gal-3會增加不同類型的惡性腫瘤細胞順鉑耐藥,且與肺癌預(yù)后相關(guān),但具體相關(guān)機制尚待進一步研究。通過了解Gal-3與順鉑耐藥的關(guān)系可以為耐藥性惡性腫瘤的治療提供新的方向。
[1] Viguier M,Advedissian T,Delacour D,et al.Galectins in epithelial functions[J].Tissue Barriers,2014,2:e29103.
[2] Yang R Y,Rabinovich G A,Liu F T,et al.Galectins:structure, function and therapeutic potential[J].Expert Rev Mol Med,2008, 10:e17.
[3]Cardoso A C,Andrade L N,Bustos S O,et al.Galectin-3 Determines Tumor Cell Adaptive Strategies in Stressed Tumor Microenvironments[J].Front Oncol,2016,6:127.
[4]Funasaka T,Raz A,Nangia-Makker P.Galectin-3 in angiogenesis and metastasis[J].Glycobiology,2014,24(10):886-891.
[5]Peng W,Wang H Y,Miyahara Y,et al.Tumor-associated galectin-3 modulates the function of tumor-reactive T cells[J].Cancer Res, 2008,68(17):7228-7236.
[6]Fukumori T,Oka N,Takenaka Y,et al.Galectin-3 regulates mitochondrial stability and antiapoptotic function in response to anticancer drug in prostate cancer[J].CancerRes,2006,66(6):3114-3119.
[7] Wang Y,Nangia-Makker P,Balan V,et al.Calpain activation through galectin-3 inhibition sensitizes prostate cancer cells to cisplatin treatment[J].Cell Death Dis,2010,1:e101.
[8] Park G B,Kim D J,Kim Y S,et al.Silencing of galectin-3 represses osteosarcoma cell migration and invasion through inhibition of FAK/Src/Lyn activation and β-catenin expression and increases susceptibility to chemotherapeutic agents[J].Int J Oncol, 2015,46(1):185-194.
[9] Stewart D J.Mechanisms of resistance to cisplatin and carboplatin[J].Crit Rev Oncol Hematol,2007,63(1):12-31.
[10] Wu F,Hu N,Li Y,et al.Galectin-3 genetic variants are associated with platinum-based chemotherapy response and prognosis in patients with NSCLC[J].Cell Oncol(Dordr),2012,35(3): 175-180.
[11]Yanagita K,Nagashio R,Ryuge S,et al.Serum Anti-Gal-3 Autoantibody is a Predictive Marker of the Efficacy of Platinum-Based Chemotherapy against Pulmonary Adenocarcinoma[J].Asian Pac J Cancer Prev,2015,16(17):7959-7966.
[12] Wang T,Chu Z,Lin H,et al.Galectin-3 contributes to cisplatin-induced myeloid derived suppressor cells(MDSCs)recruitment in Lewis lung cancer-bearing mice[J].Mol Biol Rep, 2014,41(6):4069-4076.
[13] Lavra L,Ulivieri A,Rinaldo C,et al.Gal-3 is stimulated by gain-of-function p53 mutations and modulates chemoresistance in anaplastic thyroid carcinomas[J].J Pathol,2009,218 (1):66-75.
[14]Kim S J,Shin J Y,Cheong T C,et al.Galectin-3 germline variant at position 191 enhances nuclear accumulation and activation of β-catenin in gastric cancer[J].Clin Exp Metastasis,2011,28 (8):743-750.
[15] Wongkham S,Junking M,Wongkham C,et al.Suppression of galectin-3 expression enhances apoptosis and chemosensitivity in liver fluke-associated cholangiocarcinoma[J].Cancer Sci, 2009,100(11):2077-2084.
[16] Oishi T,Itamochi H,Kigawa J,et al.Galectin-3 may contribute to Cisplatin resistance in clear cell carcinoma of the ovary[J].Int J Gynecol Cancer,2007,17(5):1040-1046.
[17] Cheng Y L,Huang W C,Chen C L,et al.Increased galectin-3 facilitates leukemia cell survival from apoptotic stimuli[J].Biochem Biophys Res Commun,2011,412(2):334-340.
2016-04-13)
(本文編輯:馬雯娜)
10.12056/j.issn.1006-2785.2017.39.5.2016-514
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