許光明，張曉靜，劉 藝，張 悅，文 迪，叢 斌

(河北醫(yī)科大學(xué) 1.基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院法醫(yī)學(xué)系，2. 臨床診斷學(xué)教研室，河北 石家莊 050017)

糖皮質(zhì)激素誘導(dǎo)大鼠原代培養(yǎng)杏仁核神經(jīng)元的凋亡

許光明1，張曉靜1，劉 藝1，張 悅2，文 迪1，叢 斌1

(河北醫(yī)科大學(xué) 1.基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院法醫(yī)學(xué)系，2. 臨床診斷學(xué)教研室，河北 石家莊 050017)

目的 探討糖皮質(zhì)激素(GC)對大鼠杏仁核神經(jīng)元凋亡的影響。方法 原代培養(yǎng)大鼠杏仁核神經(jīng)元，首先采用免疫熒光技術(shù)對培養(yǎng)的原代神經(jīng)元及其是否存在豐富的糖皮質(zhì)激素受體分別進行了鑒定，并用流式細胞術(shù)檢測不同濃度的人工合成糖皮質(zhì)激素地塞米松(10-9～10-6mol·L-1)對杏仁核神經(jīng)元細胞凋亡的影響。然后將實驗分為4組：對照組(CON)、地塞米松(DEX)刺激組、地塞米松和米非司酮(受體抑制劑)共同刺激組(DEX+MIF)、米非司酮刺激組(MIF)。用TUNEL原位技術(shù)檢測各組的凋亡情況，并用RT-PCR技術(shù)檢測各組Bax mRNA的表達變化。結(jié)果 (1)與CON組相比，不同濃度的DEX作用于神經(jīng)元后，神經(jīng)元凋亡率明顯升高(P<0.05)，且呈濃度依賴性；(2)TUNEL染色結(jié)果顯示， DEX組細胞凋亡率明顯高于CON組(P<0.05)，而與DEX組相比，DEX+ MIF組凋亡率明顯降低(P<0.05)，MIF組與CON組相比無明顯差異(P>0.05)；(3)與CON組相比，DEX組Bax mRNA的表達量明顯升高(P<0.05)，而與DEX組相比，DEX+ MIF組的Bax mRNA的表達量明顯降低(P<0.05)，MIF組與CON組相比無明顯差異(P>0.05)。結(jié)論 糖皮質(zhì)激素可以通過其受體誘導(dǎo)大鼠原代培養(yǎng)杏仁核神經(jīng)元的凋亡。

應(yīng)激；糖皮質(zhì)激素；杏仁核；神經(jīng)元；凋亡；原代培養(yǎng)

下丘腦-垂體-腎上腺皮質(zhì)軸(hypothalamus-hypophysis-adrenal cortex axis, HPA)興奮，外周血糖皮質(zhì)激素(glucocorticoid, GC)分泌增多是應(yīng)激主要的神經(jīng)內(nèi)分泌反應(yīng)之一。近年來研究證實，GC濃度持續(xù)升高，不僅會抑制HPA軸，導(dǎo)致內(nèi)分泌紊亂，并且能夠透過血腦屏障，作用于中樞神經(jīng)系統(tǒng)，造成神經(jīng)元突起的萎縮、神經(jīng)元可塑性降低、甚至死亡[1-4]。因此GC對中樞神經(jīng)系統(tǒng)的損傷作用有可能是應(yīng)激引起中樞神經(jīng)系統(tǒng)功能障礙的重要機制之一。

杏仁核(amygdala)是邊緣系統(tǒng)中最重要的核團之一，它的纖維聯(lián)系和功能極其廣泛，是調(diào)節(jié)情緒、控制恐懼記憶的神經(jīng)中樞，在情感的形成和貯存方面起著至關(guān)重要的作用，對應(yīng)激反應(yīng)十分敏感。研究證實，杏仁核神經(jīng)元凋亡與創(chuàng)傷后應(yīng)激障礙等多種精神疾患密切相關(guān)。因此研究GC對杏仁核的損傷作用對于揭示心理應(yīng)激引起精神損傷的機制具有重要科學(xué)意義。而目前GC是否可以引起杏仁核神經(jīng)元凋亡尚不清楚。本研究旨在從細胞水平來探討GC對原代培養(yǎng)大鼠杏仁核神經(jīng)元凋亡的影響，為揭示應(yīng)激對中樞神經(jīng)系統(tǒng)的損傷作用機制提供基礎(chǔ)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 動物 新生24 h內(nèi)SD乳鼠，♀♂不限，由河北醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心提供。

1.2 主要試劑 DMEM/F12培養(yǎng)基、Neurobasal培養(yǎng)基、B27培養(yǎng)基添加劑、胎牛血清，Hank’s液均購自美國Gibco公司；多聚賴氨酸、0.25%胰蛋白酶、0.05%胰蛋白酶、DNA酶均購自美國Sigma公司； 100×青/鏈霉素溶液購自奧地利PAA公司； 10×PBS、4%多聚甲醛溶液、抗熒光衰減封片劑和DEPC處理水均購自北京Solarbio有限公司；TRIzol、Plat SYBR Green qPCR SuperMix UDG購自美國Invitrogen公司； Revert Aid First cDNA Synthesis Kit購自美國Thermo公司；Eastep Super總RNA提取試劑盒購自上海Promega有限公司；地塞米松(dexamethasone, DEX)和米非司酮(mifepristone, MIF)購自上海梯希愛公司；抗體稀釋液和山羊血清工作液購自北京中杉生物試劑有限公司；兔抗MAP2多克隆抗體購自美國Proteintech公司；兔抗GR多克隆抗體購自美國Affinity公司；TUNEL原位凋亡檢測試劑盒購自美國Millipore公司；流式FITC-AnnexinV/PI試劑盒購自美國BD公司；其他生化試劑均為國產(chǎn)分析純。所用引物由美國Invitrogen公司根據(jù)設(shè)計合成，見Tab 1。

Tab 1 Sequences for primers

1.3 主要方法

1.3.1 原代杏仁核神經(jīng)元的培養(yǎng) 根據(jù)Colin、Beaudoin等[2,5,6]的文獻報道，全程無菌操作，取新生24 h內(nèi)的乳鼠，75%乙醇全身浸泡消毒3 min，于冰上迅速斷頭取腦；將腦組織置于預(yù)冷的DMEM培養(yǎng)液中，置冰上，解剖顯微鏡下分離雙側(cè)杏仁核，并剝除多余的血管膜、被膜等組織；用顯微剪將收集的杏仁核組織剪成大約1 mm3的小塊，移入15 mL離心管中；0.125%胰蛋白酶消化，37 ℃，15 min，期間震蕩混勻2次；1 200 r·min-1，離心5 min；棄上清，用含10%血清的DMEM/F12完全培養(yǎng)基終止消化，重新懸浮沉淀；1 mL口徑的吸管輕柔吹打成單細胞懸液；400目無菌尼龍篩網(wǎng)過濾；1 000 r·min-1，離心5min，并用DMEM/F12完全培養(yǎng)基重新懸浮沉淀吹打成單細胞懸液；細胞計數(shù)，按合適濃度接種于多聚賴氨酸包被的細胞培養(yǎng)板中；將培養(yǎng)板放入37℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)進行培養(yǎng)；3～5 h后，更換DMEM/F12完全培養(yǎng)基為Neurobasal+B27神經(jīng)元培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)；3 d換液1次，神經(jīng)元發(fā)育成熟后，用于后續(xù)實驗。

1.3.2 神經(jīng)元鑒定 杏仁核神經(jīng)元培養(yǎng)至d 10，4%多聚甲醛固定20 min；0.2% TritonX-100室溫靜置15 min；滴加山羊血清工作液正常封閉非特異性結(jié)合位點，37℃孵育30 min；加兔抗MAP2(1 ∶200稀釋)抗體，4℃過夜；37℃復(fù)溫30 min后，用0.01 mol·L-1PBS低速搖床上清洗3次，每次5 min；滴加Dylight488標(biāo)記的山羊抗兔IgG(1 ∶100稀釋)，37℃避光孵育1 h；抗熒光衰減封片劑封片，共聚焦顯微鏡下觀察MAP2表達并采集圖像。

1.3.3 GR檢測杏仁核神經(jīng)元 培養(yǎng)至d 10， 4%多聚甲醛固定20 min；0.2%TritonX-100室溫靜置15 min；滴加山羊血清工作液正常封閉非特異性結(jié)合位點，37℃孵育30 min；加兔抗GR(1 ∶100稀釋)抗體，4℃過夜；37℃復(fù)溫30 min后，用0.01 mol·L-1PBS低速搖床上清洗3次，每次5 min；滴加Dylight594標(biāo)記的山羊抗兔IgG(1 ∶100稀釋)，37℃避光孵育1 h；DAPI復(fù)染，抗熒光衰減封片劑封片，激光共聚焦顯微鏡下觀察GR表達并采集圖像；

1.3.4 流式細胞術(shù)FITC-AnnexinV/PI檢測細胞凋亡率 6孔板各孔細胞加入不同濃度的DEX(10-9～10-6mol·L-1)作用48 h，用0.05%的胰蛋白酶消化制備成單細胞懸液，各組均加入5 μL FITC標(biāo)記的AnnexinV和5 μL PI，混勻后室溫避光孵育15 min；加入1×Binding buffer補足至500 μL；立即上流式細胞儀檢測各組的凋亡率。

1.3.5 實驗分組 后續(xù)實驗分為4組：(1)CON組：用神經(jīng)元培養(yǎng)液正常培養(yǎng)；(2)DEX組：用10-6mol·L-1的DEX培養(yǎng)；(3)DEX+MIF組：用10-6mol·L-1的DEX和10-6mol·L-1的MIF共同培養(yǎng)；(4)MIF組：用10-6mol·L-1的MIF單獨培養(yǎng)。各組加入的培養(yǎng)液量一致，均作用48 h。

1.3.6 TUNEL檢測凋亡率 待藥物作用48 h后，1%多聚甲醛室溫固定10 min；浸洗后再用預(yù)冷的乙醇醋酸(2 ∶1配制)溶液于-20℃進行再固定5 min；然后滴加平衡液Equilibration Buffer，室溫下反應(yīng)；加TdT工作液，蓋上塑料蓋玻片，濕盒中37℃孵育1 h；放入終止液中，搖動15 s后室溫放置10 min以終止反應(yīng)；0.01 mol·L-1PBS低速搖床上清洗3次，每次2 min；滴加熒光抗體工作液，蓋上塑料蓋玻片，室溫濕盒中避光孵育30 min；0.01 mol·L-1PBS低速搖床上清洗3次，每次2 min；DAPI復(fù)染，抗熒光衰減封片劑封片，激光共聚焦顯微鏡下觀察染色結(jié)果(TUNEL陽性細胞標(biāo)記為綠色，DAPI標(biāo)記細胞核為藍色)。每張切片隨機選取5個高倍鏡視野(×200)，所采集的每幅圖像都盡量包含相同的細胞數(shù)目，以陽性細胞百分數(shù)來表示凋亡率。

1.3.7 Real-time PCR檢測BAX mRNA的表達 用Eastep Super總RNA提取試劑盒提取細胞總RNA，用NanoQ微型分光光度計檢測儀測定總RNA含量及濃度，并根據(jù)定量結(jié)果調(diào)整RNA濃度為250 mg·L-1。按照Revert Aid First cDNA Synthesis Kit說明書進行反轉(zhuǎn)錄?？偡磻?yīng)體積為20 μL，各成分為：Oligol(dT)18引物1 μL，RiboLockTM RNA酶抑制劑1 μL，RevertAidTM M-MuLV逆轉(zhuǎn)錄酶1 μL，10-2mol·L-1dNTP Mix 2 μL，5×Reaction Buffer 4 μL，RNA2 μL (500 ng)，無核酶水9 μL。反應(yīng)條件為：42℃ 60 min，70℃ 5 min，4℃ forever。得到cDNA后按照Plat SYBR Green qPCR SuperMix UDG試劑盒進行RT-PCR反應(yīng)?？偡磻?yīng)體積為20 μL，各成分為：SYBR Green qPCR SuperMix UDG 10 μL，F(xiàn)orward Primer(10-5mol·L-1)0.5 μL，Reward Primer(10-5mol·L-1)0.5 μL，cDNA 2 μL，無核酶水7 μL。擴增條件為：50℃ 2 min，95℃ 2 min；95℃ 15 s，60℃ 30 s，45個循環(huán)，以GAPDH作為內(nèi)參基因，用△△Ct法分析基因的相對表達。

2 結(jié)果

2.1 杏仁核神經(jīng)元原代培養(yǎng)結(jié)果 倒置顯微鏡下觀察，剛接種的杏仁核神經(jīng)元呈圓形，單個分布，體積較小，細胞透亮；培養(yǎng)4～6 h后，絕大部分神經(jīng)元已經(jīng)貼壁，并且個別神經(jīng)元長出1～2個小的突起，見Fig 1A；培養(yǎng)至d 10時，神經(jīng)元胞體變大變圓，立體感較強，突起也進一步延長，相互交織形成致密的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)，見Fig 1B。此時的神經(jīng)元發(fā)育成熟，可用于后續(xù)實驗研究。

Fig 1 Morphological characteristics of primary cultured amygdaloid neurons

A:Primary cultured amygdaloid neurons on 2 d(×200).B: Primary cultured amygdaloid neurons on 8 d(×200)

2.2 原代培養(yǎng)的杏仁核神經(jīng)元MAP-2免疫熒光鑒定 用神經(jīng)元特異性標(biāo)記物MAP-2多克隆抗體標(biāo)記神經(jīng)元，MAP-2陽性細胞胞質(zhì)及突起呈綠色， DAPI標(biāo)記的細胞核呈藍色，神經(jīng)元突起相互交織成網(wǎng)絡(luò)。神經(jīng)元純度為MAP-2標(biāo)記的神經(jīng)元占DAPI標(biāo)記的神經(jīng)元總細胞數(shù)的比值，結(jié)果顯示神經(jīng)元細胞純度>90%，見Fig 2。

2.3 原代培養(yǎng)的杏仁核神經(jīng)元GC受體的表達 原代杏仁核神經(jīng)元培養(yǎng)成熟后，用GR的抗體標(biāo)記杏仁核神經(jīng)元內(nèi)的GR，GR陽性為細胞胞質(zhì)呈現(xiàn)紅色，DAPI標(biāo)記的細胞核呈藍色。激光共聚焦顯微鏡下顯示，原代培養(yǎng)杏仁核神經(jīng)元含有豐富的GR陽性表達，見Fig 3。

Fig 2 Neuron purity of rat primary cultured amygdaloid neurons

A:×200；B:×400. Immunofluorescence staining with anti-MAP2(green 1 ∶200),with blue fluorescent dyes DAPI(1.25 mg·L-1)used to stain DNA in nucleus. The percentage of amygdaloid neurons to the total cells was neuron purity. Results showed the purity in the present study was more than 90%

Fig 3 Expression of GC receptor in primary cultured amygdaloid neurons(×400)

A:Two fluorescence channels merge; B: Only one fluorescence channel. Immunofluorescence staining with anti-GR(red 1 ∶100),with blue fluorescent dyes DAPI(1.25 mg·L-1)used to stain DNA in nucleus.

2.4 不同濃度的GC對杏仁核神經(jīng)元凋亡的影響 流式細胞術(shù)AnnexinV-FITC/PI雙標(biāo)法檢測不同濃度的DEX(10-9～10-6mol·L-1)對杏仁核神經(jīng)元細胞凋亡的影響。與CON組相比，10-8mol·L-1至10-6mol·L-1的DEX作用于杏仁核神經(jīng)元48 h后，神經(jīng)元凋亡率明顯升高(P<0.05)，且呈濃度依賴性；10-9mol·L-1組的凋亡率與CON組相比差異無顯著性(P>0.05)，見Fig 4、Tab 2。

Tab 2 Effect of different concentrations of DEX on apoptosis of amygdaloid ±s,n=3)

*P<0.05vscontrol，**P<0.01vscontrol

2.5 TUNEL檢測神經(jīng)元凋亡率 TUNEL染色可見，DEX組細胞凋亡率明顯高于CON組(P<0.05)。而與DEX組相比，DEX+MIF組細胞凋亡率明顯降低(P<0.05)，MIF組與CON組相比差異無顯著性(P>0.05)，見Fig 5、Tab 3。

Fig 4 Effect of different concentrations of DEX on apoptosis of amygdaloid neurons

Fig 5 GR participated in GC-induced amygdaloid neuron apoptosis

2.6 Real-time PCR檢測Bax mRNA的表達 采用Real-time PCR技術(shù)檢測促凋亡基因Bax mRNA的表達，結(jié)果可見，與CON組相比，DEX組BAX mRNA的表達量明顯升高(P<0.05)；而與DEX組相比，DEX+ MIF組的Bax mRNA的表達量明顯降低(P<0.05)，而MIF組與CON組相比差異無顯著性(P>0.05)，見Fig 6、Tab 4。

Tab 3 GR participated in GC-induced amygdaloid neuron ±s,n=7)

**P<0.01vscontrol.##P<0.01vsDEX treatment

GroupRQCON0.91±0.15DEX1.13±0.16*DEX+MIF0.76±0.15#MIF0.78±0.20

*P<0.05vscontrol.#P<0.05vsDEX treatment

Fig 6 Effect of DEX on mRNA levels of Bax

3 討論

杏仁核是邊緣系統(tǒng)的重要組成部分，在結(jié)構(gòu)上由13個核團組成，它們有著廣泛的核團間和核團內(nèi)的纖維聯(lián)系。而其重要功能的發(fā)揮主要為3個核團：皮質(zhì)內(nèi)側(cè)核團(MeA)、基底外側(cè)核團(BLA)和杏仁核中央核(CeA)。其中BLA和CeA是負責(zé)恐懼學(xué)習(xí)和記憶的重要中樞，BLA進行感覺信息的傳輸與處理，CeA負責(zé)恐懼行為的表達[7]。杏仁核參與情緒、記憶的產(chǎn)生、識別以及調(diào)節(jié)，是控制恐懼記憶的神經(jīng)中樞，在情感記憶的形成和貯存方面起重要作用，是調(diào)節(jié)HPA軸活性的高位中樞，對應(yīng)激反應(yīng)十分敏感并且容易遭受損傷，從而導(dǎo)致恐懼學(xué)習(xí)、記憶的缺失，情感記憶障礙。研究證實[8-9]，杏仁核的變性和凋亡能夠?qū)е翽TSD的發(fā)生；杏仁核的萎縮和退化能夠加劇阿爾茨海默病的發(fā)生發(fā)展[10]。

有研究表明，束縛應(yīng)激能夠誘導(dǎo)大鼠海馬神經(jīng)元的凋亡，其機制與促腎上腺皮質(zhì)激素釋放激素(CRH)有關(guān)[11]。并且應(yīng)激引起的GC升高能夠引起大鼠海馬、杏仁核及前皮質(zhì)的結(jié)構(gòu)發(fā)生改變[12]。這些研究均提示HPA軸相關(guān)激素對海馬、杏仁核等情感腦區(qū)的損傷作用可能是應(yīng)激引起精神損傷的機制之一。因此研究GC對杏仁核的損傷作用對于揭示應(yīng)激引起的精神損傷機制具有重要科學(xué)意義。本研究為了模擬機體束縛應(yīng)激時HPA軸紊亂，外周血GC水平增高的環(huán)境，在離體水平探討了GC對原代培養(yǎng)杏仁核神經(jīng)元凋亡的影響。

GC是通過糖皮質(zhì)激素受體(GC receptor, GR)發(fā)揮生物學(xué)效應(yīng)的，目前已知的受體主要包括α受體和變異片段的β受體兩種亞型。而糖皮質(zhì)激素主要是通過與α受體結(jié)合，發(fā)揮其生理及藥理功能，α受體幾乎在所有組織和有核細胞中均有表達，尤以神經(jīng)元和神經(jīng)膠質(zhì)細胞分布居多，在絕大多數(shù)細胞中其含量遠遠超過β受體[13]。Morimoto等[14]研究發(fā)現(xiàn)，成年SD大鼠杏仁核腦區(qū)高表達GRα。本實驗成功在體外進行了原代杏仁核神經(jīng)元的培養(yǎng)，經(jīng)MAP-2鑒定，神經(jīng)元純度>90%，并且采用免疫熒光技術(shù)用GRα多克隆抗體對原代培養(yǎng)的杏仁核神經(jīng)元進行了標(biāo)記，結(jié)果顯示，原代杏仁核神經(jīng)元高表達GRα，這與Morimoto等的研究結(jié)果一致。

本課題組在預(yù)實驗中采用FITC-AnnexinV/PI流式雙標(biāo)染色檢測了不同濃度的DEX對杏仁核神經(jīng)元凋亡的影響，發(fā)現(xiàn)DEX作用后，杏仁核神經(jīng)元會出現(xiàn)不同程度的凋亡。進一步采用TUNEL檢測了DEX與MIF共同作用后對杏仁核神經(jīng)元凋亡的影響，結(jié)果顯示DEX作用于神經(jīng)元后，細胞凋亡率明顯高于對照組，而MIF作用后，細胞凋亡率明顯降低。MIF是一種GR拮抗劑，它可抑制GC與其受體結(jié)合，使得GC無法發(fā)揮生物學(xué)效應(yīng)[15]。該結(jié)果進一步證實了GC能夠誘導(dǎo)原代培養(yǎng)杏仁核神經(jīng)元的凋亡，而GR拮抗劑MIF能夠有效的降低杏仁核神經(jīng)元的凋亡，說明GC通過受體機制誘導(dǎo)杏仁核神經(jīng)元凋亡。同時用Real-time PCR技術(shù)檢測了促凋亡基因Bax mRNA的表達水平，結(jié)果顯示DEX組神經(jīng)元Bax mRNA的表達水平明顯高于對照組，而DEX+MIF共同刺激組Bax mRNA的表達水平又比DEX組明顯降低，這與TUNEL結(jié)果一致。

綜上所述，本研究成功進行了大鼠杏仁核神經(jīng)元的原代培養(yǎng)，在細胞水平觀察了不同濃度的GC對杏仁核神經(jīng)元凋亡的影響，并通過觀察神經(jīng)元病理學(xué)形態(tài)變化和Bax mRNA的表達水平的改變，證實 GC通過GC受體可以誘導(dǎo)原代培養(yǎng)杏仁核神經(jīng)元的凋亡。這一發(fā)現(xiàn)為束縛應(yīng)激致大鼠杏仁核神經(jīng)元的損傷提供了理論依據(jù)，為正確評價GC在應(yīng)激反應(yīng)中的作用以及應(yīng)激所致精神損傷的早期診斷和治療提供了一定的科學(xué)依據(jù)。而GC通過GR誘導(dǎo)杏仁核神經(jīng)元凋亡的具體分子機制有待進一步研究。

(致謝：本實驗所有研究內(nèi)容均在河北醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院法醫(yī)學(xué)系實驗室完成，參與人員有許光明、張曉靜、劉藝，感謝叢斌教授在課題設(shè)計和實驗思路中給予的悉心指導(dǎo)，感謝在實驗中給予幫助的張曉靜老師、張悅老師、文迪老師。)

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網(wǎng)絡(luò)出版時間：2016-12-5 15:14 網(wǎng)絡(luò)出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/34.1086.R.20161205.1514.024.html

Glucocorticoid-induced rat primary amygdaloid neuron apoptosis

XU Guang-ming1, ZHANG Xiao-jing1, LIU Yi1, ZHANG Yue2, WEN Di1, CONG Bin1

(1.DeptofForensicMedicine,BasicMedicalCollege；2.DeptofClinicalDiagnostics,HebeiMedicalUniversity,Shijiazhuang050017,China)

Aim To investigate the role of GC in inducing apoptosis of amygdaloid neurons. Methods Culturing primary neurons of amygdala, the neurons were identified by immunefluorescence techniques with antibody against microtubule associated protein-2(MAP2) and antibody against GC receptor. Using flow cytometry to detect the effects of different concentrations of dexamethasone on the amygdala neuron apoptosis. Then the experiment was divided into four groups: CON, DEX, DEX+MIF and MIF. The rate of apopto-sis of the four groups was detected by TUNEL technique and the expressions of BAX mRNA of four groups by Real-time PCR technique.Results (1) Compared with the control group, the percentage of apoptotic cells increased significantly with DEX(10-8mol·L-1～10-6mol·L-1) treatment in a concentration-dependent manner. (2) the TUNEL test showed that the percentage of apoptotic cells of DEX group increased significantly, compared with control group. While it decreased significantly in DEX+MIF group, compared with DEX group. There was no difference between MIF group and control group. (3) Compared with control group, the expressions of BAX mRNA of DEX group increased significantly. While the expressions of BAX mRNA of DEX+MIF group decreased significantly, compared with the DEX group.There was no difference between MIF group and control group.Conclusion GC can independently induce the apoptosis of primary cultured neurons in the amygdala by combining with GC receptor.

stress; glucocorticoid; amygdala; neuron; apoptosis; primary culture

時間：2016-12-5 15:14

http://www.cnki.net/kcms/detail/34.1086.R.20161205.1514.022.html

2016-07-08,

2016-09-20

國家自然科學(xué)基金資助項目(No 81430047)

許光明(1989-)，男，碩士，研究方向：神經(jīng)系統(tǒng)疾病，E-mail：fyguangming@163.com; 叢 斌(1957-)，男，博士，教授，研究方向：神經(jīng)系統(tǒng)疾病，通訊作者，Tel：0311-86265602，E-mail:hbydcongbin@126.com

10.3969/j.issn.1001-1978.2016.12.011

A

1001-1978(2016)12-1688-07

R-332；R322.81；R329.25；R392.11；R977.11