楊 柳 王 樂 謝忠奎 郭志鴻 張玉寶

(1.中國科學(xué)院寒區(qū)旱區(qū)環(huán)境與工程研究所，蘭州 730000； 2.中國科學(xué)院大學(xué)，北京 100049)

內(nèi)源IAA、GA3調(diào)控對百合試管苗生長的影響研究

楊 柳1,2王 樂1,2謝忠奎1*郭志鴻1張玉寶1

(1.中國科學(xué)院寒區(qū)旱區(qū)環(huán)境與工程研究所，蘭州 730000；2.中國科學(xué)院大學(xué)，北京 100049)

以東方百合‘Sorbonne’試管苗為對象，對不同濃度IAA及其抑制劑(TIBA)添加后試管苗莖葉和根的生長情況進(jìn)行了研究，測定了試管苗中內(nèi)源激素(IAA，GA3，Zeatin)的變化。數(shù)據(jù)顯示10 mg·L-1IAA促進(jìn)試管苗莖葉、根生長的效果最佳而40 mg·L-1IAA抑制試管苗的生長，TIBA抑制試管苗莖葉、根生長的效果顯著。內(nèi)源激素測定結(jié)果表明外源IAA及TIBA處理影響了內(nèi)源激素的變化，IAA對生長的影響可能是通過調(diào)節(jié)內(nèi)源激素的變化而實(shí)現(xiàn)的。結(jié)合生長情況及內(nèi)源激素變化的分析結(jié)果表明：過高濃度的IAA、過低濃度的GA3都不利于試管苗生長，內(nèi)源IAA和GA3在適宜濃度下才能發(fā)揮促進(jìn)生長的作用；內(nèi)源Zeatin在試管苗的生長調(diào)控中可能不發(fā)揮作用。本實(shí)驗(yàn)為百合種植中外源激素的合理使用提供了依據(jù)，有助于提升百合種植者的經(jīng)濟(jì)效益。

百合；IAA處理；生長；內(nèi)源激素

植物激素是植物體內(nèi)合成的一類有機(jī)物質(zhì)，由產(chǎn)生部位運(yùn)輸?shù)阶饔貌课?，以極低的濃度發(fā)揮生理作用，參與包括植物休眠、萌發(fā)、生長、分化、生殖、成熟和衰老在內(nèi)的每一個發(fā)育過程和所有的生理活動[1～5]。自1928年生長素發(fā)現(xiàn)以來植物激素一直是植物科學(xué)及相關(guān)領(lǐng)域的研究熱點(diǎn)。

IAA在植物生長調(diào)節(jié)中發(fā)揮重要的作用，廣泛應(yīng)用于各種植物的體外培養(yǎng)，但多與其他生長調(diào)節(jié)物質(zhì)共同使用。IAA+GA處理可以促進(jìn)馬鈴薯(Solanumtuberosum)試管苗的生長，明顯提高試管苗的高度，且隨著IAA濃度升高芽的長度增加；IAA+GA+BAP處理增加試管薯鮮重[6～7]。IAA配合6-BA、NAA、KT、IBA處理可以誘導(dǎo)紅掌(Anthuriumandraeanum)產(chǎn)生不定芽[8]、促進(jìn)蜀葵(Althaearosea)芽的伸長生長和甜菜試管苗(Betavulgaris)生根[9～10]、有利于玫瑰(Rosarugosa)不定根的生長[11]。培養(yǎng)基中單一添加IAA更易于研究其對植物生長所發(fā)揮的作用。IAA可以誘導(dǎo)紅辣椒(Capsicum)、薰衣草(Lavandulavera)和大葉相思(Acaciaauriculiformis)試管苗的生根[12～14]、促進(jìn)紅辣椒外植體芽的形成[12]，是試管苗生長調(diào)節(jié)的重要激素。

切花百合是具有重要經(jīng)濟(jì)價值的高檔花卉，在中國的種植范圍逐年擴(kuò)大[15]。組培是百合新品種快繁和種性恢復(fù)的重要手段。IAA在百合組培中已有應(yīng)用，與6-BA、NAA等共同調(diào)控試管苗的增殖分化和生長[16～17]，對試管苗叢生芽生長、生根及根伸長產(chǎn)生影響[18～20]。但外源激素對內(nèi)源IAA的調(diào)控以及內(nèi)源激素變化對百合試管苗生長的影響還不是很清楚。

本研究以東方百合‘Sorbonne’(Liliumoriental‘Sorbonne’)試管苗為材料，通過外源添加不同濃度生長素(IAA)及其輸出抑制劑(2,3,5-Triiodobenzoic acid，TIBA)的方法，定期測定試管苗生長發(fā)育進(jìn)程中內(nèi)源激素的變化，研究不同內(nèi)源激素對試管苗生長發(fā)育的影響，探討外源IAA調(diào)控植物生長的內(nèi)在機(jī)制。

1 實(shí)驗(yàn)材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

選取健康無病害的百合‘Sorbonne’，將外層鱗片(第1～2層)剝離后使用75%酒精、0.1%(w/v)HgCl2先后進(jìn)行表面消毒30 s、6 min。消毒后的外層鱗片切取1 cm×1 cm的小塊，近軸面朝上放置于MS培養(yǎng)基中。經(jīng)過8個月的生長之后，選取長勢一致的小苗，切掉根葉后轉(zhuǎn)移至添加了1.0，10，20，30，40 mg·L-1IAA和1.0，10，20，30，40 mg·L-1TIBA的培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng)。在激素培養(yǎng)的第40、60、80 d測量試管苗的莖葉鮮重、根鮮重和根長。每個處理測量3瓶試管苗，每瓶5株，取平均值。每個處理的小鱗莖分為3組，測定內(nèi)源激素含量。

1.2 激素的提取與純化

準(zhǔn)確稱取小鱗莖樣品3 g，加入10 mL 80%(v/v)甲醇、50 μL 30 mg·mL-1銅試劑(Sodium diethyldithiocarbamate，抗氧化劑)、0.1 g polyvinylpolypyrrolidone(PVPP，吸附色素類和多酚類雜質(zhì))，研磨勻漿[21～22]。所有器皿和試劑均在4℃預(yù)冷，全部操作在冰上完成，提取過程全程避光。勻漿提取液于冰水中避光超聲提取15 min后，20 000 r·min-1下4℃離心15 min，取上清液。殘?jiān)屑尤? mL 80%(v/v)甲醇后再次冰水中超聲提取15 min，上述相同條件離心15 min。合并兩次上清液，混合提取液于相同條件下離心15 min后，氮?dú)獯瞪锨逡褐良状纪耆珦]發(fā)，剩余的水溶液冷凍干燥法干燥。用10 mL超純水溶解干燥后的殘留物。用10 mL甲醇和80 mL超純水活化、平衡C18 Sep-Pak柱(美國Waters公司)。然后用C18 Sep-Pak柱收集殘留物溶解后水溶液中的激素，5 mL 60%(v/v)甲醇洗脫C18 Sep-Pak柱，收集洗脫液。洗脫液過0.45 μm濾膜后(美國Millipore公司)即為待測樣品。每個樣品測定3次。

1.3 儀器與色譜條件

Agilent 1200液相色譜儀(美國Agilent公司)。植物激素標(biāo)準(zhǔn)樣品為Sigma公司色譜級試劑，甲醇、乙腈、醋酸為色譜級試劑(山東禹王實(shí)業(yè)有限公司)，實(shí)驗(yàn)用水為超純水(美國Millipore公司)。分析過程參照文獻(xiàn)并做改動[23]。色譜條件：Agilent XDB-C18(150 mm×4.6 mm，5 μm)。流動相A為甲醇，流動相B為乙腈，流動相C為0.05%醋酸；梯度洗脫程序?yàn)椋?～4.5 min：A/B/C=25∶4∶71；4.5～19 min：A/B/C=41∶9∶50；19～30 min：A/B/C=80∶20∶0；30 min結(jié)束：A/B/C=25∶4∶71。分析過程采用各激素的最佳吸收波長進(jìn)行檢測，程序如下：0～7 min：270 nm(Zeatin)；7～13.5 min：200 nm(GA3)；13.5～16.5 min：210 nm(IAA)；16.5 min結(jié)束：270 nm(ABA)。溫度：20℃；流速：0.6 mL·min-1；進(jìn)樣量：10 μL。

1.4 數(shù)據(jù)分析

試管苗莖葉重量、根重量和根長數(shù)據(jù)的單因素方差分析采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件中的one-way ANOVA，并用Duncan進(jìn)行顯著性檢驗(yàn)。圖表在Origin 8.5中繪制。

2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果

2.1IAA及其抑制劑對百合試管苗莖葉鮮重的影響

從外源IAA添加后40、60和80 d試管苗莖葉生長的情況看，10和20 mg·L-1IAA相比其他濃度具有更為顯著的促進(jìn)作用。10 mg·L-1IAA在60和80 d時發(fā)揮作用，而20 mg·L-1IAA在40和60 d時發(fā)揮作用，所以10 mg·L-1IAA的作用更為持久。TIBA對試管苗莖葉生長的抑制作用顯著，隨著培養(yǎng)時間延長更為明顯。TIBA的作用具有濃度效應(yīng)，高濃度TIBA處理的莖葉重量最低，隨著濃度降低抑制作用減弱(表1)。

表1外源IAA及其抑制劑處理對百合試管苗莖葉鮮重的影響

Table1EffectofexogenousIAAanditsinhibitor(2,3,5-Triiodobenzoicacid，TIBA)onthefreshweightofstemsandleavesofinvitroseedlingofL.oriental‘Sorbonne’

處理Treatments濃度Concentration(mg·L-1)莖葉鮮重Freshweightofstemsandleaves(g)40d60d80dCK01．20±0．25a1．51±0．32c1．86±0．61bcIAA1．00．96±0．15b1．73±0．41b2．00±0．38b100．96±0．13b2．22±0．52a2．93±0．67a201．16±0．21a2．04±0．48a2．03±0．58b300．88±0．14b1．49±0．31c1．98±0．35b400．96±0．16b0．75±0．12e0．96±0．13dTIBA1．00．48±0．01c1．03±0．24d1．63±0．42c100．32±0．01c0．05±0．01f0．03±0．00e200．26±0．00d0．07±0．01f0．01±0．00e300．10±0．00de0．00±0．00f0．04±0．01e400．04±0．01e0．00±0．00f0．00±0．00e

注：同列不同小寫字母表示差異顯著(P≤0.05)，下同。

Note:Different lowercase letters in the same row indicate significant difference(P≤0.05),the same as below.

2.2 IAA及其抑制劑對百合試管苗根鮮重的影響

結(jié)果顯示，培養(yǎng)基中添加IAA后40 d時，與對照相比，最高濃度IAA(40 mg·L-1)對百合試管苗的根重量沒有影響，其他濃度全部顯著促進(jìn)試管苗根的生長，其中30 mg·L-1IAA的作用最為顯著。培養(yǎng)至60 d時，30 mg·L-1IAA對試管苗根生長的促進(jìn)作用不再顯著，10和20 mg·L-1IAA處理后的根重量顯著高于對照和其他處理。80 d時，10 mg·L-1IAA處理的根重量最高。綜合來看，10 mg·L-1IAA對根重量的促進(jìn)作用最為持久。TIBA對百合試管苗根重量的影響在處理后40 d時已經(jīng)顯示出來。高濃度TIBA(30和40 mg·L-1)完全抑制了根的生長，40 mg·L-1IAA的抑制作用在培養(yǎng)80 d時仍然存在，30 mg·L-1IAA的抑制作用在處理后的80 d時稍有減弱。TIBA對百合試管苗根生長的抑制作用也有濃度效應(yīng)，隨著處理濃度降低，抑制效果減弱(表2)。

表2外源IAA及其抑制劑處理對百合試管苗根鮮重的影響

Table2EffectofexogenousIAAanditsinhibitor(2,3,5-Triiodobenzoicacid，TIBA)onthefreshrootweightofinvitroseedlingofL.oriental‘Sorbonne’

處理Treatments濃度Concentration(mg·L-1)根鮮重Freshweightofroot(g)40d60d80dCK00．53±0．12e1．51±0．32c1．86±0．37bcIAA1．01．19±0．35c1．73±0．49b2．00±0．51b102．08±0．49b2．22±0．61a2．93±0．63a202．01±0．58b2．04±0．59a2．03±0．58b303．38±0．69a1．49±0．30c1．98±0．43b400．53±0．09e0．75±0．13e0．96±0．20dTIBA1．00．80±0．13d1．03±0．21d1．63±0．48c100．27±0．05f0．05±0．01f0．03±0．00e200．02±0．00g0．01±0．00f0．01±0．00e300．00±0．00g0．00±0．00f0．04±0．01e400．00±0．00g0．00±0．00f0．00±0．00e

表3外源IAA及其抑制劑處理對百合試管苗根長的影響

Table3EffectoftheexogenousIAAanditsinhibitor(2,3,5-Triiodobenzoicacid，TIBA)ontherootlengthofinvitroseedlingofL.oriental‘Sorbonne’

處理Treatments濃度Concentration(mg·L-1)根長Rootlength(cm)40d60d80dCK02．59±0．65bc5．10±1．45a5．14±0．95aIAA1．02．37±0．15c3．59±0．86b3．49±0．28bc104．46±0．34a3．99±0．31ab3．38±1．04bc203．21±0．44b5．08±0．27a3．59±0．19bc304．00±0．38a4．70±1．13a3．79±0．39b402．71±0．72bc2．24±0．22c2．78±0．57cTIBA1．00．00±0．00d0．00±0．00d0．00±0．00e100．00±0．00d0．00±0．00d0．00±0．00e200．10±0．00d0．37±0．00d0．24±0．15e300．00±0．00d0．00±0．00d0．00±0．00e400．00±0．00d0．00±0．00d0．00±0．00e

2.3 IAA及其抑制劑對百合試管苗根長的影響

對照百合試管苗根的長度在處理后60 d時達(dá)到最高值，培養(yǎng)至80 d時根長不再增加。IAA處理改變了試管苗根長的生長規(guī)律。IAA處理(10和30 mg·L-1)在40 d時顯著增加了根的長度，60 d時除20 mg·L-1IAA外其他濃度均抑制了根長的增加；80 d時，所有濃度的IAA處理都抑制了根的伸長生長。高濃度TIBA(30和40 mg·L-1)完全抑制了百合試管苗根的伸長生長，隨著TIBA濃度降低和培養(yǎng)時間延長抑制作用逐漸解除，培養(yǎng)至80 d時1.0 mg·L-1TIBA處理對根長已經(jīng)沒有抑制作用(表3)。

2.4IAA及其抑制劑對百合試管苗小籽球中內(nèi)源激素的影響

處理后40 d時，所有濃度IAA均促進(jìn)了百合試管苗小鱗莖中內(nèi)源IAA的合成，且具有濃度效應(yīng)，1.0 mg·L-1IAA處理后的增量為對照的1.4倍，40 mg·L-1IAA處理后內(nèi)源IAA含量最高(為對照的131.6倍)。隨著培養(yǎng)時間延長，所有IAA處理后的內(nèi)源IAA含量都降低，80 d時所有處理與對照的內(nèi)源IAA處于相同水平(圖1A)。高濃度TIBA(40,30,20 mg·L-1)幾乎完全抑制了百合試管苗小鱗莖內(nèi)源IAA的合成。隨著濃度降低、時間延長，TIBA的抑制作用減弱，1.0 mg·L-1TIBA處理的試管苗內(nèi)源IAA在60和80 d時已經(jīng)超過對照水平(圖1B)。培養(yǎng)期間不同濃度外源IAA處理后內(nèi)源GA3的變化沒有規(guī)律，但最高濃度IAA(40 mg·L-1)的內(nèi)源GA3始終處于最低水平(圖2A)。除80 d時最低濃度(1.0 mg·L-1)外，TIBA處理不同程度的降低了內(nèi)源GA3含量(圖2B)。培養(yǎng)期間，所有IAA處理后的內(nèi)源Zeatin高于對照或與對照處于相同水平(圖3A)。最低濃度(1.0 mg·L-1)TIBA降低了Zeatin的含量，其他的高濃度TIBA均促進(jìn)了內(nèi)源Zeatin的合成(圖3B)。本研究未能檢測到‘Sorbonne’試管苗小鱗莖中的ABA。

圖1 東方百合‘Sorbonne’試管苗小鱗莖中內(nèi)源IAA對不同濃度外源IAA(A)及其輸出抑制劑TIBA(B)處理的響應(yīng)Fig.1 Response of endogenous IAA in bulblet of in vitro seedling of L.oriental ‘Sorbonne’ to exogenous IAA(A) and its transport inhibitor TIBA(B) applied in different concentrations

圖2 東方百合‘Sorbonne’試管苗小鱗莖中內(nèi)源GA3對不同濃度外源IAA(A)及其輸出抑制劑TIBA(B)處理的響應(yīng)Fig.2 Response of endogenous GA3 in bulblet of in vitro seedling of L.oriental ‘Sorbonne’ to exogenous IAA (A) and its transport inhibitor TIBA (B) applied in different concentrations

圖3 東方百合‘Sorbonne’試管苗小鱗莖中內(nèi)源Zeatin(ZT)對不同濃度外源IAA(A)及其輸出抑制劑TIBA(B)處理的響應(yīng)Fig.3 Response of endogenous Zeatin(ZT) in bulblet of in vitro seedling of L.oriental ‘Sorbonne’ to exogenous IAA(A) and its transport inhibitor TIBA(B) applied in different concentrations

3 討論

3.1 IAA對百合試管苗生長的影響

IAA可以促進(jìn)植物生長，巴西固氮螺菌(Azospirillumbrasilense)對狼尾草(Pennisetumamericanum)生長的促進(jìn)作用已證明主要是由于其合成的IAA起作用[24]?；谕愣?Pisumsativum)黃化苗莖切段的實(shí)驗(yàn)結(jié)果也表明IAA能夠促進(jìn)莖切段的伸長[25]。適宜濃度(10 mg·L-1)的IAA也促進(jìn)了‘Sorbonne’試管苗莖葉的生長，而IAA輸出抑制劑TIBA處理后試管苗的莖葉生長被顯著抑制。在大豆(Glycinemax)[26]、香石竹(Dianthuscaryophyllus)[27]、棉花(GossypiumMCU 12)[28]中TIBA也發(fā)揮了同樣的抑制生長的作用。

生長素是促進(jìn)植物不定根形成的主要激素，且生長素的作用與處理時間、施用濃度有關(guān)[29]。IAA對‘Sorbonne’試管苗根生長的調(diào)控，體現(xiàn)在根的重量和根的伸長生長兩個方面，綜合來看10 mg·L-1IAA的促進(jìn)作用最為顯著。IAA促進(jìn)了體外培養(yǎng)番茄(Lycopersiconesculentum)葉片[30]、馬鈴薯(S.tuberosum‘Bintje’)切塊[31]、黃瓜(Cucumissativus)離體子葉[32]和豌豆(P.sativum)幼嫩切段[33]不定根的形成和發(fā)育，對大豆(G.max)和大蒜(Alliumsativum)根具有低濃度促進(jìn)生長高濃度抑制生長的作用[34～35]。TIBA對黃瓜下胚軸切段、離體子葉和綠豆(Vignaradiata)下胚軸切段不定根的發(fā)生具有抑制作用[32,36]。TIBA處理后，玉米(Zeamays)試管苗根的伸長生長速率以濃度依賴的方式降低[37]。在‘Sorbonne’試管苗中，高濃度TIBA完全抑制了根的生長，低濃度TIBA的抑制作用減弱。

3.2 內(nèi)源激素的變化與生長的關(guān)系

內(nèi)源IAA含量變化參與調(diào)節(jié)不定根的形成過程[29]，IAA對葡萄(Vitisvinifera)和向日葵(Helianthusannuus)幼苗下胚軸切段的生根是必需的，越高濃度的IAA會誘導(dǎo)產(chǎn)生更多數(shù)量的不定根[38～39]。桃(Amygdaluspersica)和白樺(Betulaplatyphylla)的枝條經(jīng)生根促進(jìn)劑處理后都檢測到了內(nèi)源IAA含量升高[40～41]。趙仲仁認(rèn)為鉀離子對黃瓜(C.sativus)生根的促進(jìn)作用是通過影響內(nèi)源IAA的水平而實(shí)現(xiàn)的[32]。另外，內(nèi)源IAA也會抑制植物的生長發(fā)育，對玉米(Z.mays)和茶(Camelliasinensis)的根長、新梢生長起著負(fù)調(diào)控的作用[42～43]。不同濃度的外源IAA處理‘Sorbonne’試管苗后，小鱗莖中內(nèi)源IAA的含量全部升高。誘導(dǎo)了最高內(nèi)源IAA的40 mg·L-1IAA抑制試管苗莖葉和根的生長，促進(jìn)試管苗莖葉和根生長的10 mg·L-1IAA處理后的內(nèi)源IAA含量居中。TIBA處理，尤其高濃度，抑制了百合試管苗莖葉和根的生長，顯著降低了內(nèi)源IAA的含量，高濃度時幾乎完全抑制了內(nèi)源IAA的合成。Audus證明TIBA作為IAA的直接競爭性抑制劑可將被處理植物根中的IAA降低至接近零[44]。以上結(jié)果證明，過高或過低的內(nèi)源IAA含量都不利于試管苗莖葉和根的生長。也就是說對百合栽培種‘Sorbonne’試管苗的生長來說，內(nèi)源IAA是重要的影響因子，但是需要適宜的濃度才能發(fā)揮最佳的促進(jìn)作用。

有研究結(jié)果顯示內(nèi)源GA在植物的生長過程中發(fā)揮著調(diào)節(jié)作用。高水平的活性GA對車前子(Plantagomajor)植株和芒果(Mangiferaindica)枝條的生長及馬鈴薯(S.tuberosum)匍匐莖和塊莖的形成非常重要[45～47]，GA3是浮水稻(Oryzasativa)和萵苣(Lactucasativa)節(jié)間生根和根伸長生長的重要調(diào)節(jié)物質(zhì)[48～49]。烯效唑(GA3合成抑制劑)對浮萍(Lemnaminor)根切段伸長的顯著抑制作用可被外源GA3完全消除，作者認(rèn)為內(nèi)源GA3通過調(diào)整細(xì)胞伸長從而控制著根的伸長生長[50]。另一方面內(nèi)源GA3含量與體外培養(yǎng)蘋果(Maluspumila‘Jonathan’)的生根能力和馬鈴薯(S.tuberosum‘Spunta’)芽切段的塊莖形成之間存在著負(fù)相關(guān)關(guān)聯(lián)[51～52]。最高濃度IAA(40 mg·L-1)抑制了‘Sorbonne’試管苗的生長，此濃度IAA處理后的內(nèi)源GA3濃度降至最低；除80 d時1.0和30 mg·L-1外，TIBA處理后的GA3全部低于對照。說明低濃度的內(nèi)源GA3限制了‘Sorbonne’試管苗莖葉和根的生長，百合試管苗的生長需要相對高濃度的內(nèi)源GA3。

體外培養(yǎng)的蘋果(M.pumila‘Jonathan’)隨著繼代培養(yǎng)時間延長而不定根的數(shù)量增多，CK含量隨著繼代培養(yǎng)時間延長而升高[51]。內(nèi)源細(xì)胞分類素參與豌豆(P.sativum‘Weibulls Marma’)枝插條不定根形成的調(diào)控[53]。白樺(B.platyphylla)嫩枝經(jīng)生根促進(jìn)劑處理后在根原基發(fā)育期間能顯著增加內(nèi)源ZR(Zeatin-riboside)的含量以達(dá)到有利于生根的水平[41]。但細(xì)胞分裂素抑制了擬南芥(Arabidopsisthaliana)根尖和莖尖分生組織的發(fā)育[54]。除最低濃度(1.0 mg·L-1)TIBA外，其余的TIBA和IAA處理后內(nèi)源Zeatin變化趨勢相似，而1.0 mg·L-1TIBA對試管苗的生長沒有促進(jìn)作用，所以推測內(nèi)源Zeatin可能不參與‘Sorbonne’試管苗生長的調(diào)控。

適宜濃度的外源IAA能夠促進(jìn)百合試管苗的生長。試管苗的內(nèi)源激素受到外源IAA的影響從而發(fā)生改變，外源IAA的作用可能通過內(nèi)源激素的變化得以實(shí)現(xiàn)。適中濃度的內(nèi)源IAA和相對高濃度的內(nèi)源GA3有利于試管苗的生長，這兩種內(nèi)源激素以其適宜的濃度相互協(xié)調(diào)，共同調(diào)控試管苗的生長。

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The National Natural Science Foundation of China(31201651)；The Ningxia Agricultural Comprehensive Development Office(NTKJ2015-05-01)

introduction：YANG Liu(1982—),female,Doctor,major in plant physiology and ecology.

date:2016-05-08

InfluenceofEndogenousIAAandGA3oninvitroLilySeedlingGrowth

YANG Liu1,2WANG Le1,2XIE Zhong-Kui1*GUO Zhi-Hong1ZHANG Yu-Bao1

(1.Cold and Arid Regions Environmental and Engineering Research Institute,Chinese Academy of Sciences,Lanzhou 730000；2.University of Chinese Academy of Sciences,Beijing 100049)

Theinvitroseedlings ofLiliumoriental‘Sorbonne’ were used to study the response of plants to exogenous IAA and its inhibitor (2,3,5-Triiodobenzoic acid, TIBA), including the growth of stems, leaves and roots, and the dynamic change of endogenous hormones was analyzed by HPLC. The data showed that 10 mg·L-1IAA have the best significant role on growth of stems, leaves and roots simultaneously while 40 mg·L-1IAA and TIBA treatments inhibited growth significantly. By the hormone analysis, the endogenous hormones was influenced by exogenous IAA and TIBA application, the effect of IAA on growth was achieved probably by endogenous hormones regulation. Analysis based on the growth and the change of endogenous hormones revealed that higher level of endogenous IAA and lower level of GA3were disadvantageous for growth, and endogenous IAA and GA3played optimal role in their optimum concentrations. Endogenous Zeatin perhaps did not take part in the regulation of seedling growth. These results would be helpful in the rational use of exogenous hormones in lily planting and useful to improve economic benefit of growers.

Lilies;IAA;growth;endogenous hormones

國家自然科學(xué)基金(31201651)；寧夏農(nóng)業(yè)綜合開發(fā)科技推廣項(xiàng)目(NTKJ2015-05-01)

楊柳(1982—)，女，博士研究生，主要從事植物生理生態(tài)研究。

* 通信作者：E-mail:wxhcas@lzb.ac.cn

2016-05-08

* Corresponding author：E-mail:wxhcas@lzb.ac.cn

Q949.71+8.23

A

10.7525/j.issn.1673-5102.2016.05.018