焦裕霞，熊君宇*

(大連醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院麻醉科，遼寧 大連 116027)

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中重度膿毒癥長期生存大鼠模型的建立

焦裕霞，熊君宇*

(大連醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院麻醉科，遼寧 大連 116027)

目的 建立中重度膿毒癥長期生存大鼠模型，觀察膿毒癥自然轉(zhuǎn)歸的過程，為研究膿毒癥提供新思路和方法。 方法 將40只SD大鼠分為對照組(sham組，8只)與盲腸結(jié)扎穿孔術(shù)組(cecal ligation and puncture，CLP組，32只)，所有操作均在小動物麻醉機(jī)，七氟烷吸入麻醉下完成。所有大鼠在其右頸部建立動靜脈通路。術(shù)后恢復(fù)24 h后，CLP組大鼠通過盲腸結(jié)扎穿孔術(shù)致膿毒癥。手術(shù)完畢后將大鼠轉(zhuǎn)移到恢復(fù)室(室內(nèi)溫度22～25℃)，單籠飼養(yǎng)。術(shù)后靜脈補(bǔ)液按1∶1比例分別給予6%HEAS和5%葡萄糖注射液，第1、2天補(bǔ)液量為20 mL/kg/12 h，之后液體減半直至大鼠開始飲食。根據(jù)大鼠生存情況CLP組大鼠自然分為生存組(survival組)和死亡組(dead組)。觀察術(shù)后大鼠至30 d，記錄大鼠的癥狀表現(xiàn)、體重變化、IL-10血漿濃度的變化，并解剖觀察腹腔內(nèi)臟器改變。結(jié)果(1)CLP組術(shù)后24 h內(nèi)生存率為75%，72 h內(nèi)生存率為62.5%，7 d內(nèi)生存率為50%。(2)根據(jù)膿毒癥嚴(yán)重程度評估系統(tǒng)，32只CLP組大鼠在術(shù)后24 h均達(dá)到中重度膿毒癥程度。(3)手術(shù)后，survival組與sham組體重均有下降。survival組大鼠從第4天開始體重下降明顯(P=0.017)。survival組大鼠在術(shù)后第6天體重下降至最低，較原體重下降(8.51±2.23)%；sham組則在術(shù)后第4天體重最低，較原體重下降(2.73±1.82)%，兩組差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.026)。兩組大鼠在術(shù)后第30天時，體重的最大升高率(sham組(16.16±2.39)% 與survival組(13.03±3.74)%比無明顯差異(P=0.29)。(4)術(shù)后1 d與術(shù)前(0 d)相比，三組IL-10血漿濃度均有升高，survival組(P=0.000)和dead組升高明顯(P=0.010)。(5)腹部解剖見：dead組大量惡臭血性腹水，結(jié)扎腸管紫黑，無包裹，無粘連。survival組腹腔廣泛粘連，大網(wǎng)膜失去原有形態(tài)及光澤，趨向結(jié)扎腸管，但無膿腫包裹。sham組解剖未見異常。survival組大鼠脾臟占體重的(2.64±0.37)‰，sham組大鼠脾臟占體重的比例為(1.63±0.20)‰，兩者差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.032)。 結(jié)論本實(shí)驗(yàn)為建立CLP中重度膿毒癥長期生存者模型提供可靠的控制CLP的措施和篩選模型的方法，使其基本符合膿毒癥的發(fā)生發(fā)展規(guī)律。

膿毒癥；長期生存；大鼠模型

膿毒癥(sepsis)是機(jī)體因?yàn)閷Ω腥镜姆磻?yīng)損傷了自身組織，從而出現(xiàn)的一種威脅生命的狀態(tài)[1]。近40年來，盡管大量的基礎(chǔ)與臨床研究發(fā)現(xiàn)了膿毒癥期間許多有意義的變化，膿毒癥的發(fā)病機(jī)制仍未明確[2-4]。迄今為止也沒有特異性和敏感度高的生物指標(biāo)可以明確診斷膿毒癥或判斷預(yù)后[5]。在膿毒癥治療方面，除支持治療外，還沒有國際公認(rèn)的治療手段和藥物[6,7]。這使得我們不得不重新思考研究膿毒癥的思路和方法。膿毒癥的死亡率很高，但終究有生存者[8-10]。那么生存者為何生存，生存機(jī)制對膿毒癥治療有無意義。這些問題都有待于在研究膿毒癥生存者的實(shí)驗(yàn)中解決。本實(shí)驗(yàn)將介紹一種建立中重度膿毒癥長期生存大鼠模型的方法和篩選方法。

1　材料和方法

1.1實(shí)驗(yàn)動物

清潔級雄性SD大鼠，8～9周齡，300～330 g，由大連醫(yī)科大學(xué)動物實(shí)驗(yàn)中心提供[SCXK(遼)2013-0003]。所有實(shí)驗(yàn)操作均按照該實(shí)驗(yàn)中心的操作指南執(zhí)行，并得到動物倫理委員會的許可。所有手術(shù)操作均在小動物麻醉機(jī)(Raymain，中國)下，吸入七氟醚(上海恒瑞，中國)麻醉下完成[SYXK(遼)2013-0006]。

1.2實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1動物分組

手術(shù)前隨機(jī)分為兩組CLP組(n=32)和sham組(n=8)，CLP 術(shù)后隨膿毒癥的不同發(fā)展結(jié)果CLP組自然分為：CLP術(shù)后死亡組(dead組)和CLP術(shù)后生存至30 d組(survival組)。

1.2.2建立動靜脈通路

大鼠頸部備皮消毒，在胸骨上方偏右0.5 cm，開1 cm縱向切口，提起皮膚向右外側(cè)尋找，即可看見暗紫色充盈的右頸外靜脈，鈍性分離出來，利用用插管引導(dǎo)器(BD，美國)，置入PE-50導(dǎo)管(Smith Medical，英國，內(nèi)徑0.58 mm，外徑0.96 mm，總長8 cm)1.5～2 cm結(jié)扎固定。注入約0.05 mL的150 U/mL的肝素鈉注射液封管(塞帽用22 G的實(shí)心鈍針頭剪成1 cm制成)。沿切口繼續(xù)分離開肌肉和筋膜，在左側(cè)胸鎖乳突肌外緣下方即可看見快速搏動的左頸動脈。用鑷子將其輕輕挑出，再鈍性分離開與其伴行的迷走神經(jīng)，動作輕柔，勿損傷神經(jīng)。用動脈夾于近心端夾閉動脈，置入PE導(dǎo)管，松開動脈夾，若置入成功即可見導(dǎo)管有動脈血涌入。同靜脈固定封管。將兩導(dǎo)管經(jīng)頸后部皮下組織穿出，固定于大鼠兩耳中間稍后處，縫合切口。在PE導(dǎo)管貼上紅藍(lán)不干膠以區(qū)分動脈和靜脈導(dǎo)管。

1.2.3盲腸結(jié)扎穿孔(CLP)術(shù)

本實(shí)驗(yàn)通過盲腸結(jié)扎穿孔(CLP)術(shù)致大鼠膿毒癥。建立靜脈通路的大鼠，待其恢復(fù)24 h后，進(jìn)行手術(shù)。將大鼠腹部備皮消毒，臍上沿中線開腹1～2 cm，找到盲腸并暴露出來。CLP組用2-0絲線(強(qiáng)生，中國)結(jié)扎距盲端約2 cm。用21G三角針在結(jié)扎腸段交叉貫穿3次，并擠出腸內(nèi)容物0.2 mL，約綠豆大小，將盲腸回納。sham組僅將盲腸暴露再回納。兩組大鼠均注入腹腔2 mL 0.9%氯化鈉注射液，輕輕搖晃腹腔，使腸管自然擺列。沖洗切口并關(guān)腹。用0.125%的布比卡因注射液局部浸潤切口部位作為術(shù)后鎮(zhèn)痛。

1.2.4術(shù)后護(hù)理與觀察

手術(shù)完畢后將大鼠轉(zhuǎn)移到恢復(fù)室(室內(nèi)溫度22 ～25℃)，單籠飼養(yǎng)。放入已知量的鼠糧和水，每天更換墊料，觀察傷口及排泄物，記錄體重變化和膿毒癥評分。體重變化率=(原體重﹣現(xiàn)體重)/原體重×100%。術(shù)后靜脈補(bǔ)液按1:1比例分別給予6%羥乙基淀粉溶液(北京費(fèi)森尤斯卡比藥業(yè)，中國)和5%葡萄糖注射液，第1、2天補(bǔ)液量為20 mL/kg/12 h，之后液體減半直至大鼠開始飲食。本實(shí)驗(yàn)觀察術(shù)后大鼠至30 d，處死解剖觀察腹腔內(nèi)臟器改變。

1.2.5實(shí)驗(yàn)室檢查

分別于手術(shù)前(0 d)，手術(shù)后1 d，7 d，14 d，22 d，30 d取血1 mL，1000 g離心15 min，保存于-20℃冰箱，待用。選用大鼠白介素10(IL-10)酶聯(lián)免疫試劑盒(CUSABIO，中國)，按照說明書檢測IL-10外周血血漿濃度。

1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

2　結(jié)果

2.1實(shí)驗(yàn)大鼠的生存情況

sham組30 d生存率100%。CLP組術(shù)后1 d內(nèi)生存率為75%，3 d內(nèi)生存率為62.5%，7 d內(nèi)生存率為50%，其生存曲線如圖1示。

圖1　CLP后大鼠30天生存曲線Fig.1　Survival rate of rats after CLP for 30 days

2.2術(shù)后24 h膿毒癥評估

根據(jù)膿毒癥嚴(yán)重程度評估系統(tǒng)(表1)[11]，對CLP組大鼠在術(shù)后24 h進(jìn)行評估。每一大鼠需在外觀和警惕性的評估標(biāo)準(zhǔn)中，至少滿足兩個條件，方可屬于該等級。平均動脈壓檢測時，動脈波形需明顯并且至少平穩(wěn)10 min中，方可記錄數(shù)值。16只CLP組大鼠在術(shù)后24 h均達(dá)到中重度膿毒癥程度。除表中描述的表現(xiàn)外，CLP組大鼠還有口鼻周圍見血漬，惡臭稀便，術(shù)后1～3 d無自主飲表現(xiàn)食的表現(xiàn)。

表1　膿毒癥嚴(yán)重程度評估表

2.3體重變化

每天記錄實(shí)驗(yàn)大鼠的體重，比較sham組與survival組平均體重變化趨勢，如圖2所示。手術(shù)后，survival組與sham組體重均有下降。survival組大鼠從第4天開始體重下降明顯，至第12天均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.017，0.001，0.001，0.003，0.017)；sham組大鼠體重雖有降低，與原體重相比無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。survival組大鼠在術(shù)后第6天體重下降至最低，較原體重下降(8.51±2.23)%；sham組則在術(shù)后第4天體重最低，較原體重下降(2.73±1.82)%。兩組大鼠的體重最大下降率相比較，具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.026)。兩組大鼠在術(shù)后第30天時，均超越原體重，均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義，但兩組體重的最大升高率(sham組(16.16±2.39)% vs survival組(13.03±3.74)%)無明顯差異(P=0.29)，如圖3所示。

圖2　sham組與組體survival組體重隨時間的變化趨勢Fig.2　Changes in body weight in the survival and sham group

注：ΔP < 0.05，與手術(shù)前(0 d)比較。圖3　sham組與survival組體重變化率的比較Note.ΔP < 0.05, compared with preoperation (0 d).Fig.3　Compared with the maximum rates of loss and gain body weight

2.4實(shí)驗(yàn)室結(jié)果

手術(shù)后1 d與術(shù)前(0 d)相比， 三組IL-10血漿濃度均有升高，sham組升高不明顯(P=0.122)，survival組(P=0.000)和dead組升高明顯(P=0.010)。如圖4所示。

注：ΔP < 0.05，與手術(shù)前(0 d)比較。圖4　三組大鼠IL-10血漿濃度在手術(shù)前后的組內(nèi)比較。Note. ΔP < 0.05, compared with preoperation (0 d).Fig.4　Comparison of concentrations of IL-10 in three groups before and after surgery

2.5解剖

如圖5所示，dead組：對術(shù)后死亡30 min內(nèi)大鼠解剖見大量惡臭血性腹水，結(jié)扎腸管紫黑，無包裹，無粘連。survival組：對30 d CLP組生存大鼠CO2麻醉處死后立即解剖見：腹腔廣泛粘連，大網(wǎng)膜失去原有形態(tài)及光澤，趨向結(jié)扎腸管，但無膿腫包裹。sham組：解剖未見異常。survival組大鼠脾臟增大明顯，占體重的(2.64±0.37)‰，sham組大鼠脾臟未見明顯變化，占體重的比例為(1.63±0.20)‰，兩者差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.032)如圖6所示。

3　討論

Hotchkiss RS等[12]總結(jié)了膿毒癥可能的發(fā)生發(fā)展規(guī)律曲線，典型的膿毒癥早期死亡即歸因于促炎因子的瀑布式的級聯(lián)反應(yīng)。然而，多數(shù)患者可以度過這一時期，進(jìn)入炎癥后期，此時，若促炎反應(yīng)與抗炎反應(yīng)恢復(fù)平衡，患者即逐漸康復(fù)；若自然免疫和適應(yīng)性免疫功能受損，患者則進(jìn)入免疫抑制期，最終死于原發(fā)病惡化或二次感染。

注：A.腸管壞死；B.大網(wǎng)膜廣泛粘連；C.膿腫包裹。圖5　大鼠腹部解剖Nota.A.Necrosis of intestine; B.Adhesions of the greater; C.Encapsulated abscess.Fig.5　Abdominal anatomy of rat

注：ΔP < 0.05，與sham組比較。圖6　sham組與survival組脾/體重(‰)比較Note. ΔP < 0.05, compared with sham group.Fig.6　Compared with the spleen/body weight

正如前言所述，研究膿毒癥生存者模型，可以觀察到膿毒癥自然轉(zhuǎn)歸的過程。探討其規(guī)律和發(fā)生機(jī)制，不僅對揭露膿毒癥的發(fā)生發(fā)展機(jī)制，提供診斷治療依據(jù)有重要意義，而且還有利于研究膿毒癥的遠(yuǎn)期預(yù)后，包括遠(yuǎn)期生存率、患病率及生活質(zhì)量等，是對膿毒癥更深一層的探索。本部分實(shí)驗(yàn)建立中重度膿毒癥長期生存者模型的關(guān)鍵在于確保急性炎癥發(fā)生并持續(xù)(非一過性)的同時提高生存率，從癥狀表現(xiàn)，生理生化改變及解剖多方面篩選出符合要求的大鼠模型。

本部分實(shí)驗(yàn)選擇通過盲腸結(jié)扎穿孔術(shù)致大鼠膿毒癥。Wichterman等[13]于1980年發(fā)明的盲腸結(jié)扎穿孔術(shù)(CLP)致大鼠膿毒癥模型是目前應(yīng)用最廣泛的膿毒癥動物模型。CLP最大的優(yōu)點(diǎn)是模擬闌尾炎穿孔致腹膜炎的病理過程，更接近臨床的發(fā)病過程。缺點(diǎn)在于難以準(zhǔn)確控制感染程度，感染過重導(dǎo)致快速死亡，感染過輕則無法滿足實(shí)驗(yàn)要求，有可能成為局部膿腫包裹模型[14，15]。影響CLP嚴(yán)重程度主要有三個主要因素，即結(jié)扎盲腸的長度，穿刺針的粗細(xì)和術(shù)后護(hù)理?xiàng)l件。因此本實(shí)驗(yàn)采用統(tǒng)一的手術(shù)參數(shù)和術(shù)后護(hù)理?xiàng)l件保證其感染程度相似。我們經(jīng)過反復(fù)試驗(yàn)，發(fā)現(xiàn)以下方法可以控制急性炎癥嚴(yán)重程度，并且延續(xù)發(fā)展為腹膜炎，模擬膿毒癥的發(fā)病過程。①結(jié)扎盲腸的長度為2 cm既可以導(dǎo)致急性胃腸道生理功能紊亂，表現(xiàn)為大鼠術(shù)后一天就有明顯稀便，又可以緩慢自行恢復(fù)，有明確的發(fā)病過程和適當(dāng)?shù)纳媛?。②使?1G三角針經(jīng)行穿刺可以避免穿孔過早閉合。③擠壓腸內(nèi)容物的量相對較多，全部回納至腹腔，并且注入2 mL 0.9%氯化鈉注射液，并輕輕搖晃腹腔。這樣做即可以讓腸管自然排列，避免絞窄性腸梗阻，又可以將腸內(nèi)容物彌散至全腹腔，導(dǎo)致急性彌散性腹膜炎，避免大網(wǎng)膜早期包裹。④為了提高該模型的生存率，我們對術(shù)后大鼠進(jìn)行液體治療，這也是目前國際公認(rèn)的唯一有效的治療膿毒癥的方法[6,7]。適當(dāng)?shù)哪z體液可以有效擴(kuò)充血容量，而葡萄糖注射液則可以提供因未進(jìn)食缺失的能量[10]。⑤提高室溫至25℃左右，也有利于膿毒癥休克的恢復(fù)，提高生存率。

此外，本實(shí)驗(yàn)采用七氟烷吸入麻醉，麻醉誘導(dǎo)及蘇醒迅速，對大鼠正常生理功能影響輕微。避免了腹腔注射麻醉藥易造成大鼠腹腔出血和腹腔腸管黏連，不利于腹部手術(shù)操作，且時間不易控制，蘇醒緩慢，術(shù)后死亡率高等缺點(diǎn)。建立動靜脈通路作為臨床麻醉常用的技術(shù)手段，能為監(jiān)測和治膿毒癥療創(chuàng)造很多便利。本實(shí)驗(yàn)將該技術(shù)應(yīng)用于大鼠，并將留置導(dǎo)管從頸后皮下引出使得導(dǎo)管不易被大鼠掙脫，對大鼠創(chuàng)傷應(yīng)激小，便于動脈采血和監(jiān)測，使在大鼠無束縛清醒狀態(tài)下持續(xù)靜脈補(bǔ)液或泵藥成為可能。以上建立模型的方法，操作明確易行，重復(fù)性好。注：以上兩段詳細(xì)介紹操作要點(diǎn)，便于讀者重復(fù)實(shí)驗(yàn)，建立模型，可反映模型的重復(fù)性。

模型的準(zhǔn)確性，即可信性是確保實(shí)驗(yàn)順利進(jìn)行的基礎(chǔ)。多方面的、準(zhǔn)確的篩選方法是必不可少的。到目前為止，還沒有公認(rèn)的CLP膿毒癥模型建立成功的量化評估指標(biāo)。本實(shí)驗(yàn)通過癥狀表現(xiàn)，體重變化，相關(guān)細(xì)胞因子的增減以及解剖不同角度對模型嚴(yán)格篩選。大家常用的膿毒癥嚴(yán)重程度評估表，可以初步從模型外觀，警惕性及動脈血壓上判斷膿毒癥的嚴(yán)重程度，可能受觀察者主觀影響。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)CLP膿毒癥大鼠的體重在炎癥早期下降明顯，這可能由于CLP導(dǎo)致胃腸功能紊亂有關(guān)，可以反映CLP的嚴(yán)重程度。體重變化是量化指標(biāo)，相對客觀，而且用體重的變化率進(jìn)行比較還可以擯棄模型基礎(chǔ)值的影響。膿毒癥期間多種細(xì)胞因子發(fā)生變化，有促炎因子，也有抗炎因子，可以根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪x擇感興趣的分子檢測。檢測的方法也是多種多樣的，其中外周血中多種細(xì)胞因子，因?yàn)槿〔姆奖?，多被選擇。而檢測方法也有包括酶聯(lián)免疫法，流式細(xì)胞學(xué)在內(nèi)的多種簡單易操作的多種方法。本實(shí)驗(yàn)用酶聯(lián)免疫法選擇檢測IL-10的血漿濃度，發(fā)現(xiàn)其在術(shù)后1 d發(fā)生明顯變化，說明早期炎癥劇烈發(fā)生。最后，對模型進(jìn)行腹部解剖可以觀察有無腹膜炎，有無局部膿腫包裹，更加直觀，更加明確。此外，還可以觀察其他臟器的變化。本實(shí)驗(yàn)著重觀察脾臟的改變，并發(fā)現(xiàn)膿毒癥30 d后脾臟明顯增大，具體機(jī)制尚未明確[16,17]，有待進(jìn)一步研究，可能作為判斷膿毒癥嚴(yán)重程度的指標(biāo)之一。注：該段說明了如何使得建立的模型具有可信性，需要上述多種方法進(jìn)行驗(yàn)證和篩選。

綜上所述，本實(shí)驗(yàn)通過多種措施控制CLP的嚴(yán)重程度和不同的篩選方法，成功建立了符合膿毒癥發(fā)生發(fā)展規(guī)律的中重度膿毒癥30 d生存者模型。研究膿毒癥生存者模型為研究膿毒癥致病機(jī)制，治療方法，分期診斷，預(yù)后評估等提供新的研究思路和方式方法。

[1]Singer M, Deutschman CS, Seymour CW,etal. The Third International Consensus Definitions for Sepsis and Septic Shock (Sepsis-3) [J]. JAMA,2016, 315(8): 801-810.

[2]Hutchins NA, Unsinger J, Hotchkiss RS,etal. The new normal: immunomodulatory agents against sepsis immune suppression[J]. Trends in Molecular Medicine,2014, 20(4): 224-233.

[3]Coopersmith CM, Wunsch H, Fink MP,etal. A comparison of critical care research funding and the financial burden of critical illness in the United States[J]. Crit Care Med,2012, 40: 1072-1079.

[4]Stoller J, Halpin L, Weis M,etal. Epidemiology of severe sepsis: 2008-2012[J]. Journal of Critical Care,2016, 31(1): 58-62.

[5]Prucha M, Bellingan G, Zazula R. Sepsis biomarkers[J]. Clinica Chimica Acta, 2015, 440: 97-103.

[6]Alan EJ, Micheal AP. The Surviving Sepsis Campaign Guidelines 2012: Update for Emergency Physicians[J]. Annals of Emergency Medicine, 2014, 63(1): 35-47. [7]Dellinger RP, Mitchell ML, Rhodes A,etal. Surviving Sepsis Campaign: International Guidelines for Management of Severe Sepsis and Septic Shock: 2012[J]. Critical Care Medicine, 2013, 41(2): 580-637.

[8]Carbajal-Guerrero J, Cayuela-Domínguez A, Fernández-García E,etal. Epidemiology and long-term outcome of sepsis in elderly patients.[J]. Med Intensiva,2014, 38: 21-32.

[9]Clark E, Bagshaw SM. Long-term risk of sepsis among survivors of acute kidney injury.[J]. Critical Care (London, England), 2014, 18: 103-105.

[10]Lemay AC, Antonio A, Restrepo MI.,etal. Predictors of Long-term Mortality After Severe Sepsis in the Elderly[J]. The American Journal of the Medical Sciences, 2014, 347: 282-288.

[11]Brealey D, Karyampudi S, Thomas S,etal. Mitochondrial dysfunction in a long-term rodent model of sepsis and organ failure[J]. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol, 2004, 286: R491-497.

[12]Hotchkiss RS, Monneret G, Payen D. Sepsis-induced immunosuppression: from cellular dysfunctions to immunotherapy.[J]. Nat Rev Immunol, 2013, 13: 862-874. [13]Fink MP. Animal models of sepsis. [J]. Virulence, 2014, 5:143-153.

[14]Saeed S, Gilroy D, Singer M. Clinical severity and local inflammatory responses in animal models of sepsis[J]. Critical Care, 2010, 14: 10-12.[15]Dyson A, Singer M. Animal models of sepsis: why does preclinical efficacy fail to translate to the clinical setting? [J]. Crit Care Med, 2009, 37: S30-37.[16]Valdes-Ferrer SI, Rosas-Ballina M, Olofsson1 PS,etal. HMGB1 mediates splenomegaly and expansion of splenic CD11b+Ly-6Chighinflammatory monocytes in murine sepsis survivors[J]. Journal of Internal Medicine, 2013, 274: 381-390.[17]Pozo AL, Godfrey EM, Bowles KM. Splenomegaly: investigation, diagnosis and management[J]. Blood Rev, 2009, 23: 105-111.

Establishment of long term survival following sepsis: a rat model

JIAO Yu-xia，XIONG Jun-yu*

(Department of Anesthesiology, the Second Hospital of Dalian Medical University, Dalian 116027, China)

Objective Establish a Long-term Survival Rat Model of Sepsis for recovery naturally, and the idea of researching about sepsis survivors may point out new research ideas and methods for sepsis. Methods40 SD rats were divided into the sham group (8) and the CLP group (32), with all surgical operations under the small animal anesthesia machine and sevoflurane inhalation anesthesia. PVC tubes were inserted into the right carotid artery and jugular vein, respectively. After a postoperative recovery of 24 hours, the rats in the CLP group received the cecal ligation and puncture (CLP), which caused sepsis. The rats were then transferred to the single cages in the recovery room (with the temperature kept between 22～25℃). After the surgery, we commenced fluid resuscitation, consisting of a solution 6% hetastarch and 5% Glucose in the ratio of 1:1. The amount was 20 mL/kg/12h on the first and second days after the surgery. Then it was halved until the rats started eating. These rats were observed about performance, weight and concentration of IL-10 until 30 days after the surgery, when they were anatomized and the change of their organs was watched. Results(1) The survival rate was 75% at 24 h, 62.5% at 72 h, 50% on 7 d after CLP in the CLP group. (2) Based on the severity of sepsis evaluation system, 32 rats at 24 h after CLP reached moderate to severe sepsis. (3) The body weight were decreased in both survival group and the sham group after CLP. The body weight of rats in survival group fell from the fourth day of survival was significantly (P=0.017), and to a minimum after the first six days, compared with the original weight loss (8.51±2.23)%. The body weight of rats in sham group fell to a minimum after the first four days, by which the lowest body weight loss (2.73±1.82)% than the original weight. The difference between two groups was statistically significant (P=0.026). After 30 days, the maximum weight increase rates[sham group (16.16±2.39)% vs survival group (13.03±3.74)%]were not different significantly (P=0.29). (4) Compared the preoperative (0 d) with postoperative 1d, all the plasma concentration of IL-10 in three groups was increased, which in survival group (P=0.000) and in dead group increased significantly (P=0.010). (5) Shown by abdominal anatomy, a large set of foetor and bloody ascites, black bowel, with no encapsulated abscess and adhesion in dead group; Abdominal adhesions, omental with losing shape and gloss and tending to ligation intestine, but no encapsulated abscess in survival group; no abnormal anatomy in sham group. The weight of spleen in total body weight ration was (2.64±0.37) ‰ in survival group and (1.63±0.20) ‰ in sham group. The difference between two group was statistically significant (P=0.032). ConclusionsThis experiment provided reliable measures of the CLP and methods of screening model, for the establishment of CLP in severe sepsis model of long-term survivors, which is basically in accordance with the occurrence and development of sepsis clinically.

Sepsis; Long-term survival; Rat medal

國家自然基金面上項(xiàng)目(81171791)。

焦裕霞(1981-)，女，主治醫(yī)師，博士研究生，專業(yè)：麻醉學(xué)。E-mail: jiaoyuxia@dmu.edm.cn。

熊君宇(1959-)，男，教授，主任醫(yī)師，博士生導(dǎo)師，研究方向：麻醉藥對膿毒癥機(jī)體的影響。E-mail：jyx0639@163.com。

研究報(bào)告

R-332

A

1671-7856(2016)09-0019-06

10.3969.j.issn.1671-7856. 2016.09.004

2016-04-05