国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

ATP合酶的研究進(jìn)展

2016-06-23 09:19柳昭明
天津科技 2016年5期
關(guān)鍵詞:合酶亞基復(fù)合體

柳昭明,馮 紅

(天津體育學(xué)院 天津300381)

ATP合酶的研究進(jìn)展

柳昭明,馮 紅*

(天津體育學(xué)院 天津300381)

ATP合酶又稱F0F1-ATP酶,是一個(gè)多亞基復(fù)合體,廣泛存在于生物界,包括細(xì)菌的質(zhì)膜、線粒體內(nèi)膜和類囊體膜,可以催化能源物質(zhì)ATP的合成。這種酶在生物能學(xué)、生物化學(xué)、物理學(xué)和納米學(xué)領(lǐng)域受到重要關(guān)注。ATP合酶主要由兩部分組成:一是水溶性的蛋白復(fù)合體F1,另外一個(gè)是疏水部分F0,兩者都是轉(zhuǎn)動(dòng)馬達(dá)。其中F1亞基由核基因編碼,F(xiàn)0亞基由線粒體ATP6和ATP8基因以及核基因共同編碼。該酶利用線粒體內(nèi)膜兩側(cè)質(zhì)子梯度差形成的勢(shì)能,通過(guò)結(jié)合改變機(jī)理旋轉(zhuǎn)合成ATP,也可逆水解ATP形成梯度差,達(dá)到了很高的能量轉(zhuǎn)化效率。研究其對(duì)于能量代謝具有重要價(jià)值,國(guó)內(nèi)外學(xué)者一直在對(duì)其進(jìn)行探索。綜合國(guó)內(nèi)外文獻(xiàn)對(duì)ATP合酶的功能、結(jié)構(gòu)、研究歷史和影響因素進(jìn)行了闡述。

ATP合酶 功能 結(jié)構(gòu) 歷史 影響因素

0 引 言

三磷酸腺苷(ATP)是細(xì)胞的能量貨幣。人體ATP含量通過(guò)水解與合成的動(dòng)態(tài)平衡保持在50,g左右。人體1天基礎(chǔ)代謝條件下產(chǎn)生50~75,kg ATP,用于各種耗能反應(yīng)。在有氧情況下,ATP合成的主要途徑是氧化磷酸化,而氧化磷酸化的末端反應(yīng)是F0F1-ATP合酶催化的。

如圖1所示,電子通過(guò)輔酶Q、細(xì)胞色素bc1復(fù)合體和細(xì)胞色素c從NADH脫氫酶轉(zhuǎn)移到細(xì)胞色素c氧化酶。建立的質(zhì)子梯度穿過(guò)線粒體內(nèi)膜驅(qū)動(dòng)ATP合酶里的質(zhì)子流并伴隨ATP合成。ATP合酶通過(guò)質(zhì)子跨膜的電化學(xué)勢(shì)催化二磷酸腺苷(ADP)和無(wú)機(jī)磷酸鹽(Pi)合成ATP,也就是說(shuō),它將電化學(xué)勢(shì)轉(zhuǎn)化為化學(xué)形態(tài)。相反,當(dāng)電化學(xué)勢(shì)不足的時(shí)候,它催化質(zhì)子泵形成電化學(xué)勢(shì)水解ATP產(chǎn)生ADP和Pi。

圖1 呼吸鏈和ATP合酶Fig.1 The respiratory chain and ATP synthase

1 歷 史

ATP合酶的分子學(xué)研究始于1960年,Efraim Racker和他的同事報(bào)道了牛心線粒體中可溶因子的離析。這種F1因子有ATP水解功能,還具有使失去ATP合成功能的膜碎片恢復(fù)ATP的合成能力。[1]Efraim等人還從葉綠體中離析出相似的因子,其顯示在線粒體和葉綠體ATP合酶的基本特征是一樣的。在此之后,在ATP合酶的研究上至少出現(xiàn)了兩場(chǎng)著名的革命。[2]

1961年,Peter Mitchell(1978年諾貝爾獎(jiǎng)獲得者)提出了化學(xué)滲透假說(shuō),聲明以前尋找的一種能將氧化呼吸原料和ATP合成聯(lián)系起來(lái)的高能化學(xué)中間體的觀念是錯(cuò)誤的。他提出質(zhì)子跨膜的電化學(xué)勢(shì)ΔμH+假說(shuō),于是,假定的ATP合酶被預(yù)測(cè)為一種具有質(zhì)子轉(zhuǎn)移功能的ATP合成酶或水解酶。這種假說(shuō)不被當(dāng)時(shí)的生化學(xué)家所接受。[3]1966年,Andre Jagendorf的“酸-堿轉(zhuǎn)換”實(shí)驗(yàn)改變了這種形勢(shì)。他在葉綠體膜兩側(cè)加酸堿梯度并觀察無(wú)光條件下的ATP合酶?;瘜W(xué)滲透機(jī)制最終由Yasuo Kagawa通過(guò)囊泡重建方法確立:在人為施加電化學(xué)勢(shì)的驅(qū)動(dòng)下,含有純凈ATP合酶的囊泡催化了ATP的合成。[4]

發(fā)現(xiàn)ATP合酶在F0內(nèi)質(zhì)子流與F1內(nèi)ATP合成/水解兩者間的能量交換中的作用則是另一次變革。1997年,Paul Boyer(1997年諾貝爾獎(jiǎng)獲得者)提出構(gòu)象變化假說(shuō)。氧化所釋放的能量可能通過(guò)ATP合酶的3種具有催化功能的β亞基的構(gòu)象變化合成ATP。3種β亞基根據(jù)與核苷酸的親和力不同,依次發(fā)揮作用。每個(gè)β亞基具有松弛狀態(tài)(1oose)、緊密結(jié)合狀態(tài)(tight)和無(wú)底物與之結(jié)合狀態(tài)(open),且3個(gè)β亞基的構(gòu)象總是互不相同,每個(gè)β催化亞基經(jīng)過(guò)幾次伴隨構(gòu)象改變而發(fā)生結(jié)合變化,最后形成1個(gè)ATP分子。該過(guò)程反復(fù)進(jìn)行以不斷合成ATP。這種由于親和力的改變而不是ATP合成或水解的化學(xué)轉(zhuǎn)化,且伴隨著能量的輸入或輸出的構(gòu)象變化假說(shuō)后來(lái)也被稱為“結(jié)合變構(gòu)機(jī)理”(binding change mechanism)。Boyer隨后假設(shè)造成這種順序改變的原因是γ亞基中心的物理旋轉(zhuǎn)。[5]

1996年,Junge等還提出了一個(gè)旋轉(zhuǎn)催化的模型。這個(gè)旋轉(zhuǎn)運(yùn)動(dòng)假設(shè)的實(shí)質(zhì)就是c亞基圓環(huán)的周圍是必不可少的羧基。部分c亞基的外部環(huán)形表面與a亞基相互作用,在羧基部位是負(fù)電荷。假設(shè)a亞基在線粒體內(nèi)膜外側(cè)表面有1個(gè)進(jìn)口,允許1個(gè)質(zhì)子中和羧基的1個(gè)負(fù)電荷。這樣使未電離的羧基利用熱震動(dòng)尋求與磷脂雙分子層接觸的環(huán)境。羧基在圓周某一點(diǎn)的中和伴隨c亞基環(huán)周圍其他羧基的進(jìn)一步重新電離。在內(nèi)膜內(nèi)側(cè)a亞基出口點(diǎn)上進(jìn)行質(zhì)子的釋放,并在c亞基環(huán)與a分界處使負(fù)電荷再生。這些加速質(zhì)子或減速質(zhì)子會(huì)促成c亞基環(huán)產(chǎn)生旋轉(zhuǎn)移動(dòng),使另一個(gè)負(fù)電荷移向入口點(diǎn)與另一個(gè)質(zhì)子中和,其他質(zhì)子在出口點(diǎn)的釋放產(chǎn)生了進(jìn)一步的旋轉(zhuǎn)。這個(gè)旋轉(zhuǎn)的設(shè)想就是直接與γ亞基結(jié)合。每個(gè)ATP的合成都要求γ亞基旋轉(zhuǎn) 120 °,因此γ亞基完成1次旋轉(zhuǎn)將產(chǎn)生3個(gè)ATP分子。在質(zhì)子運(yùn)動(dòng)的假設(shè)中,c亞基環(huán)包含12個(gè)c亞基,這與質(zhì)子中和4個(gè)羧基的假設(shè)相符。另外,在F0部分中,如果ATP與H+的比值是4,那么它應(yīng)與12個(gè)c亞基相對(duì)應(yīng);同樣,如果ATP與H+的比值是3,在F0部分中就要求有9個(gè)c亞基。[6]

雖然ATP合酶這種不尋常的協(xié)同動(dòng)力學(xué)支持了構(gòu)象改變學(xué)說(shuō),但隨后很少有人去研究它。10年后,John Walker和他的同事展示了牛心的結(jié)構(gòu)。但是對(duì)于Boyer假說(shuō)提供最有力支持的還是日本Noji的實(shí)驗(yàn)。Noji等對(duì)于F1-ATP酶在催化ATP水解時(shí)的F1結(jié)構(gòu)進(jìn)行了分析,證明了Boyer的假設(shè)。[7]Noji等的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)基于Walker對(duì)牛心線粒體Fl-ATP酶的晶體結(jié)構(gòu)分析,實(shí)驗(yàn)結(jié)果直觀呈現(xiàn)了在水解ATP過(guò)程中γ亞基是在α3β3形成的圓筒式結(jié)構(gòu)中轉(zhuǎn)動(dòng)的,這是對(duì)Boyer提出的轉(zhuǎn)動(dòng)催化假說(shuō)最有力的支持。[8]

2 結(jié) 構(gòu)

F0F1-ATP合酶分子量>500,kDa,由兩個(gè)旋轉(zhuǎn)馬達(dá)組成,其中一個(gè)是F1(≈380,kDa),是ATP合酶水溶性部分。當(dāng)被膜隔離的時(shí)候,它作為受ATP驅(qū)動(dòng)的馬達(dá),旋轉(zhuǎn)內(nèi)部亞基水解ATP,因此被稱為F1-ATP酶。ATP合酶的另一個(gè)旋轉(zhuǎn)馬達(dá)是F0(≈120,kDa),它嵌入膜內(nèi),受質(zhì)子電化學(xué)勢(shì)驅(qū)動(dòng),通過(guò)質(zhì)子轉(zhuǎn)移產(chǎn)生旋轉(zhuǎn)扭矩。[9]

細(xì)菌的F1由α3、β3、γ、δ和ε亞基組成。3種α亞基和3種β亞基交替排列,組成六聚環(huán)狀定子。轉(zhuǎn)軸是γ 亞基,它被容納在α3β3環(huán)的中央腔內(nèi)。ε 亞基與γ亞基突出的部分結(jié)合為F1與F0之間提供了連接。ε亞基是F1內(nèi)源性抑制器,它通過(guò)改變構(gòu)象從關(guān)閉狀態(tài)變?yōu)殚_放狀態(tài)造成了位阻現(xiàn)象從而封鎖了γ亞基。[10]這種抑制功能被認(rèn)為是生理上抑制ATP消耗的重要功能。

δ亞基作為F1和F0之間的連接者,負(fù)責(zé)連接定子部分。因此,F(xiàn)1最小的分子馬達(dá)復(fù)合體是α3β3γ子復(fù)合體。ATP水解或合成的催化中心就在α-β界面,它在β亞基的逆時(shí)針?lè)较蛞粋?cè)。沒(méi)有ATP催化功能的部分位于α-β界面另一側(cè)。起催化作用的部分主要由β亞基的氨基酸殘基形成,非催化部分主要在α亞基里。當(dāng)ATP水解的時(shí)候,從F0一面的方向看,F(xiàn)1的γ亞基逆時(shí)針?lè)较蛐D(zhuǎn)。[11]

F0部分由a、b2、c10-15等3種亞基組成。不同物種之間的c亞基數(shù)量不同。例如,在牛心線粒體是8個(gè),酵母菌、大腸桿菌和嗜熱桿菌PS3里是10個(gè),產(chǎn)丙酸菌和梭狀芽胞桿菌里是11個(gè),噬堿芽孢桿菌OF4里13個(gè),菠菜葉綠體里14個(gè),鈍頂螺旋藻里15個(gè)。[12]

ATP6和ATP8是編碼部分F0亞基的線粒體基因。所有生物都具有ATP6基因,但是細(xì)菌、植物的線粒體基因組不包含ATP8基因,這與一般后生動(dòng)物有所不同。在人的線粒體基因中,ATP6與ATP8相鄰并重疊45,bp,ATP8基因長(zhǎng)207,bp,編碼68個(gè)氨基酸,ATP6基因長(zhǎng)681,bp,編碼226個(gè)氨基酸。[13]

c亞基圍成圈,形成一個(gè)環(huán)形復(fù)合體。普遍認(rèn)為這個(gè)環(huán)形復(fù)合體和α亞基形成一個(gè)質(zhì)子通道。當(dāng)下坡質(zhì)子流通過(guò)質(zhì)子通道時(shí),C-環(huán)與F1的β亞基相反的方向旋轉(zhuǎn)。[14]因此,在F0F1復(fù)合體里,F(xiàn)0、F1推動(dòng)彼此向相反的方向旋轉(zhuǎn)。當(dāng)質(zhì)子電化學(xué)勢(shì)大到超過(guò)ATP水解的自由能時(shí),F(xiàn)0使γ亞基沿順時(shí)針?lè)较蛐D(zhuǎn),這時(shí)ATP合成是ATP合酶的主要生理功能。相反,當(dāng)電化學(xué)勢(shì)很小或降低時(shí),F(xiàn)1迫使F0向相反的方向旋轉(zhuǎn)C-環(huán)泵質(zhì)子來(lái)對(duì)抗電化學(xué)勢(shì)。

為了檢測(cè)c亞基的表達(dá)在ATP合酶合成中的作用,Tatiana[15]等制作了在褐色脂肪組織的特異蛋白UCP1的啟動(dòng)子下表達(dá)c亞基P1型的轉(zhuǎn)基因小鼠,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在該小鼠褐色脂肪的線粒體中,c亞基和F1亞基的其他部分蛋白質(zhì)水平均明顯提高。這表明在所有的高級(jí)真核生物中,c亞基的水平可能是F0F1-ATP合酶含量的決定因素。

F0和F1部分之間還有OSCP(寡霉素敏感相關(guān)蛋白)亞單位,與F6、b、d亞基構(gòu)成外側(cè)柄,外側(cè)柄與α3β3亞基復(fù)合體以及a亞基和δ亞基組成“定子”部分。c亞基、γ 和ε 亞基組成“轉(zhuǎn)子”部分。OSCP是是一種213個(gè)氨基的酸性蛋白,定位于F1頂部,與大腸桿菌的δ亞基相似,在哺乳動(dòng)物中高度保守。OSCP的C端區(qū)域是松散的,包含一個(gè)β折疊,精確定位與α和β亞基的界面,還包括兩個(gè)α螺旋,即H7和H8。H8形成1個(gè)3螺旋與F6的α螺旋以及b亞基一部分結(jié)合在一起。[16]OSCP可估量ATP合酶結(jié)構(gòu)的完整性,當(dāng)F1和F0分離的時(shí)候會(huì)導(dǎo)致寡霉素敏感性的ATP酶活性降低。[17]缺失或重構(gòu)實(shí)驗(yàn)證明OSCP對(duì)于偶聯(lián)質(zhì)子轉(zhuǎn)運(yùn)和ATP合成是必不可少的。[18]酵母菌里的電子追蹤實(shí)驗(yàn)表明了OSCP是F1F0-ATP合酶組裝的最后一步,而且是獨(dú)立的。降低人類細(xì)胞的OSCP水平并沒(méi)有改變其他F0和F1亞基和呼吸鏈酶復(fù)合體的表達(dá)。[19]

3 影響ATP合酶發(fā)揮功能的因素

3.1 通過(guò)F0的亞單位影響ATP合酶功能的因素

線粒體是細(xì)胞內(nèi)最易受乙醇作用而損傷的細(xì)胞器,其中線粒體DNA(mtDNA)又是細(xì)胞內(nèi)乙醇相關(guān)氧化應(yīng)激的主要目標(biāo)。mtDNA ATP合成酶6和8的基因表達(dá)產(chǎn)物ATP合成酶6和8蛋白是ATP合成酶F0部分的兩個(gè)組分,通過(guò)調(diào)控質(zhì)子轉(zhuǎn)運(yùn)而調(diào)節(jié)ATP合成,決定著細(xì)胞內(nèi)ATP的含量。胃粘膜丙二醛(MDA)作為氧自由基與細(xì)胞作用的產(chǎn)物,反映了氧自由基對(duì)細(xì)胞的損傷程度。何紹珍[20]等通過(guò)實(shí)驗(yàn)測(cè)得不同濃度乙醇灌胃后,胃粘膜MDA含量均較正常對(duì)照組明顯升高。表明乙醇在胃內(nèi)代謝可產(chǎn)生大量氧自由基,且氧自由基生成量與乙醇濃度呈正相關(guān)。乙醇灌胃2,h后,胃粘膜ATP合成酶6和8,mRNA表達(dá)隨乙醇濃度升高而下降,且氧自由基含量越高,兩種基因mRNA的表達(dá)水平越低。JA Sánchez-Alcázar等[21]發(fā)現(xiàn),氧自由基使mtDNA ATP合成酶6和8轉(zhuǎn)錄水平下降,ATP合成酶6翻譯產(chǎn)物ATP合成酶亞單位α減少。因此,乙醇通過(guò)代謝產(chǎn)生自由基使ATP合成酶6轉(zhuǎn)錄水平降低,進(jìn)而使其翻譯產(chǎn)物ATP合成酶α亞單位減少,影響了ATP的代謝。李生廣等[22]研究乙醇作用于ATP合酶復(fù)合體時(shí),乙醇對(duì)復(fù)合體表現(xiàn)為非競(jìng)爭(zhēng)性抑制行為。這表明乙醇并未直接與反應(yīng)底物競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合位點(diǎn),但其很有可能作用于酶上的乙醇敏感部位,導(dǎo)致復(fù)合體中F1構(gòu)象的某些改變,從而使F1上催化位點(diǎn)與調(diào)節(jié)位點(diǎn)解聚,影響了活性部位,造成ATP的水解受到抑制。

亞基6和亞基9是F0部分的亞單位。酵母菌亞基6是線粒體編碼的含蛋白脂質(zhì),有5個(gè)疏水性跨膜螺旋。其中疏水螺旋4和5在不同物種間保守并與質(zhì)子轉(zhuǎn)移相關(guān)。亞基9是與DCCD捆綁的含蛋白脂質(zhì),當(dāng)亞基6的疏水螺旋4和5以及亞基9的疏水螺旋1和2發(fā)生突變時(shí)表現(xiàn)出寡霉素抵抗,表明寡霉素結(jié)合位點(diǎn)同時(shí)包含亞基6和亞基9,抑制了質(zhì)子轉(zhuǎn)運(yùn)。[23]在只有F1的情況下,ATP水解也會(huì)發(fā)生,但是ATP水解不再與質(zhì)子轉(zhuǎn)移偶聯(lián),寡霉素敏感性也會(huì)消失。這證明寡霉素抑制了F0中的質(zhì)子轉(zhuǎn)運(yùn),進(jìn)而影響了ATP水解的最大速度。[24]

N,N-二環(huán)己基碳二亞胺(N,N-dicyclohecarbodiimide,DCCD)是F0F1-ATP合酶的一種經(jīng)典抑制劑,與F0的c亞基的高度保守羰基共價(jià)結(jié)合。DCCD通過(guò)形成一種穩(wěn)定的N-?;蛩嘏cc亞基上的、H+結(jié)合的羧基殘基反應(yīng),阻斷了F0與F1的偶聯(lián)反應(yīng)。據(jù)報(bào)道,1個(gè)F0結(jié)合1個(gè)單DCCD分子就足夠抑制ATP酶活性。經(jīng)DCCD修飾的c環(huán)晶體結(jié)構(gòu)顯示環(huán)己基部分太大,不能通過(guò)c環(huán)的質(zhì)子結(jié)合口袋而暴露在疏水環(huán)境中,暗示N?;蛩嘏ca亞基的空間位阻關(guān)閉了c環(huán)的旋轉(zhuǎn)。[25]

3.2 通過(guò)F1的亞單位影響ATP合酶功能的因素

腺苷二磷酸(MgADP)不僅是ATP合成的底物,還通過(guò)非競(jìng)爭(zhēng)性的方式抑制ATP酶活性。這種抑制被稱作“ADP抑制”。它的調(diào)節(jié)位點(diǎn)在F1的催化中心。芽孢桿菌PS3的α3β3γ復(fù)合體的單分子實(shí)驗(yàn)顯示“ADP抑制”導(dǎo)致了由ATP驅(qū)動(dòng)旋轉(zhuǎn)的γ亞基發(fā)生了長(zhǎng)時(shí)間的停頓。[26]

IF1是ATP合酶的天然抑制蛋白,它是一種含84個(gè)殘基的堿性非競(jìng)爭(zhēng)性抑制蛋白。當(dāng)線粒體電化學(xué)梯度低而沒(méi)有質(zhì)子動(dòng)勢(shì)發(fā)生ATP水解時(shí),IF1與F1的β亞單位1∶1可逆結(jié)合抑制ATP酶的活性。[27]IF1的中心區(qū)域(殘基42~58)與F1的α和β亞基結(jié)合,C端區(qū)域與F0的OSCP亞基結(jié)合,這種結(jié)合使得IF1綁定在ATP合酶上。這一反應(yīng)由酸堿度決定,在酸性環(huán)境下IF1以二聚體形式存在,有效抑制F1的ATP酶活性。在堿性環(huán)境下,IF1形成沒(méi)有抑制作用的四聚體。這種酸堿度依賴為在解偶聯(lián)或者低氧狀態(tài)下保護(hù)線粒體ATP提供了一種反饋機(jī)制。當(dāng)糖酵解成為細(xì)胞ATP的唯一來(lái)源時(shí),細(xì)胞基質(zhì)酸堿度降低,促進(jìn)了IF1對(duì)ATP水解的抑制。[28]

3.3 通過(guò)連接柄影響ATP合酶功能的因素

ε 亞基是ATP合酶天然內(nèi)源性抑制劑。在細(xì)菌和葉綠體中,ε 亞基一方面偶聯(lián)F0的質(zhì)子傳遞和F1的ATP合成與水解,另一方面還抑制ATP合酶的活性。這兩種功能是分開的,ε 亞基的N端行使偶聯(lián)功能,C端的α螺旋區(qū)域行使抑制ATP水解功能。ε 亞基在不同物種間的抑制作用是不一樣的。[28]

BZ-423是一種1,4-苯二氮,它通過(guò)選擇性殺死致病性淋巴細(xì)胞來(lái)抑制小鼠狼瘡,毒性比現(xiàn)在的狼瘡藥物小。為了證實(shí)OSCP是調(diào)節(jié)BZ-423誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡的細(xì)胞內(nèi)靶點(diǎn),Kathryn M.Johnson等[24]通過(guò)RNA干擾實(shí)驗(yàn)降低OSCP水平并監(jiān)測(cè)細(xì)胞對(duì)BZ-423的敏感性證實(shí)了BZ-423與OSCP的結(jié)合。將細(xì)胞暴露于BZ-423,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞的線粒體中迅速產(chǎn)生了雙原子氣態(tài)氧,這種活性氧可以作為引發(fā)細(xì)胞程序性死亡的信號(hào),從而引起細(xì)胞程序性死亡。同時(shí)發(fā)現(xiàn)BZ-423和線粒體ATP合酶中的OSCP相結(jié)合,從而抑制線粒體ATP合酶,即OSCP作為BZ-423結(jié)合的分子靶點(diǎn),引起線粒體ATP合酶及細(xì)胞的一系列變化,進(jìn)而達(dá)到治療狼瘡疾病的作用。BZ-423既抑制ATP合酶的合成活動(dòng),也抑制其水解活動(dòng)。

4 結(jié) 語(yǔ)

如何提高能量轉(zhuǎn)化率,改善機(jī)能運(yùn)動(dòng)水平一直是科學(xué)家們的研究目標(biāo)。本文通過(guò)綜合國(guó)內(nèi)外研究進(jìn)展,系統(tǒng)闡述了ATP合酶的結(jié)構(gòu)與作用機(jī)制,對(duì)在分子水平上研究ATP合酶影響能量代謝具有意義。

[1] Daichi O,Ryota I,Hiroyuki N. Rotation and structure of F0F1-ATP synthase [J]. Journal of Biochemistry,2011,149(6):655-664.

[2] Penefsky H S,Pullman M E,Datta A,et al. Partial resolution of the enzymes catalyzing oxidative phosphorylation. II. Participation of a soluble adenosine tolphosphatase in oxidative phosphorylation [J]. Journal of Biological Chemistry,1960,235(235):3330-3336.

[3] Mitchell P. Keilin’s respiratory chain concept and its chemiosmotic consequences [J]. Science,1979,206(4423):1148-1159.

[4] Sone N,Yoshida M,Hirata H,et al. Adenosine triphosphate synthesis by electrochemical proton gradient in vesicles reconstituted from purified adenosine triphosphatase and phospholipids of thermophilic bacterium [J]. Journal of Biological Chemistry,1977,252(9):2956-2960.

[5] Gresser M J,Myers J A,Boyer P D. Catalytic site cooperativity of beef heart mitochondrial F1adenosine triphosphatase—Correlations of initial velocity,bound intermediate,and oxygen exchange measurements with an alternating three-site model [J]. Journal of Biological Chemistry,1982,257(20):12030-12038.

[6] Junge W,P?nke O,Cherepanov D A,et al. Intersubunit rotation and elastic power transmission in F0F1-ATPase [J]. Febs Letters,2001,504(3):152-160.

[7] Abrahams J P,Lutter R,Todd R J,et al. Inherent asymmetry of the structure of F1-ATPase from bovine heart mitochondria at 6. 5 A resolution [J]. Embo Journal,1993,12(5):1775-1780.

[8] Noji H,Yasuda R,Yoshida M,et al. Direct observation of the rotation of F1-ATPase [J]. Nature,1997,386(6622):299-302.

[9] Yoshida M,Muneyuki E,Hisabori T. ATP synthase-a marvelous rotary engine of the cell [J]. Nature Reviews Molecular Cell Biology,2001,2(9):669-677.

[10] Ryota I,Rie H,Tabata K V,et al. Mechanism of inhibition by C-terminal alpha-helices of the epsilon subunit of Escherichia coli F0F1-ATP synthase [J]. Journal of Biological Chemistry,2009,284(26):17457-17464.

[11] Feniouk B A,Suzuki T,Yoshida M. The role of subunit epsilon in the catalysis and regulation of F0F1-ATP synthase[J]. BiochimicaEtBiophysicaActa,2006,1757(5-6):326-38.

[12] Pogoryelov D,Yu J,Meier T,et al. The c15 ring of the Spirulinaplatensis F-ATP synthase:F1/F0symmetry mismatch is not obligatory [J]. Embo Reports,2005,6(11):1040-1044.

[13] Ingman M,Kaessmann H,P??bo S,et al. Mitochondrial genome variation and the origin of modem humans[J]. Nature,2001,408(6813):708-713.

[14] Diez M,Zimmermann B,B?rsch M,et al. Protonpowered subunit rotation in single membrane-bound F0F1-ATP synthase [J]. Nature Structural & Molecular Biology,2004,11(2):135-141.

[15] Kramarova T V,Shabalina I G,Ulf A,et al. Mitochondrial ATP synthase levels in brown adipose tissue are governed by the c-F0subunit P1 isoform [J]. Faseb Journal Official Publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology,2008,22(1):55-63.

[16] Rees D M,Leslie A G W,Walker J E. The structure of the membrane extrinsic region of bovine ATP synthase[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2009,106(51):21597-21601.

[17] Mukhopadhyay A,ZhouX Q,Uh M,et al. Heterologous expression,purification,and biochemistry of the oligomycin sensitivity conferring protein(OSCP)from yeast [J]. Journal of Biological Chemistry,1992,267(36):25690-25696.

[18] Joshi S,Cao G J,Nath C,et al. Oligomycin sensitivity conferring protein(OSCP)of bovine heart mitochondrial ATP synthase:high-affinity OSCP-F0interactions require a local alpha-helix at the C-terminal end of the subunit [J]. Biochemistry,1997,36(36):10936-10943.

[19] Malgorzata R,Samanta G,Alexander T. Modular assembly of yeast mitochondrial ATP synthase [J]. Embo Journal,2011,30(5):920-30.

[20] 何紹珍,任建林,潘金水,等. 急性乙醇性胃黏膜損傷中三磷酸腺苷合成酶6和8亞基的表達(dá)[J]. 中華消化雜志,2007,27(11):782-783.

[21] Sánchez-Alcázar J A,Schneider E,Hernández-Mu?oz I,et al. Reactive oxygen species mediate the downregulation of mitochondrial transcripts and proteins by tumour necrosis factor-alpha in L929 cells [J]. Biochemical Journal,2003,370(Pt2):609-619.

[22] 李生廣,孫珊,許桂珍,等. 乙醇對(duì)F1—ATP酶和H—ATP酶的抑制與其核苷酸結(jié)合位點(diǎn)狀態(tài)的關(guān)系[J]. 中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),1990(1):71-75.

[23] Devenish R J,Prescott M,Roucou X,et al. Insights into ATP synthase assembly and function through the molecular genetic manipulation of subunits of the yeast mitochondrial enzyme complex [J]. BiochimicaEtBiophysicaActa,2000,1458(s2-3):428-442.

[24] Johnson K M,Xueni C,Anthony B,et al. Identification and validation of the mitochondrial F1F0-ATPaseas the molecular target of the immunomodulatory benzodiazepine Bz-423. [J]. Chemistry & Biology,2005,12(4):485-496.

[25] Masashi T,Hiroyuki N. Single-molecule analysis ofF0F1-ATP synthase inhibited by N,N-dicyclohexylcarbodiimide [J]. Journal of Biological Chemistry,2013,288(36):25717-25726.

[26] Zanotti F,Raho G,Gaballo A,et al. Inhibitory and anchoring domains in the ATPase inhibitor protein IF1of bovine heart mitochondrial ATP synthase [J]. Journal of Bioenergetics & Biomembranes,2004,36(5):447-457.

[27] Klein G,Satre M,Dianoux A C,et al. Radiolabeling of natural adenosine triphosphatase inhibitor with phenyl(14C)isothiocyanate and study of its interaction with mitochondrial adenosine triphosphatase. Localization of inhibitor binding sites and stoichiometry of binding [J]. Biochemistry,1980,19(13):2919-2925.

[28] Feniouk B A,Yoshida M. Regulatory mechanisms of proton-translocating F0F1-ATP synthase [J]. Results & Problems in Cell Differentiation,2008(45):279-308.

The Advancement of ATP Synthase

LIU Zhaoming,F(xiàn)ENG Hong*
(Tianjin University of Sport,Tianjin 300381,China)

ATP synthase is also called F0F1-ATPase.It is a complex with several subunits and is found widely existing in the biological world,including the plasma membrane of bacteria,inner membrane of mitochondria and thylakoid membrane of chloroplasts,catalyzing the synthetic of ATP.This enzyme has attracted significant attention in a wide variety of fields from bioenergetics and biophysics to chemistry,physics and nanoscience.ATP synthase is composed of two parts:a watersoluble protein complex of F1and a hydrophobic part F0.Both are rotary motors.The F1subunit is encoded by the nuclear gene,and the F0subunit is encoded by the mitochondrial ATP6 and ATP8 genes as well as the nuclear genes.Many factors affect the function of these two parts.The enzyme uses the potential energy which is formed by the proton gradient difference between the two sides of the inner membrane of the mitochondria,and by combining the change mechanism of the rotation of the synthesis of ATP,the reversible hydrolysis of ATP gradient difference,to achieve a high energy conversion efficiency,so it is of great value to the study of energy metabolism and domestic and foreign scholars have been exploring it.This paper reviews the structure,function,research history and factors that affect its function through analyzing both domestic and foreign literatures.

ATP synthase;function;structure;history;influence factor

Q55

:A

:1006-8945(2016)05-0034-06

*

國(guó)家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目Prohibitin 1 在運(yùn)動(dòng)能量代謝中的作用及調(diào)控F0F1-ATP合酶機(jī)制(31470061)。

2016-04-01

猜你喜歡
合酶亞基復(fù)合體
心臟鈉通道β2亞基轉(zhuǎn)運(yùn)和功能分析
膝關(guān)節(jié)創(chuàng)傷性多發(fā)韌帶損傷中后外復(fù)合體重建的臨床療效
藍(lán)隱藻藻藍(lán)蛋白亞基的分離及特性研究
四種中藥單體選擇性抑制環(huán)氧合酶-2活性的評(píng)價(jià)
RAB37直接與ATG5相互作用并通過(guò)調(diào)控ATG5-12-16復(fù)合體裝配促進(jìn)自噬體形成
老年人顴骨復(fù)合體骨折20例臨床分析
一氧化氮合酶抑制劑治療實(shí)驗(yàn)性自身免疫性心肌炎的研究
小RNA干擾蛋白酶體亞基α7抑制K562細(xì)胞增殖
同型半胱氨酸、胱硫醚β合酶與腦卒中
中介體亞基基因NtMed8在煙草花期調(diào)控中的作用