劉思娣(LIU Si-di) 綜述,吳安華(WU An-hua) 審校
(中南大學(xué)湘雅醫(yī)院,湖南 長沙 410008)
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艱難梭菌毒力與芽孢研究進展
劉思娣(LIU Si-di) 綜述,吳安華(WU An-hua) 審校
(中南大學(xué)湘雅醫(yī)院,湖南 長沙410008)
[關(guān)鍵詞]艱難梭菌; 艱難梭菌感染; 毒力; 毒素; 芽孢
艱難梭菌(Clostridiumdifficile,CD)是梭菌屬中的一種專性厭氧、有芽孢、產(chǎn)毒素的革蘭陽性粗大桿菌,因其生長營養(yǎng)要求較高,分離培養(yǎng)困難,故得此名。一般棲生在人或動物腸道內(nèi),通過糞-口途徑引起外源性感染,也可以在使用大量抗菌藥物后由腸道棲生的艱難梭菌引起內(nèi)源性感染。目前,艱難梭菌是唯一能引起醫(yī)院感染的厭氧菌,也是引起醫(yī)院感染病原體中唯一能形成芽孢的細菌。約25%的抗生素相關(guān)性腹瀉 (antibiotic-associated diarrhea,AAD),75%的抗生素相關(guān)性腸炎(antibiotic-associated colitis,AAC)和近100%的假膜性腸炎(pseudomembranous colitis,PMC)均由此菌引起,統(tǒng)稱為艱難梭菌相關(guān)性疾病(Clostridiumdifficile-associated disease,CDAD)。近年來,隨著抗菌藥物的廣泛應(yīng)用,艱難梭菌耐藥性增強,以及高致病菌株出現(xiàn),導(dǎo)致CDAD發(fā)病率及致死率不斷增高。目前,國內(nèi)外已有諸多文獻詳細介紹了艱難梭菌生物學(xué)特性、實驗室檢測及耐藥機制,故本文就艱難梭菌毒力與芽孢予以簡要綜述。
1毒力
艱難梭菌可引起不同程度的腸道炎癥,包括無癥狀的艱難梭菌攜帶者,輕度、中度、重度腹瀉,甚至假膜性腸炎,嚴重者可致死[1]。艱難梭菌可感染不同年齡階段的人群,≥65歲的老齡人感染率最高,嬰幼兒感染率最低,大部分嬰幼兒存在艱難梭菌腸道定植,但無感染癥狀,可能是嬰幼兒本身缺少艱難梭菌毒素結(jié)合受體[2-3]。艱難梭菌繁殖體離開腸道通常24 h之內(nèi)死亡,而艱難梭菌芽孢能長時間生存在有氧環(huán)境中,經(jīng)過胃時不被胃酸殺死,進而在腸道產(chǎn)生毒素引起疾病。
細菌對宿主感染致病的能力稱為致病性,致病性的強弱與毒力有關(guān)。構(gòu)成毒力的物質(zhì)基礎(chǔ)主要包括侵襲力和毒素。細菌的侵襲力包括黏附、定植和產(chǎn)生侵襲性相關(guān)物質(zhì)的能力。艱難梭菌的侵襲力主要包括黏附素、生物被膜、菌毛與侵襲性酶等。艱難梭菌致病主要通過毒素介導(dǎo),主要致病因子為毒素A(TcdA)及毒素B(TcdB),此外還產(chǎn)生一種二元毒素[4]。之前人們認為艱難梭菌的毒力只由毒素決定,但隨著艱難梭菌致死率的增高及高毒素菌株的暴發(fā),促進了人們對其他毒力成分的研究[5]。
1.1毒素毒素是艱難梭菌產(chǎn)生毒力的主要因素,也是引起艱難梭菌感染(Clostridiumdifficileinfection,CDI)的主要致病因子。艱難梭菌主要產(chǎn)生TcdA和TcdB兩種毒素,都是單糖基轉(zhuǎn)移酶,分別由tcdA和tcdB基因編碼。TcdA能引起兔腸襻黏膜分泌增多和出血,故又稱為腸毒素,分子質(zhì)量為308 kDa,對白細胞有趨化作用,可以與腸黏膜刷狀緣細胞上毒素受體結(jié)合,改變細胞肌動蛋白骨架,介導(dǎo)黏膜上皮細胞的cAMP系統(tǒng),使水和鈉分泌增加,導(dǎo)致分泌性腹瀉,致使腸壁出現(xiàn)炎癥、滲出、甚至黏膜出血壞死,也有一定的細胞毒性作用,但毒力小于TcdB。TcdB為細胞毒素,分子質(zhì)量為269 kDa,可刺激單核細胞釋放炎性因子,直接破壞腸壁細胞,引起炎性反應(yīng)而引發(fā)腸黏膜細胞凋亡、變性、壞死和脫落,甚至形成假膜性炎癥。既往一般認為,TcdA為腸毒素,引起腹瀉和腸炎;TcdB僅在TcdA損傷腸黏膜細胞基礎(chǔ)上致病。但近十年來,臨床上出現(xiàn)由于tcdA基因缺失導(dǎo)致只產(chǎn)TcdB不產(chǎn)TcdA(A-B+型)艱難梭菌菌株感染的暴發(fā)性流行。尤其在韓國,A-B+型 CDI發(fā)病率從1995年的4.2%上升至2008年的25.7%。A-B+型艱難梭菌最初認為是無致病性,而如今認為A-B+可導(dǎo)致假膜性腸炎,嚴重者致死,TcdB無需TcdA的預(yù)先作用可以直接致病,引起腸道局部性炎癥。目前認為兩種毒素的作用是協(xié)同的,先由TcdA引起腸黏膜損傷,破壞細胞間的緊密連接,并激活上皮細胞內(nèi)的鳥苷酸環(huán)化酶,導(dǎo)致cAMP增加而引起鈉分泌增多;在TcdA作用的基礎(chǔ)上,TcdB發(fā)揮細胞毒作用,增加上皮細胞的通透性,引起腸液和電解質(zhì)分泌增加,嚴重者壞死、脫落的細胞與滲出的纖維素,以及炎性細胞等形成假膜。
艱難梭菌除可以產(chǎn)生TcdA和TcdB,還能產(chǎn)生一種更強毒素,即為二元毒素。二元毒素是一種腺苷二磷酸核糖轉(zhuǎn)移酶,在真核細胞中修飾肌動蛋白,導(dǎo)致細胞骨架破環(huán),其編碼基因由負責(zé)編碼具有酶活性毒素的cdtA和編碼受體結(jié)合的cdtB兩部分組成[6]。許多產(chǎn)毒株中二元毒素均不表達[7],而高毒力027和078艱難梭菌通常均表達二元毒素[8],典型代表菌株為BI/NAP1/027(PCR核糖體分型為027,脈沖場凝膠電泳分型為NAP1,限制性內(nèi)切酶分型為BI)。近年來,027艱難梭菌菌株的全球流行導(dǎo)致CDI發(fā)病率快速增長,其可引起嚴重腹瀉,高致死率,高復(fù)發(fā)率以及對喹諾酮高耐藥率。相關(guān)研究[9]對流行的BI/NAP1/027菌株cdt基因座進行分析,發(fā)現(xiàn)cdt具有增加TcdA和TcdB毒性的作用。Warny等[10]體外培養(yǎng)發(fā)現(xiàn),高毒力RT027 TcdA、TcdB產(chǎn)量的高峰中位值分別是其他核糖體型的16、23倍。艱難梭菌的二元毒素能產(chǎn)生腸毒性作用,并且在CDI中有潛在輔助作用[11]。
致病決定區(qū)(pathogenicity locus,PaLoc)是艱難梭菌致病菌染色體片段的一部分,艱難梭菌致病決定區(qū)除毒力編碼基因(tcdA和tcdB基因)外,還有毒力調(diào)控基因,包括負向調(diào)節(jié)基因tcdC、正向調(diào)節(jié)基因tcdR及膜孔蛋白基因tcdE。以上基因共同構(gòu)成了一個大小為19.6 kb的致病決定區(qū)。tcdC是一個具有26個堿基的膜相關(guān)蛋白,tcdC有反σ因子的作用, 可以阻止tcdR與核心RNA合酶的結(jié)合[12],從轉(zhuǎn)錄水平抑制毒素基因的表達,是毒素表達的負向調(diào)節(jié)因子。tcdC基因的部分堿基缺失,基因序列發(fā)生突變,負調(diào)節(jié)機制受損,可導(dǎo)致TcdA和TcdB產(chǎn)量急劇增加,進而使艱難梭菌致病性增強。高毒力RT027毒力調(diào)節(jié)基因tcdC上有一段18個核苷酸區(qū)域的缺失,且117位出現(xiàn)一個單核苷酸的缺失,從而出現(xiàn)移碼突變,使得tcdC的負調(diào)節(jié)作用大大減弱,從而使TcdA和TcdB的產(chǎn)量增高[13];另一高毒力型RT078,tcdC上有一段39個核苷酸區(qū)域(從341位到379位)的缺失,且184位出現(xiàn)一個單核苷酸的突變(C184T),從而導(dǎo)致產(chǎn)生終止密碼子[8]。tcdR編碼正性調(diào)控因子tcdR,tcdR為蛋白質(zhì),為σ因子(轉(zhuǎn)錄起始因子) 家族的一部分,可以結(jié)合RNA聚合酶全酶促進基因tcdR、tcdA、tcdB的表達[14];tcdE基因編碼一種類似穿孔素的蛋白質(zhì),這種物質(zhì)能夠促進TcdA和TcdB的釋放。在艱難梭菌動力學(xué)對數(shù)生長期tcdC基因的表達增強,而tcdA、tcdB、tcdD、tcdE的表達減弱,而在穩(wěn)定期則相反[6, 8, 15-16]。
因艱難梭菌PaLoc位置的不同,可將艱難梭菌分為31種毒素型細菌,通過檢測PaLoc序列的變化可確定艱難梭菌毒素型。艱難梭菌毒素型研究[17]分析顯示,78%~88%艱難梭菌為毒素型0,2%~3%為毒素型Ⅲ,核糖核酸型027是毒素型Ⅲ中的一種。因艱難梭菌產(chǎn)的不同毒素,可將其分為4種類型:A-B-(tcdA-tcdB-)、A-B+(tcdA-tcdB+)、A+B+(tcdA+tcdB+)、A+B+二元毒素(tcdA+tcdB+cdtA+cdtB+)。A-B-型艱難梭菌不產(chǎn)毒素,無致病性,一般存在于無癥狀CDI的成年人和嬰兒中。A-B+型艱難梭菌tcdA3′末端一般有1.8 kb的基因缺失,有些甚至有6kb的基因缺失,因PaLoc區(qū)域tcdA基因存在不同程度的缺失,所以要短很多,A-B+型艱難梭菌只產(chǎn)tcdB,但仍可引起假膜性腸炎,最典型的為核糖核酸型的017。A+B+型艱難梭菌的PaLoc區(qū)域是一個19.6 kb的編碼區(qū)域。A+B+二元毒素典型代表是2003年英國首次暴發(fā)的027高毒素和2008年暴發(fā)的078高毒素。目前,尚未檢出A+B-型艱難梭菌。
1.2侵襲力
1.2.1黏附素艱難梭菌定植是引起感染的首要條件。研究[1]表明,艱難梭菌表面蛋白與腸組織相互作用,使艱難梭菌黏附于腸道壁,進而引起CDI,所以艱難梭菌表面蛋白是引起定植的重要原因之一。有學(xué)者認為,膠原蛋白結(jié)合蛋白A(collagen binding protein A,CbpA)是表達于艱難梭菌表面上的一種重要的細胞表面結(jié)合蛋白,在艱難梭菌定植過程中發(fā)揮重要作用。CbpA是識別黏連基質(zhì)分子的微生物表面成分(microbial surface components recognizing adhesive matrix molecule,MSCRAMM)家族中的新成員之一。實驗表明,CbpA攜帶LPXTG細胞壁錨定結(jié)構(gòu)區(qū)域,以高親和力結(jié)合人類膠原蛋白I和V,可促進艱難梭菌結(jié)合到人類腸道壁上。Hennequin等[18]2001年研究發(fā)現(xiàn),GroEL是指熱休克蛋白60,其具有細胞黏附作用,GroEL在熱休克后細胞外釋放。GroEL的特異性抗體、純化該蛋白、細胞接觸誘導(dǎo)等實驗方法均證明了艱難梭菌GroEL的黏附作用。該作者在2003年研究中還發(fā)現(xiàn)Fbp68可能是艱難梭菌黏附素之一[19],F(xiàn)bp68是一種可結(jié)合纖維連接蛋白、68 kDa大小的細胞表面結(jié)合蛋白,可促進艱難梭菌與腸道中纖維基質(zhì)連接、定植;免疫印跡法、間接免疫熒光法、ELISA 3種方法均表明艱難梭菌可結(jié)合纖維連接蛋白。CDI期艱難梭菌表面上的高分子及低分子的表面層蛋白(SLPS)有黏附宿主細胞能力[20-21];細胞壁蛋白CWP66和CWP84均具有黏附及可降解細胞外基質(zhì)的作用[22-23]。
抑制艱難梭菌的黏附是控制感染的有效手段。鞭毛黏附作用可使細菌致病性增強[24]。Baban等[25]研究認為,鞭毛運動性可促進艱難梭菌黏附于腸道,鞭毛本身的結(jié)構(gòu)也可促進黏附,并且鞭毛結(jié)構(gòu)本身才是艱難梭菌黏附的重要因素。目前研究顯示,鞭毛蛋白FliC,鞭毛帽蛋白FliD是鞭毛中重要的黏附蛋白。Tasteyre等[26]體外實驗證明,F(xiàn)liC、FliD能黏附在無菌小鼠盲腸黏膜。Dingle等[27]采用誘導(dǎo)突變菌株的方法證明了FliD的黏附功能,認為FliD在不同艱難梭菌菌株中的黏附能力不同,使細菌的毒力發(fā)生了變化。
1.2.2生物被膜艱難梭菌能在腸道不利環(huán)境中生長,除芽孢以外,生物被膜可能是另一重要原因。一些致病菌反復(fù)感染與該致病菌形成微生物群落/生物膜的能力有關(guān)。艱難梭菌生物被膜的形成是一個復(fù)雜、多因素參與的過程。艱難梭菌形成生物被膜后受到保護,可以抵御高濃度的萬古霉素。研究[28]認為,spoA不僅是一種產(chǎn)芽孢調(diào)節(jié)因子,也參與生物被膜的形成,但spoA參與生物被膜形成的機制尚不明確,有待于進一步研究。
1.2.3菌毛菌毛與宿主細胞表面的相應(yīng)受體結(jié)合而黏附、定居于黏膜表面,有助于細菌侵入,與細菌的侵襲力密切相關(guān)。IV型菌毛(T4Ps)具有黏附、定植、DNA轉(zhuǎn)移等作用[29];T4Ps也可促進艱難梭菌聚集,作用機制可能與單磷酸鳥苷環(huán)二聚體(C-di-GMP)作為核糖開關(guān)調(diào)控有關(guān)。Bordeleau 等[30]使T4Ps兩個基因(pliA1 CD3513和pliB1 CD3512)失活,結(jié)果導(dǎo)致菌毛結(jié)構(gòu)形成受阻,減少了艱難梭菌的聚集。
1.2.4侵襲性酶侵襲性酶與細菌毒力相關(guān),如透明質(zhì)酸酶能水解動物機體內(nèi)的透明質(zhì)酸,使機體對異物的通透性增強,致病微生物能在組織中隨意活動,進而促進其在組織中擴散蔓延。艱難梭菌擁有多種侵襲性酶,包括透明質(zhì)酸酶、軟骨素-4-硫酸醋酶、 膠原酶和蛋白酶等,尤其是強毒菌株,皆有透明質(zhì)酸酶、軟骨素-4-硫酸醋酶和膠原酶。但目前尚不清楚艱難梭菌毒力與侵襲性酶之間的關(guān)系,有可能是上述侵襲性酶釋放了一些基本的必需營養(yǎng)物,從而促進了艱難梭菌在腸道的定植[31]。
2芽孢
艱難梭菌為嚴格的專性厭氧菌,不能長時間在有氧環(huán)境中存活[32],而芽孢具有非常強的抵抗力,在宿主體外的有氧環(huán)境中可存活數(shù)周至數(shù)月[33]。芽孢耐熱,100℃ 1 h才能死亡,耐干燥、耐強酸強堿,對抗菌藥物高度耐藥,甚至對某些抗菌藥物固有耐藥[34];一旦污染環(huán)境,醫(yī)院中許多消毒劑 (如常用的無漂白消毒劑)也不能將其殺死[35],是CDI及傳播的主要原因,也是引起CDI疾病難治性及復(fù)發(fā)的重要原因。艱難梭菌芽孢通過糞-口途徑進入易感人群消化道,在腸道中出芽,形成艱難梭菌菌株,進而可發(fā)展為CDI。艱難梭菌芽孢的總體結(jié)構(gòu)與其他內(nèi)生孢子類似,但最外層結(jié)構(gòu)稍有不同,艱難梭菌最外層結(jié)構(gòu)為芽孢外殼和外壁,目前其發(fā)病機制還不明確。感染期間艱難梭菌可進一步誘發(fā)芽孢形成通路,產(chǎn)生更多的芽孢。
芽孢出芽是CDI最重要的一步。當(dāng)特定出芽受體(specific germinant receptors,SGRs)感受到特異小分子物質(zhì)時,芽孢出芽。特異小分子包括核苷、糖類、氨基酸,以及一些離子[36],尤其是特定的膽酸鹽及其衍生物(牛黃膽酸鹽、甘膽酸鹽、脫氧膽酸鹽)。特定出芽受體與L-甘氨酸結(jié)合作為出芽開始的第一步[37-38]。
許多桿菌及梭菌屬芽孢的形成是由幾種孤立組氨酸激酶決定的,能使主轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子spoA磷酸化[39-40]。艱難梭菌菌株630基因編碼5種孤立組氨酸激酶(CD1352、CD1492、CD1579、CD1949和CD2492),CD2492失活可降低芽孢形成率,spoA突變則完全阻斷芽孢的形成[41]。
近年來,隨著抗菌藥物廣泛應(yīng)用,艱難梭菌感染率及致死率日益上升,已成為全世界關(guān)注的問題。雖然國內(nèi)外對艱難梭菌的研究已有幾十年,但隨著艱難梭菌高耐藥菌株及強毒力菌株的出現(xiàn),艱難梭菌感染復(fù)發(fā)率及致死率增高,給艱難梭菌的診斷、預(yù)防及治療帶來了許多新的問題。因此,建議繼續(xù)加強對艱難梭菌的基礎(chǔ)及臨床研究,及時開發(fā)艱難梭菌檢測方法,為艱難梭菌的防治提供幫助。
[參 考 文 獻]
[1]Rupnik M, Wilcox MH, Gerding DN.Clostridiumdifficileinfection: new developments in epidemiology and pathogenesis[J]. Nat Rev Microbiol, 2009, 7(7): 526-536.
[2]Jangi S, Lamont JT. Asymptomatic colonization byClostridiumdifficilein infants: implications for disease in later life[J]. J Pediatr Gastroenterol Nutr, 2010, 51(1): 2-7.
[3]Rousseau C, Poilane I, De Pontual L, et al.Clostridiumdifficilecarriage in healthy infants in the community: a potential reservoir for pathogenic strains[J]. Clin Infect Dis, 2012, 55(9): 1209-1215.
[4]Mcfarland LV. Renewed interest in a difficult disease:Clostridiumdifficileinfections-epidemiology and current treatment strategies[J]. Curr Opin Gastroenterol, 2009, 25(1): 24-35.
[5]Vedantam G, Clark A, Chu M, et al.Clostridiumdifficileinfection: toxins and non-toxin virulence factors, and their contributions to disease establishment and host response[J]. Gut Microbes, 2012, 3(2): 121-134.
[6]Stubbs S, Rupnik M, Gibert M, et al. Production of actin-specific ADP-ribosyltransferase (binary toxin) by strains ofClostridiumdifficile[J]. FEMS Microbiol Lett, 2000, 186(2): 307-312.
[7]Liao CH, Ko WC, Lu JJ, et al. Characterizations of clinical isolates ofClostridiumdifficileby toxin genotypes and by susceptibility to 12 antimicrobial agents, including fidaxomicin (OPT-80) and rifaximin: a multicenter study in Taiwan[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2012, 56(7): 3943-3949.
[8]Goorhuis A, Bakker D, Corver J, et al. Emergence ofClostridiumdifficileinfection due to a new hypervirulent strain, polymerase chain reaction ribotype 078[J]. Clin Infect Dis, 2008, 47(9): 1162-1170.
[9]Mcdonald LC, Killgore GE, Thompson A, et al. An epidemic, toxin gene-variant strain ofClostridiumdifficile[J]. N Engl J Med, 2005, 353(23): 2433-2441.
[10] Warny M, Pepin J, Fang A, et al. Toxin production by an emerging strain ofClostridiumdifficileassociated with outbreaks of severe disease in North America and Europe[J]. Lancet, 2005, 366(9491): 1079-1084.
[11] Geric B, Carman RJ, Rupnik M, et al. Binary toxin-producing, large clostridial toxin-negativeClostridiumdifficilestrains are enterotoxic but do not cause disease in hamsters[J]. J Infect Dis, 2006, 193(8): 1143-1150.
[12] Carter GP, Douce GR, Govind R, et al. The anti-sigma factor TcdC modulates hypervirulence in an epidemic BI/NAP1/027 clinical isolate ofClostridiumdifficile[J]. PLoS Pathog, 2011, 7(10): e1002317.
[13] 肖克林,金萍,黃麗清,等. 高毒力艱難梭菌的基因型和毒力相關(guān)基因檢測[J]. 國際檢驗醫(yī)學(xué)雜志. 2015(8): 1021-1025.
[14] O'Connor JR, Johnson S, Gerding DN.Clostridiumdifficileinfection caused by the epidemic BI/NAP1/027 strain[J]. Gastroenterology, 2009, 136(6): 1913-1924.
[15] Voth DE, Ballard JD.Clostridiumdifficiletoxins: mechanism of action and role in disease[J]. Clin Microbiol Rev, 2005, 18(2): 247-263.
[16] Hundsberger T, Braun V, Weidmann M, et al. Transcription analysis of the genes tcdA-E of the pathogenicity locus ofClostridiumdifficile[J]. Eur J Biochem, 1997, 244(3): 735-742.
[17] Geric B, Rupnik M, Gerding DN, et al. Distribution ofClostridiumdifficilevariant toxinotypes and strains with binary toxin genes among clinical isolates in an American hospital[J]. J Med Microbiol, 2004, 53(Pt 9): 887-894.
[18] Hennequin C, Porcheray F, Waligora-Dupriet A, et al. GroEL (Hsp60) ofClostridiumdifficileis involved in cell adherence[J]. Microbiology, 2001, 147(Pt 1): 87-96.
[19] Hennequin C, Janoir C, Barc MC, et al. Identification and characterization of a fibronectin-binding protein fromClostridiumdifficile[J]. Microbiology, 2003, 149(Pt10): 2779-2787.
[20] Karjalainen T, Waligora-Dupriet AJ, Cerquetti M, et al. Molecular and genomic analysis of genes encoding surface-anchored proteins fromClostridiumdifficile[J]. Infect Immun, 2001, 69(5): 3442-3446.
[21] Calabi E, Calabi F, Phillips AD, et al. Binding ofClostridiumdifficilesurface layer proteins to gastrointestinal tissues[J]. Infect Immun, 2002, 70(10): 5770-5778.
[22] Waligora AJ, Hennequin C, Mullany P, et al. Characterization of a cell surface protein ofClostridiumdifficilewith adhesive properties[J]. Infect Immun, 2001, 69(4): 2144-2153.
[23] Janoir C, Péchiné S, Grosdidier C, et al. Cwp84, a surface-associated protein ofClostridiumdifficile, is a cysteine protease with degrading activity on extracellular matrix proteins[J]. J Bacteriol, 2007, 189(20): 7174-7180.
[24] Duan Q, Zhou M, Zhu L, et al. Flagella and bacterial pathogenicity[J]. J Basic Microbiol, 2013, 53(1): 1-8.
[25] Baban ST, Kuehne SA, Barketi-Klai A, et al. The role of flagella inClostridiumdifficilepathogenesis: comparison between a non-epidemic and an epidemic strain[J]. PLoS One, 2013, 8(9): e73026.
[26] Tasteyre A, Barc M, Collignon A. Role of FliC and FliD flagellar proteins ofClostridiumdifficilein adherence and gut colonization[J]. Infect Immun, 69(12): 7937-7940.
[27] Dingle TC, Mulvey GL, Armstrong GD. Mutagenic analysis of theClostridiumdifficileflagellar proteins, FliC and FliD, and their contribution to virulence in hamsters[J]. Infect Immun, 2011, 79(10): 4061-4067.
[28] Dapa T, Unnikrishnan M. Biofilm formation byClostridiumdifficile[J]. Gut Microbes, 2013, 4(5): 397-402.
[29] Maldarelli GA, De Masi L, von Rosenvinge EC, et al. Identification, immunogenicity, and cross-reactivity of type IV pilin and pilin-like proteins fromClostridiumdifficile[J]. Pathog Dis, 2014, 71(3): 302-314.
[30] Bordeleau E, Purcell EB, Lafontaine DA, et al. Cyclic di-GMP riboswitch-regulated type IV pili contribute to aggregation ofClostridiumdifficile[J]. J Bacteriol, 2015, 197(5): 819-832.
[31] 許方方,胡玉苗,冉珊珊,等. 艱難梭菌毒素及致病基因的研究進展[J]. 動物醫(yī)學(xué)進展. 2013, 34(7): 100-103.
[32] Jump RL, Pultz MJ, Donskey CJ. VegetativeClostridiumdifficilesurvives in room air on moist surfaces and in gastric contents with reduced acidity: a potential mechanism to explain the association between proton pump inhibitors andC.difficile-associated diarrhea?[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2007, 51(8): 2883-2887.
[33] Buckley AM, Spencer J, Candlish D, et al. Infection of hamsters with the UKClostridiumdifficileribotype 027 outbreak strain R20291[J]. J Med Microbiol, 2011, 60(8): 1174-1180.
[34] Baines SD, O'Connor R, Saxton K, et al. Activity of vancomycin against epidemicClostridiumdifficilestrains in a human gut model[J]. J Antimicrob Chemother, 2009, 63(3): 520-525.
[35] Ali S, Moore G, Wilson AP. Spread and persistence ofClostridiumdifficilespores during and after cleaning with sporicidal disinfectants[J]. J Hosp Infect, 2011, 79(1): 97-98.
[36] Paredes-Sabja D, Setlow P, Sarker MR. Germination of spores of Bacillales and Clostridiales species: mechanisms and proteins involved[J]. Trends Microbiol, 2011, 19(2): 85-94.
[37] Howerton A, Ramirez N, Abel-Santos E. Mapping interactions between germinants andClostridiumdifficilespores[J]. J Bacteriol, 2011, 193(1): 274-282.
[38] Wheeldon LJ, Worthington T, Lambert PA. Histidine acts as a co-germinant with glycine and taurocholate forClostridiumdifficilespores[J]. J Appl Microbiol, 2011, 110(4): 987-994.
[39] Higgins D, Dworkin J. Recent progress in Bacillus subtilis sporulation[J]. FEMS Microbiol Rev, 2012, 36(1): 131-148.
[40] Steiner E, Dago AE, Young DI, et al. Multiple orphan histidine kinases interact directly with Spo0A to control the initiation of endospore formation in Clostridium acetobutylicum[J]. Mol Microbiol, 2011, 80(3): 641-654.
[41] Underwood S, Guan S, Vijayasubhash V, et al. Characterization of the sporulation initiation pathway ofClostridiumdifficileand its role in toxin production[J]. J Bacteriol, 2009, 191(23): 7296-7305.
(本文編輯:左雙燕)
Research advance in virulence and spore ofClostridiumdifficile
(Xiangya Hospital,Central South University, Changsha 410008, China)
[收稿日期]2016-03-08
[基金項目]中南大學(xué)湘雅醫(yī)院青年基金項目(2014Q05)
[作者簡介]劉思娣(1989-),女(漢族),湖南省永州市人,碩士研究生,主要從事感染性疾病研究。 [通信作者]吳安華E-mail:dr_wuanhua@sina.com
DOI:10.3969/j.issn.1671-9638.2016.06.020
[中圖分類號]R378.8
[文獻標識碼]A
[文章編號]1671-9638(2016)06-0436-05
·綜述·