邱盼子, 郭欣妍, 王 娜* , 孔祥吉, 何 華
(1. 環(huán)境保護(hù)部南京環(huán)境科學(xué)研究所,江蘇 南京210042;2. 中國(guó)藥科大學(xué)理學(xué)院,江蘇 南京211198)
隨著我國(guó)抗生素產(chǎn)品國(guó)際競(jìng)爭(zhēng)力的不斷增強(qiáng),抗生素藥物的年產(chǎn)量大大增加,生產(chǎn)過程中所產(chǎn)生的制藥廢水量也逐年增加。實(shí)際生產(chǎn)中,制藥廢水的處理多采用以生物處理為主、結(jié)合物化處理工藝的常規(guī)廢水處理工藝。然而,現(xiàn)有的廢水處理技術(shù)不能將其中殘留的抗生素完全去除,大部分抗生素會(huì)經(jīng)不同途徑對(duì)土壤和水體造成污染[1,2]。
由于抗生素環(huán)境污染存在隱蔽性與長(zhǎng)效性的特點(diǎn),針對(duì)抗生素的環(huán)境管理一直處于盲區(qū),致使抗生素的環(huán)境污染持續(xù)處于加重的態(tài)勢(shì)[3],嚴(yán)重影響了抗生素生產(chǎn)的社會(huì)效益與經(jīng)濟(jì)利益。制藥廠廢水處理工藝能否有效去除抗生素,對(duì)抗生素污染的源頭控制起著重大作用。目前,大環(huán)內(nèi)酯類(MLs)、氨基糖苷類(AGs)及氟喹諾酮類(FQNs)抗生素是我國(guó)醫(yī)藥、畜牧和水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)應(yīng)用廣泛的幾類抗生素[4-7],在我國(guó)產(chǎn)量巨大。本研究所選取的10 種抗生素一般作為人用抗生素,環(huán)境暴露少,制藥廢水是環(huán)境中這些抗生素的主要來源之一,對(duì)公眾健康和環(huán)境安全構(gòu)成了嚴(yán)重威脅。因此建立制藥廢水中此類物質(zhì)的分析測(cè)定方法,可為進(jìn)一步研究其在制藥廠廢水處理系統(tǒng)中的消解動(dòng)態(tài)提供技術(shù)支持。
液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法是檢測(cè)環(huán)境樣品中抗生素含量的一種重要方法,其靈敏度高,特異選擇性好,抗背景干擾能力強(qiáng),能對(duì)含量低的樣品進(jìn)行很好的定量分析檢測(cè)[8,9]。但由于氨基糖苷類抗生素極性大,且為離子型化合物,很難保留在反相色譜柱上。因此多在流動(dòng)相中添加一定濃度的七氟丁酸(HFBA),通過與被測(cè)物形成離子對(duì)增強(qiáng)其色譜保留[10,11]。但HFBA 會(huì)在質(zhì)譜中積累而污染質(zhì)譜,影響儀器的靈敏度,不利于儀器后續(xù)的穩(wěn)定使用。本研究以甲酸代替七氟丁酸,使氨基糖苷類抗生素獲得了較好的峰形和較高的響應(yīng),并利用固相萃取-超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(SPE-UPLC-MS/MS)技術(shù),建立了制藥廢水中10 種目標(biāo)抗生素的高靈敏檢測(cè)方法。
高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀(LC 為Agilent Technologies 的1290 Infinity,MS 為美國(guó)AB 公司的SCIEX QTRAP 4500);Agilent C18 色譜柱(75 mm×2.1 mm,2.7 μm)(美國(guó)Agilent 公司);真空冷凍干燥機(jī)(Benchtop K,Virtis,美國(guó));高速冷凍離心機(jī)(CR22GII,Sigma,德國(guó));Milli-Q 超純水器(Millipore,美國(guó));AG-285 電子天平(Mettler,瑞士);MG-2200 氮吹儀(EYELA,日本);12 通道固相萃取裝置(Waters,美國(guó));Waters Oasis HLB 固相萃取柱(200 mg,6 mL,粒徑為30 μm,親水親脂平衡的水可浸潤(rùn)性的反相吸附);Waters Oasis WCX 固相萃取柱(150 mg,6 mL,粒徑為30 μm,混合型弱陽(yáng)離子交換反相吸附劑);Waters Oasis MCX 固相萃取柱(60 mg,3 mL,粒徑為30 μm,混合型陽(yáng)離子交換反相吸附劑);Waters Oasis WAX固相萃取柱(60 mg,3 mL,粒徑為30 μm,混合型弱陰離子交換反相吸附劑)(Waters,美國(guó))。
乙腈、甲醇和甲酸為色譜純(Merck,德國(guó));試驗(yàn)用水為經(jīng)Milli-Q 凈化系統(tǒng)(0.22 μm 孔徑過濾膜)處理的超純水。
標(biāo)準(zhǔn)品:巴龍霉素(paromomycin,PAR,純度99.0%),核 糖 霉 素(ribostamycin,RI,純 度99.0%),依替米星(etimicin,ET,純度99.0%),奈替米星(netilmicin,NE,純度99.0%),西索霉素(sisomicin,SI,純度99.0%),小諾霉素(micronomicin,MI,純度99.0%),巴洛沙星(balofloxacin,BA,純度99.0%),帕珠沙星(pazufloxacin,PA,純度99.0%),螺旋霉素(spiramycin,SP,純度99.0%),氟羅沙星(fleroxacin,F(xiàn)L,純度99.0%)??股貥?biāo)準(zhǔn)品均購(gòu)于德國(guó)Dr. Ehrenstorfer 公司。10 種目標(biāo)抗生素的化學(xué)結(jié)構(gòu)見圖1。
3 種氟喹諾酮類抗生素和螺旋霉素用甲醇配制成為1000 mg/L 的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,6 種氨基糖苷類藥物因難溶于有機(jī)試劑而使用20% (v/v)的乙腈水溶液配制成為1000 mg/L 的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,儲(chǔ)存于4 ℃的冰箱中。用甲醇配制上述10 種抗生素的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,質(zhì)量濃度為10 mg/L。
圖1 10 種抗生素的化學(xué)結(jié)構(gòu)式Fig.1 Chemical structures of the ten antibiotics
廢水水樣取自江蘇省某藥廠污水處理系統(tǒng)。采樣在2014 年11 月3、12、20、29 日進(jìn)行,每天采樣3次,每8 h 采樣1 次,每次從各采樣點(diǎn)取樣1 L。所采集的廢水為混合水樣,包括原水、調(diào)節(jié)池水、厭氧塔水、水解池水、好氧池水、二沉池水、混凝池水、最終出水,全部水樣盛裝于潔凈的棕色玻璃采樣瓶?jī)?nèi),防止樣品發(fā)生光解作用導(dǎo)致測(cè)定結(jié)果不準(zhǔn)。盡快運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室并保存于4 ℃的冰箱內(nèi),保持樣品的原始狀態(tài)。48 h 內(nèi)完成廢水中殘留抗生素的分析測(cè)定。
準(zhǔn)確量取經(jīng)0.45 μm 玻璃纖維濾膜過濾的水樣250 mL,用甲酸調(diào)節(jié)pH 為3.0 ~4.0,使目標(biāo)抗生素完全離子化,利于其被固相吸附劑完全吸附保留。預(yù)先依次用6 mL 甲醇、6 mL 超純水淋洗活化WCX 固相萃取柱。樣品溶液上柱時(shí)控制流速為3~5 mL/min。過柱完成后,用6 mL 超純水沖洗WCX 柱,最大程度除去柱內(nèi)殘留干擾物。抽真空30 min,盡量去除柱中殘留水分。最后以10 mL 含5% (v/v)甲酸的甲醇溶液分3 次洗脫,收集洗脫液并在室溫下用N2吹至近干,用乙腈-0.2% (v/v)甲酸水溶液(1 ∶9,v/v)定容至1 mL,渦旋振蕩2 ~3 min,10 000 r/min 下離心10 min,取上清液待分析。
1.5.1 質(zhì)譜條件
采用電噴霧離子(ESI)源正電離模式、多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM)掃描。氣簾氣(curtain gas,CUR)壓力為206 851.8 Pa,噴霧氣(ion source gas 1,GS1)壓力為241 327.1 Pa,輔助加熱氣(ion source gas 2,GS2)壓力為275 802.4 Pa,源溫度(temperature,TEM)為450 ℃,離子化電壓(ion spray voltage,IS)為5 500 V,碰撞氣(collision gas,CAD)壓力為41 370.36 Pa。其他參數(shù)見表1。
表1 目標(biāo)抗生素主要的MRM MS 參數(shù)Table 1 MRM MS parameters for the target antibiotics
1.5.2 色譜條件
柱溫:35 ℃;流動(dòng)相:(A)0.2% (v/v)甲酸水溶液和(B)乙腈,流速0.2 mL/min;進(jìn)樣量:5 μL;流動(dòng)相梯度:0.01 ~7.00 min,90% A ~60% A;7.01~8.00 min,90% A。
采用全程空白和平行樣對(duì)分析過程進(jìn)行質(zhì)量控制,確保結(jié)果的可靠性。處理數(shù)據(jù)時(shí),采用標(biāo)準(zhǔn)添加法對(duì)各目標(biāo)抗生素在制藥廢水基質(zhì)中存在的不可忽略的基質(zhì)效應(yīng)進(jìn)行校正。環(huán)境樣品中可能存在復(fù)雜或未知組分的基質(zhì)影響,標(biāo)準(zhǔn)添加法是降低基質(zhì)效應(yīng)影響的有效措施。將1.4 節(jié)處理的水樣平均分成兩份。其中一份直接進(jìn)樣分析,記錄待測(cè)樣品的峰面積;另一份根據(jù)第一份的檢出情況,精密加入適量各目標(biāo)化合物標(biāo)準(zhǔn)混合工作液,然后進(jìn)樣分析,記錄待測(cè)樣品的峰面積。依據(jù)標(biāo)準(zhǔn)添加法校正公式C =S×Rx/(Rs-Rx)計(jì)算樣品濃度。其中C 為校正后的待測(cè)物濃度;S 為標(biāo)準(zhǔn)添加量;Rx和Rs分別為標(biāo)準(zhǔn)溶液添加前、后測(cè)得的待測(cè)樣品峰面積。
2.1.1 色譜條件的優(yōu)化
氨基糖苷類抗生素(AGs)分子結(jié)構(gòu)中含有多個(gè)伯氨和仲氨基團(tuán),呈堿性,極性強(qiáng)。為提高AGs 在反相色譜柱上的保留能力,多使用包括戊基、庚基或己基磺酸鹽的離子對(duì)試劑[11,12]。由于磺酸鹽難揮發(fā),不適合質(zhì)譜分析,因此一般采用易揮發(fā)的七氟丁酸作為離子對(duì)試劑[13,14]。但七氟丁酸陰離子容易和溶液中的陽(yáng)離子形成緊密的中性離子對(duì),不能被質(zhì)譜檢出,且會(huì)在質(zhì)譜中累積,污染質(zhì)譜,抑制電噴霧質(zhì)譜信號(hào)而影響檢測(cè)的靈敏度。本文以甲酸代替七氟丁酸,使AGs 獲得了較高的響應(yīng)和較好的峰形。此外,考慮到螺旋霉素在強(qiáng)酸性條件下容易水解,故水相選擇0.2% (v/v)的甲酸水溶液。目標(biāo)抗生素的色譜圖如圖2 所示。
2.1.2 質(zhì)譜條件的優(yōu)化
Agilent 1290 超高效液相色譜和AB SCIEX QTRAP 4500 聯(lián)用能夠提供MRM 模式,提高儀器靈敏度。將所研究的10 種目標(biāo)抗生素分別配制成100 ~1 000 μg/L 的標(biāo)準(zhǔn)溶液,直接注入質(zhì)譜儀,進(jìn)樣速度為7 μL/min,根據(jù)目標(biāo)抗生素的分子結(jié)構(gòu)特征,在正離子模式下對(duì)目標(biāo)抗生素實(shí)行半自動(dòng)進(jìn)樣,采用一級(jí)質(zhì)譜對(duì)目標(biāo)物進(jìn)行母離子全掃描,分析得到[M+H]+分子離子峰,然后二級(jí)質(zhì)譜以分子離子為母離子,優(yōu)化CE、DP、EP、CXP 等4 個(gè)參數(shù),對(duì)各目標(biāo)抗生素的子離子進(jìn)行全掃描,選信噪比較高的兩個(gè)子離子與分子離子組成定性和定量離子對(duì),信噪比最高的離子對(duì)往往為定量提供了高靈敏度,而其他離子對(duì)則可提供輔助定性信息。在進(jìn)行MRM監(jiān)測(cè)時(shí)選擇信噪比最高的離子對(duì)進(jìn)行檢測(cè),以提高質(zhì)譜確證的準(zhǔn)確性。
圖2 目標(biāo)抗生素的色譜圖Fig.2 Chromatograms of the target antibiotics
本方法中6 種氨基糖苷類抗生素的保留時(shí)間幾乎相同,帕珠沙星和氟羅沙星的保留時(shí)間亦較為接近,但鑒于質(zhì)譜檢測(cè)器具有強(qiáng)大的質(zhì)量鑒別能力,對(duì)于非同分異構(gòu)的化合物,無(wú)需達(dá)到色譜分離,也可通過不同的質(zhì)量通道進(jìn)行質(zhì)譜分離,從而實(shí)現(xiàn)目標(biāo)化合物的專屬測(cè)定。
2.3.1 標(biāo)準(zhǔn)工作曲線與檢出限
采用無(wú)檢出抗生素的空白基質(zhì),按照1.4 節(jié)所述方法處理后加入目標(biāo)抗生素混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,配制成質(zhì)量濃度范圍為0.1 ~1 000 μg/L 的系列標(biāo)準(zhǔn)工作溶液,在優(yōu)化的液相色譜和質(zhì)譜條件下進(jìn)行分析。10 種目標(biāo)抗生素均以峰面積(y)為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度(x,mg/L)為橫坐標(biāo)做定量工作曲線,得到的線性回歸方程的相關(guān)系數(shù)r2在0.995 6 ~0.999 8 之間,表明各目標(biāo)抗生素在相應(yīng)的濃度范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系。
根據(jù)SPE-UPLC/MS/MS 的定量限(LOQ)公式[15]計(jì)算本方法定量限:
其中:IQL 為儀器的定量限(μg/L),即色譜峰信噪比等于10 時(shí)對(duì)應(yīng)的目標(biāo)物濃度(見表2);R 為固相萃取回收率(%),是高、中、低3 個(gè)加標(biāo)水平的回收率的平均值;C 為樣品富集倍數(shù)。準(zhǔn)確量取待測(cè)水樣250 mL,過柱富集并濃縮后,用初始流動(dòng)相定容至1 mL 進(jìn)樣分析,故C 為250。以色譜峰信噪比等于3 確定樣品的檢出限。本文方法的定量限為0.22 ~14.55 ng/L,檢出限為0.07 ~4.37 ng/L(見表2)。
2.3.2 方法的回收率
采用在空白基質(zhì)中添加標(biāo)準(zhǔn)溶液的方法進(jìn)行添加回收率測(cè)定。分別添加氨基糖苷類抗生素低(0.02 μg/L)、中(1.0 μg/L)、高(40 μg/L)3 個(gè)水平,氟喹諾酮類抗生素和螺旋霉素低(0.002 μg/L)、中(0.10 μg/L)、高(4.0 μg/L)3 個(gè)水平,每個(gè)水平取3 份樣品進(jìn)行平行實(shí)驗(yàn),按1.4 節(jié)方法處理后進(jìn)行UPLC-MS/MS 測(cè)定,采用外標(biāo)法定量。計(jì)算各待測(cè)化合物在空白基質(zhì)中的加標(biāo)回收率(見表3)。6 種AGs 的回收率差異較大,這是因?yàn)? 種AGs 雖然有著相似的化學(xué)結(jié)構(gòu),但其與陽(yáng)離子交換劑作用的能力差別較大[16]。巴龍霉素、核糖霉素和依替米星的回收率較高(84.1% ~114.1%),可能是由于這3 種AGs 結(jié)構(gòu)中含3 個(gè)或3 個(gè)以上的伯氨基,與陽(yáng)離子交換劑的作用位點(diǎn)多;西索霉素、奈替米星和小諾霉素的結(jié)構(gòu)中也含有多個(gè)伯氨基,但回收率卻不及前3 種AGs,這可能是由于其pKb值較高,與陽(yáng)離子交換劑作用力較弱,被保留在陽(yáng)離子交換柱上的組分較少。氟羅沙星回收率低于其他兩種FQNs,可能是因?yàn)榉_沙星結(jié)構(gòu)中含有多個(gè)吸電子基(F 原子),酸性較強(qiáng),故減弱了與陽(yáng)離子交換劑的親和力。雖然后3 種AGs 和氟羅沙星的回收率偏低(50.4% ~70.6%),但是RSD 均較低(1.10%~9.64%),表明該方法比較穩(wěn)定。
表2 10 種抗生素的線性方程、相關(guān)系數(shù)、儀器定量限、檢出限和定量限Table 2 Linear equations,correlation coefficients,instrument quantitative limits (IQL),limits of detection and limits of quantification of the ten antibiotics
表3 水樣中10 種抗生素的加標(biāo)回收率及RSD(n=3)Table 3 Recoveries and RSDs of the ten antibiotics in water samples (n=3)
2.3.3 固相萃取柱的選擇
固相萃取技術(shù)是目前測(cè)定抗生素最常用的前處理方法,可選擇不同的固相萃取柱對(duì)水樣中的多種目標(biāo)化合物進(jìn)行萃取和凈化。本實(shí)驗(yàn)分別考察了弱陰離子交換柱(WAX)、混合型強(qiáng)陽(yáng)離子(MCX)、親水親油平衡柱(HLB)及弱陽(yáng)離子(WCX)固相萃取柱對(duì)目標(biāo)抗生素的萃取回收效果(見圖3)。結(jié)果表明:采用WAX 柱時(shí),10 種目標(biāo)抗生素的回收率幾乎都為0,這是由于WAX 柱是弱陰離子交換柱,10 種目標(biāo)抗生素在酸性(pH 3.0 ~4.0)條件下帶正電荷,很難與陰離子交換劑進(jìn)行離子交換,故被吸附在WAX 柱上的目標(biāo)組分很少;采用MCX 交換柱時(shí)6種AGs 的回收率很低,經(jīng)分析發(fā)現(xiàn)MCX 交換柱對(duì)AGs 等堿性化合物具有高度的選擇性和靈敏度,故AGs 與MCX 交換柱結(jié)合較牢固,難以被洗脫;采用HLB 柱對(duì)3 種FQNs 抗生素的萃取回收率優(yōu)于其他固相萃取柱,但是HLB 柱對(duì)6 種AGs 抗生素的回收效果差。故綜合考慮后選用WCX 柱進(jìn)行富集凈化。比較了500 和150 mg 的WCX 柱,發(fā)現(xiàn)150 mg WCX 柱對(duì)10 種抗生素具有較好的回收率和選擇性。
圖3 固相萃取柱對(duì)10 種抗生素回收率的影響(n=3)Fig.3 Effect of SPE columns on the recoveries of the ten antibiotics (n=3)
2.3.4 洗脫液的優(yōu)化
處理后的水樣經(jīng)過WCX 柱后,分別用2% (v/v)甲酸甲醇溶液、5% (v/v)甲酸甲醇溶液和10% 甲酸甲醇溶液洗脫,結(jié)果如圖4 所示。之所以選擇酸性洗脫劑,是因?yàn)閃CX 柱的主要分離模式是陽(yáng)離子交換作用,上樣時(shí),AGs 陽(yáng)離子與WCX 柱中的H+交換而使AGs 保留在柱上,用酸性洗脫劑洗脫,使其H+與保留在柱上的AGs 陽(yáng)離子進(jìn)行交換從而將結(jié)合在離子交換劑上的AGs 洗脫下來。用2% (v/v)甲酸甲醇溶液洗脫時(shí),10 種目標(biāo)抗生素的回收率在19.0% ~79.0% 之間,隨著甲酸體積分?jǐn)?shù)增加至5% 時(shí),10 種目標(biāo)抗生素的回收率達(dá)到最大,為50.4% ~114.1%;繼續(xù)增加甲酸體積分?jǐn)?shù)至10% 時(shí),10 種目標(biāo)抗生素的洗脫回收率為41.7% ~109.2%。最終選擇5% (v/v)甲酸甲醇溶液作為洗脫液。
圖4 洗脫液對(duì)10 種抗生素回收率的影響(n=3)Fig.4 Effect of eluents on the recoveries of the ten antibiotics (n=3)
利用本文建立的測(cè)定方法分析了制藥廢水中抗生素的殘留濃度。由表4 可知該制藥廢水中檢出的抗生素主要為巴龍霉素、核糖霉素和螺旋霉素,這3種抗生素在出口水中的質(zhì)量濃度范圍為0.95 ~125.20 μg/L;巴龍霉素與核糖霉素最終去除率分別為95.77%、99.48%。巴龍霉素和核糖霉素在水相中的去除效果好主要是因?yàn)榉肿咏Y(jié)構(gòu)中都帶有多個(gè)-NH2和-OH,這些基團(tuán)可以與鈣、鎂等金屬離子發(fā)生配位反應(yīng),或形成氫鍵,極易與固體介質(zhì)顆粒發(fā)生吸附而從水相中去除。
由于螺旋霉素于采樣前2 天就已停產(chǎn),導(dǎo)致其在后續(xù)處理單元?dú)埩魸舛雀?,原水中螺旋霉素的濃度遠(yuǎn)低于出口水的濃度。
由于物理和化學(xué)性質(zhì)的區(qū)別,各廢水處理環(huán)節(jié)對(duì)不同種類的抗生素的去除效果也會(huì)有所不同。化學(xué)處理-水解酸化池產(chǎn)生的大量發(fā)酵細(xì)菌和產(chǎn)乙酸菌,它們通過微生物降解作用對(duì)巴龍霉素有明顯的去除作用,去除率達(dá)66.07%。好氧池的活性污泥含有豐富的好氧細(xì)菌,能對(duì)核糖霉素進(jìn)行氧化分解,致使核糖霉素在該環(huán)節(jié)的去除率達(dá)99.06%。
表4 制藥廢水中10 種目標(biāo)抗生素的測(cè)定(n=3)Table 4 Determination of the ten antibiotics in the water samples from pharmaceutical manufacturer wastewater treatment plants (n=3)
建立了固相萃取-超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜同時(shí)分析制藥廢水中10 種典型抗生素的方法,定量檢測(cè)了這些抗生素在制藥廢水處理系統(tǒng)中的濃度分布。后續(xù)工作中還將補(bǔ)充這些抗生素在不同制藥廠廢水中的殘留濃度數(shù)據(jù),通過質(zhì)量平衡分析掌握抗生素在不同制藥廢水處理系統(tǒng)中的消除機(jī)制,探究抗生素的主要去除方法,為今后的處理工藝改造、優(yōu)化提供理論依據(jù)和技術(shù)支持。
[1] Sui Q,Huang J,Deng S,et al. Water Res,2010,44(2):417
[2] Yang C Q,Wang L X,Hou X H,et al. Chinese Journal of Chromatography (楊常青,王龍星,侯曉虹,等. 色譜),2012,30(8):756
[3] Wang N,Shan Z J,Ge F,et al. The Administration and Technique of Environmental Monitoring (王娜,單正軍,葛峰,等. 環(huán)境監(jiān)測(cè)管理與技術(shù)),2010,22(5):14
[4] Luo H T,Xie M T,Huang X L,et al. Chinese Journal of Chromatography (羅輝泰,謝夢(mèng)婷,黃曉蘭,等. 色譜),2015,33(4):354
[5] Du J,Zhao H X,Chen J W. Chinese Journal of Chromatography (杜鵑,趙洪霞,陳景文. 色譜),2015,33(4):348
[6] Luo Y,Xu L,Rysz M,et al. Environ Sci Technol,2011,45(5):1827
[7] Li B,Zhang T. Environ Sci Technol,2010,44(9):3468
[8] Cherlet M,De Baere S,De Backer P. J Mass Spectrom,2007,42(5):647
[9] Hamamoto K,Mizuno Y,Koike R,et al. Shokuhin Eiseigaku Zasshi,2003,44(2):114
[10] Gbylik M,Posyniak A,Mitrowska K,et al. Food Addit Contam:Part A,2013,30(6):940
[11] Zhu W X,Yang J Z,Wei W,et al. J Chromatogr A,2008,1207(1):29
[12] Kaufmann A,Butcher P,Kolbener P. Rapid Commun Mass Spectrom,2003,17(22):2575
[13] Li J S,Qiu Y M,Wang C. Analysis of Veterinary Drug Residue. Shanghai:Shanghai Scientific and Technical Publishers (李俊鎖,邱月明,王超. 獸藥殘留分析. 上海:上??茖W(xué)技術(shù)出版社),2002:340
[14] Yang Z H,Du G C,Qiao H X,et al. Shanghai Journal of Animal Husbandry and Veterinary Medicine (楊智洪,杜根成,喬宏興,等. 上海畜牧獸醫(yī)通訊),2005(5):2
[15] Tang X Y,Zuo J E,Yu X,et al. China Environmental Science (湯薪瑤,左劍惡,余忻,等. 中國(guó)環(huán)境科學(xué)),2014,34(9):2273
[16] Kaufmann A,Butcher P,Maden K. Anal Chim Acta,2012,711:46