吳文青，楊浩然綜述，聶莉莉?qū)徯?/p>

動(dòng)物活體及人工皮膚組織輻射旁效應(yīng)研究進(jìn)展

吳文青*，楊浩然*綜述，聶莉莉?qū)徯?/p>

輻射旁效應(yīng)（RIBE）可以被不同類型的電離輻射所誘發(fā)。在各種體外培養(yǎng)細(xì)胞模型和活體動(dòng)物及人體中，均檢測到RIBE的存在。RIBE導(dǎo)致低劑量輻射的健康風(fēng)險(xiǎn)高于理論預(yù)期值，導(dǎo)致放射治療后照射區(qū)域外原發(fā)性（輻射誘導(dǎo)）“二次”癌癥的發(fā)生。相比于二維培養(yǎng)細(xì)胞模型，動(dòng)物模型和人工構(gòu)建皮膚組織模型中的RIBE更加接近人體內(nèi)的復(fù)雜生長環(huán)境，傳遞表現(xiàn)出很大的不同。該研究主要對活體動(dòng)物和人工構(gòu)建皮膚組織的RIBE研究進(jìn)展進(jìn)行綜述，對于研究RIBE的傳遞和機(jī)制具有重要的意義。

輻射風(fēng)險(xiǎn)；輻射旁效應(yīng)；活體動(dòng)物和人工構(gòu)建皮膚組織

輻射旁效應(yīng)（radiation-induced bytander effect，RIBE）是輻射發(fā)生后，受輻射細(xì)胞釋放出損傷信號(hào)，導(dǎo)致未受輻射的細(xì)胞表現(xiàn)出類似的生物學(xué)現(xiàn)象。RIBE損傷因子的釋放和傳遞主要通過兩種方式：釋放可溶性信號(hào)分子［1-2］和細(xì)胞間隙連接（gap junction intercellular communication，GJIC）［3］介導(dǎo)的細(xì)胞間信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)。目前RIBE主要在二維尺度培養(yǎng)的細(xì)胞模型中進(jìn)行，二維細(xì)胞模型作為一個(gè)單層、簡化的培養(yǎng)系統(tǒng)，細(xì)胞在其中的生理狀態(tài)與響應(yīng)外界刺激能力均與體內(nèi)立體、三維的狀態(tài)存在較大差異。已有的研究［4］表明，三維組織模型和動(dòng)物模型中的旁效應(yīng)傳遞與二維培養(yǎng)細(xì)胞模型有很大不同。因此發(fā)展組織水平甚至個(gè)體水平上RIBE研究顯得尤為重要?，F(xiàn)就RIBE在這兩個(gè)模型上的研究進(jìn)展綜述如下。

1 基于動(dòng)物個(gè)體水平的旁效應(yīng)研究

Brooks et al［5］首次用α粒子照射中國倉鼠肝臟的部分區(qū)域，發(fā)現(xiàn)肝臟組織所有細(xì)胞的染色體畸變率均顯著上升，所有細(xì)胞面臨染色體損傷的風(fēng)險(xiǎn)。此外，移植受照射雄性小鼠的骨髓細(xì)胞至未照射雌鼠體內(nèi)，在雌鼠的造血干細(xì)胞后代中觀察到染色體不穩(wěn)定性［6］。在經(jīng)過意外輻射事件［7］或高劑量放射治療［8］的情況下，從患者的血漿中發(fā)現(xiàn)致染色體斷裂的活動(dòng)。研究［9-10］顯示嚙齒類動(dòng)物、魚類等均能觀察到RIBE。

1.1 嚙齒類動(dòng)物在RIBE中的研究到目前為止，動(dòng)物個(gè)體水平上的RIBE研究還不夠全面，主要采用的模式動(dòng)物是小鼠和大鼠。

1.1.1 輻射肺部引起的旁效應(yīng)研究 Khan et al［9］發(fā)現(xiàn)利用60Co γ射線20 Gy照射大鼠肺的一部分區(qū)域，誘發(fā)肺的其它未照射區(qū)域產(chǎn)生RIBE。照射30%或70%的肺，肺的未照射區(qū)域微核率顯著上升。未照射區(qū)域的DNA損傷能被超氧化物歧化酶（superoxide dismutase，SOD）和N-硝基-L-精氨酸甲酯鹽酸鹽抑制，表明氧化性自由基（reactive oxygen species，ROS）和一氧化氮（nitric oxide，NO）誘導(dǎo)未照射區(qū)域的DNA損傷。SOD類似化合物Eukarion-189，能有效地通過抗炎癥作用保護(hù)照射和未照射肺的DNA損傷。Calveley et al［11］利用60Co γ射線18 Gy照射大鼠部分肺臟，在肺的未照射區(qū)，DNA損傷呈周期性變化，且與免疫功能改變相關(guān)。整個(gè)肺組織的白介素-1α、白介素-1、白介素-6、腫瘤壞死因子-α、轉(zhuǎn)化生長因子-β1 mRNA表達(dá)水平發(fā)生周期性改變和巨噬細(xì)胞顯著激活。由此表明，照射部分肺臟時(shí)引起的RIBE與ROS、NO和免疫功能變化等有關(guān)。

1.1.2 輻射皮膚引起的旁效應(yīng)研究 Koturbash et al［12］用1 Gy X射線照射小鼠皮膚的部分區(qū)域，對比全身照射、半身照射小鼠的皮膚，6、96 h后檢測DNA雙鏈斷裂（double strand break，DSB），發(fā)現(xiàn)在96 h與對照小鼠比較未有顯著性變化，表明在照射后96 h，DNA損傷已得到完全修復(fù)；但在照射后6 h全身照射和半身照射的小鼠皮膚中均檢測到DSB顯著增加，其中半身輻射最顯著的區(qū)域是距離照射區(qū)大于0.7 cm的皮膚；研究中還發(fā)現(xiàn)半身照射小鼠在照射6、96 h后都能檢測到Rad51蛋白表達(dá)上調(diào)，這也從另一方面證明了在照射后的96 h半身照射小鼠的旁區(qū)皮膚組織一直在進(jìn)行DNA損傷修復(fù)。照射后6、96 h，在未受照射的皮膚中發(fā)現(xiàn)參與轉(zhuǎn)錄沉默的DNA甲基轉(zhuǎn)移酶1、甲基CpG結(jié)合蛋白2、甲基CpG結(jié)合結(jié)構(gòu)域蛋白2顯著增加，說明表觀遺傳學(xué)因素參與RIBE過程。

Mancuso et al［13］發(fā)現(xiàn)了旁效應(yīng)在未照射的組織中誘導(dǎo)腫瘤的發(fā)生，研究采用的小鼠模型是Ptch1+／-，新生小鼠事先用環(huán)狀鉛護(hù)罩罩住頭部，X射線3 Gy照射小鼠后半部分皮膚；結(jié)果顯示，與未經(jīng)過照射的小鼠比較，半身照射的小鼠形成神經(jīng)管細(xì)胞瘤的概率增加了39%。經(jīng)過GJIC抑制劑組織纖維蛋白溶酶原激活劑的處理，γ-H2AX（DSB的一種標(biāo)記蛋白）的形成和細(xì)胞凋亡率顯著下降，表明GJIC參與到旁效應(yīng)的傳遞中。雖然相同X射線處理不同類型的小鼠，在未受照射的部分組織均能檢測到短期的旁效應(yīng)，但是其中只有部分雜合動(dòng)物的腦部等有致癌性，說明檢測終點(diǎn)依賴于動(dòng)物的基因型。這就解釋了在放射治療后為什么很多患者的未照射組織短期檢測終點(diǎn)呈現(xiàn)各種變化，而二次癌癥的發(fā)病率很低。

1.1.3 輻射腦部引起的旁效應(yīng)研究 自從腦部腫瘤成為成年人最常見的癌癥后，腦部放射成為最常見的治療手段。研究表明腦部局部照射能導(dǎo)致表觀遺傳學(xué)的改變和調(diào)節(jié)遠(yuǎn)距離組織如脾臟、睪丸、皮膚等的基因表達(dá)。Koturbash et al［14］用20 Gy X射線照射大鼠腦部，照射后24 h和7個(gè)月取脾臟，發(fā)現(xiàn)脾臟發(fā)生了顯著的表觀遺傳學(xué)變化，如DNA低甲基化、組蛋白甲基化和DNA甲基轉(zhuǎn)移酶水平改變、非編碼RNA分子（miRNAs）上調(diào)等。這些分子水平上的變化甚至能一直維持在照射后7個(gè)月。局部腦部照射對不同性別的小鼠均能引起不同程度的脾臟miRNAs變化，性別差異導(dǎo)致的變化可能與Dicer酶增加的時(shí)間點(diǎn)有關(guān)，這通過切除小鼠性腺后Dicer酶表達(dá)模式與完整小鼠相比有差異所證實(shí)。Jan et al［15］也用20 Gy X射線照射大鼠腦部，在未照射的生殖器官如睪丸組織發(fā)生明顯的DNA損傷和DNA甲基化的變化。Ilnytskyy et al［16］發(fā)現(xiàn)用0.5 Gy X射線照射小鼠腦部，除照射后6 h發(fā)生皮膚的甲基化改變，直至14 d脾臟都是低甲基化。通過以上研究顯示，對腦部進(jìn)行照射，無論劑量大小都可引起部分組織如脾臟、睪丸、皮膚等旁效應(yīng)的產(chǎn)生，導(dǎo)致DNA和染色體的損傷，甚至表觀遺傳學(xué)的改變。

1.1.4 骨髓移植系統(tǒng)中RIBE的研究 骨髓移植系統(tǒng)已被用來研究RIBE。Watson et al［6］用0.5 Gy252Cf中子照射雄性小鼠骨髓細(xì)胞與未照射骨髓細(xì)胞混合移植到雌性小鼠，隨后在13個(gè)月時(shí)間內(nèi)，未照射的造血干細(xì)胞后代中發(fā)現(xiàn)遺傳不穩(wěn)定性如染色體易位和缺失，在受體小鼠骨髓中也發(fā)現(xiàn)了顯著的染色體畸變。由此顯示RIBE也存在于造血系統(tǒng)中。

1.2 魚類在RIBE中的研究RIBE不僅在脊椎動(dòng)物中被證明，在魚類中也有所發(fā)現(xiàn)。研究［10，17］表明用0.5 Gy X射線照射斑馬魚，將未照射的斑馬魚和照射的斑馬魚放在同一容器中2 h，未照射的斑馬魚體內(nèi)細(xì)胞死亡增加。提取未照射斑馬魚的皮膚、鰓、脾臟、腎臟、鰭進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)，所獲培養(yǎng)基能使報(bào)告細(xì)胞HPV-G的克隆存活率顯著下降，其中鰓和鰭提取組的效應(yīng)最為明顯。

Yum et al［18］也證明了斑馬魚的RIBE。8個(gè)α粒子照射的斑馬魚胚胎與8個(gè)未照射的斑馬魚胚胎在瓊脂糖平板上共培養(yǎng)，通過吖啶橙染色發(fā)現(xiàn)兩種胚胎中都觀察到細(xì)胞死亡信號(hào)明顯增加。此發(fā)現(xiàn)證明RIBE可在斑馬魚胚胎間產(chǎn)生。Choi et al［19］研究α粒子也證明了上述結(jié)論，并且此旁效應(yīng)的產(chǎn)生與所用劑量無直接關(guān)系；此外，還證實(shí)釋放到水中的分子信號(hào)在RIBE中起到一定作用。

1.3 動(dòng)物個(gè)體RIBE機(jī)制方面的研究目前研究［1，3］顯示體外RIBE機(jī)制研究主要是以下兩個(gè)方面：一是受照射細(xì)胞釋放信號(hào)分子如ROS、NO等對未受照射細(xì)胞發(fā)生作用；二是通過GJIC介導(dǎo)或傳導(dǎo)這一過程。研究［20］顯示部分動(dòng)物個(gè)體內(nèi)旁效應(yīng)機(jī)制研究也主要通過以上兩個(gè)方面。照射小鼠部分肺臟能調(diào)節(jié)ROS、NO和炎癥因子的變化來誘導(dǎo)未照射肺的DNA損傷等［9］；照射小鼠部分皮膚能導(dǎo)致未照射皮膚發(fā)生DSB和DNA甲基化的變化，且GJIC在旁效應(yīng)的傳遞中起著重要的作用［12-13］；Mancuso et al［21］研究長期輻射效應(yīng)傳遞的機(jī)制，發(fā)現(xiàn)GJIC和其主要組成蛋白connexin43與小鼠潛在的致癌中樞神經(jīng)系統(tǒng)的信號(hào)傳遞有關(guān)，GJIC在旁效應(yīng)信號(hào)傳遞到未照射腦部的過程中到至關(guān)重要的作用。Mancuso et al［22］進(jìn)一步用輻射敏感性小鼠模型研究GJIC和connexin43在RIBE中的作用，檢測未照射區(qū)域皮膚的終點(diǎn)如DNA損傷和細(xì)胞凋亡，說明GJIC在RIBE信號(hào)傳遞中的重要作用。相關(guān)研究［14-15］顯示，表觀遺傳學(xué)機(jī)制參與到輻射誘發(fā)的體內(nèi)旁效應(yīng)。照射小鼠或者大鼠腦部能通過中樞系統(tǒng)的傳遞導(dǎo)致脾臟發(fā)生表觀遺傳學(xué)的改變（如低甲基化、DNMT的變化等）［14］以及細(xì)胞增殖、凋亡和p53蛋白的變化［15］，也能導(dǎo)致睪丸和皮膚的DNA損傷和表觀遺傳學(xué)的變化［16］；照射斑馬魚的研究［10，17］顯示，被照射的斑馬魚能釋放分子到水中影響未照射斑馬魚的部分組織發(fā)生存活率下降等，而具體的有哪些分子則研究較少［18-19］。雖然輻射誘發(fā)動(dòng)物個(gè)體旁效應(yīng)研究已取得一定的進(jìn)展，但其確切的機(jī)制尚不完全清楚。

2 人工構(gòu)建皮膚組織模型中的旁效應(yīng)研究

在動(dòng)物個(gè)體上研究RIBE已取得相當(dāng)多的成果，但是由于動(dòng)物個(gè)體內(nèi)部環(huán)境相對復(fù)雜，且有些實(shí)驗(yàn)室還不具備動(dòng)物飼養(yǎng)條件，機(jī)制方面的研究還不完善。為了更全面的研究旁效應(yīng)，有些研究人員采用三維組織模型研究RIBE，最廣泛使用的是人工構(gòu)建皮膚組織。在人工構(gòu)建皮膚組織模型中，細(xì)胞間信號(hào)同樣可通過GJIC［3］和擴(kuò)散的方式［23］傳導(dǎo)。

2.1 人工構(gòu)建皮膚組織中的RIBE研究人工構(gòu)建皮膚組織是指利用細(xì)胞生物學(xué)和工程學(xué)原理與技術(shù)將種子細(xì)胞、細(xì)胞外基質(zhì)與適當(dāng)?shù)闹Ъ懿牧系认嘟Y(jié)合構(gòu)建出的皮膚替代物。目前已有商品化的皮膚組織替代物如Apligraf、EpiDerm、EpiAirway、REF等。

Belyakov et al［24］首次運(yùn)用體外人工構(gòu)建的皮膚組織（EPI-200和EFT-300）來研究RIBE在組織水平上的傳導(dǎo)，利用微束裝置，僅照射皮膚組織中100 μm厚的層，檢測此層兩側(cè)不同距離處的遺傳損傷。結(jié)果表明，在該層外側(cè)1 mm以內(nèi)區(qū)域的細(xì)胞中，凋亡和微核發(fā)生率顯著上升（分別為對照組的2.8、1.7倍），但隨著距離增大，呈下降趨勢。Sedelnikova et al［25］利用相同的研究模型，檢測到輻射片層40 μm組織中DSB的發(fā)生，受輻射層中DSB陽性細(xì)胞率在輻射30 min后達(dá)到峰值，而附近（未受照射）片層中DSB陽性細(xì)胞率于輻射后12～48 h達(dá)到峰值，48 h后到第7天都呈下降趨勢。由此表明照射人工構(gòu)建皮膚組織，未照射區(qū)域的旁效應(yīng)與距離照射區(qū)的遠(yuǎn)近有關(guān)，且會(huì)發(fā)生凋亡和DSB等，DSB可在一段時(shí)間內(nèi)被修復(fù)。

2.2 人工構(gòu)建皮膚組織在RIBE機(jī)制研究中的應(yīng)用由于組織具有更加復(fù)雜的生理結(jié)構(gòu)，因此其內(nèi)在機(jī)制也更為復(fù)雜［26-27］。研究已證實(shí)三維組織中GJIC、ROS、NO、轉(zhuǎn)化生長因子-β1等因子同樣參與了RIBE傳導(dǎo)。Kovalchuk et al［28］運(yùn)用EpiAirway組織模型研究發(fā)現(xiàn)電離輻射誘導(dǎo)旁組織中miRNA的表達(dá)上調(diào)，進(jìn)一步導(dǎo)致DNA低甲基化、周期改變及凋亡率增加。miR-17家族表達(dá)上調(diào)導(dǎo)致細(xì)胞周期和抑癌基因相關(guān)的腺病毒E2啟動(dòng)子結(jié)合因子1和視網(wǎng)膜母細(xì)胞瘤基因1的水平下調(diào)，說明組織旁區(qū)的增殖發(fā)生變化；miR-29家族表達(dá)水平的上調(diào)導(dǎo)致DNA甲基轉(zhuǎn)移酶3a和髓細(xì)胞白血病基因1表達(dá)水平的下降，影響了DNA甲基化和細(xì)胞凋亡；miR-16表達(dá)水平的改變導(dǎo)致B細(xì)胞淋巴瘤／白血病-2水平的變化，表明細(xì)胞凋亡發(fā)生了變化。由此表明部分組織被照射后，NO、轉(zhuǎn)化生長因子-β1等信號(hào)分子的傳遞，導(dǎo)致旁組織的細(xì)胞凋亡、周期調(diào)控和表觀遺傳學(xué)都可能發(fā)生了變化。

3 結(jié)語

到目前為止，在體內(nèi)研究RIBE的證據(jù)很有限，還需要進(jìn)一步了解損傷信號(hào)是如何傳遞到旁細(xì)胞或旁組織，及如何引起大范圍有效的反應(yīng)，從而評價(jià)RIBE與輻射有關(guān)的癌癥風(fēng)險(xiǎn)的不確定性。近年來在3D組織和動(dòng)物中關(guān)于RIBE的研究越來越多，愈來愈顯示其在輻射研究中的重要性。RIBE是在高低劑量下發(fā)生的現(xiàn)象，其實(shí)際意義體現(xiàn)在對癌癥的危險(xiǎn)評價(jià)及腫瘤放療計(jì)劃的影響。3D組織和動(dòng)物模型更接近人體內(nèi)的復(fù)雜生長環(huán)境，對于研究RIBE的傳遞和機(jī)制具有重要的意義。

［1］ Zhou H，Ivanov V N，Lien Y C，et al.Mitochondrial function and nuclear factor-κB-mediated signaling in radiation-induced bystander effects［J］.Cancer Res，2008，68（7）：2233-40.

［2］ Shao C，F(xiàn)olkard M，Prise K M.Role of TGF-β1 and nitric oxide in the bystander response of irradiated glioma cells［J］.Oncogene，2008，27（4）：434-40.

［3］ Azzam E I，de Toledo S M，Little J B.Direct evidence for the participation of gap junction-mediated intercellular communication in the transmission of damage signals from alpha-particle irradiated to nonirradiated cells［J］.Proc Natl Acad Sci U S A，2001，98（2）：473-8.

［4］ Persaud R，Zhou H，Baker S E，et al.Assessment of low linear energy transfer radiation-induced bystander mutagenesis in a threedimensional culture model［J］.Cancer Res，2005，65（21）：9876 -82.

［5］ Brooks A L，Retherford J C，McClellan R O.Effect of 239PuO2particle number and size on the frequency and distribution of chromosome aberrations in the liver of the Chinese hamster［J］.Radiat Res，1974，59（3）：693-709.

［6］ Watson G E，Lorimore S A，Macdonald D A，et al.Chromosomal instability in unirradiated cells induced in vivo by a bystander effect of ionizing radiation［J］.Cancer Res，2000，60（20）：5608 -11.

［7］ Marozik P，Mothersill C，Seymour C B，et al.Bystander effects induced by serum from survivors of the Chernobyl accident［J］.Exp Hematol，2007，35（4 Suppl 1）：55-63.

［8］ Hollowell J G Jr，Littlefield L G.Chromosome damage induced by plasma of x-rayed patients：an indirect effect of x-ray［J］.Proc Soc Exp Biol Med，1968，129（1）：240-4.

［9］ Khan M A，Hill R P，Van Dyk J.Partial volume rat lung irradiation：an evaluation of early DNA damage［J］.Int J Radiat Oncol Biol Phys，1998，40（2）：467-76.

［10］Mothersill C，Bucking C，Smith R W.Communication of radiation-induced stress or bystander signals between fish in vivo［J］.Environ Sci Technol，2006，40（21）：6859-64.

［11］Calveley V L，Jelveh S，Langan A，et al.Genistein can mitigate the effect of radiation on rat lung tissue［J］.Radiat Res，2010，173（5）：602-11.

［12］Koturbash I，Rugo R E，Hendricks C A，et al.Irradiation induces DNA damage and modulates epigenetic effectors in distant bystander tissue in vivo［J］.Oncogene，2006，25（31）：4267-75.

［13］Mancuso M，Pasquali E，Leonardi S，et al.Oncogenic bystander radiation effects in Patched heterozygous mouse cerebellum［J］.Proc Nat Acad Sci U S A，2008，105（34）：12445-50.

［14］Koturbash I，Zemp F J，Kutanzi K，et al.Sex-specific microRNAome deregulation in the shielded bystander spleen of cranially exposed mice［J］.Cell Cycle，2008，7（11）：1658-67.

［15］Tamminga J，Koturbash I，Baker M，et al.Paternal cranial irradiation induces distant bystander DNA damage in the germline and leads to epigenetic alterations in the offspring［J］.Cell Cycle，2008，7（9）：1238-45.

［16］Ilnytskyy Y，Koturbash I，Kovalchuk O.Radiation-induced bystander effects in vivo are epigenetically regulated in a tissue-specific manner［J］.Environ Mol Mutagen，2009，50（2）：105-13.

［17］Mothersill C，Smith R W，Agnihotri N，et al.Characterization of a radiation-induced stress response communicated in vivo between zebrafish［J］.Environ Sci Technol，2007，41（9）：3382-7.

［18］Yum E H，Choi V W，Nikezic D，et al.Alphaparticle-induced bystander effects between zebrafish embryos in vivo［J］.Radiat Meas，2009，44（9-10）：1077-80.

［19］Choi V W，Cheung A L，Cheng S H，et al.Hormetic effect induced by alpha-particle-induced stress communicated in vivo between zebrafish embryos［J］.Environ Sci Technol，2012，46（21）：11678 -83.

［20］Wang H，Yu K N，Hou J，et al.Radiation-induced bystander effect：early process and rapid assessment［J］.Cancer lett，2015，356（1）：137-44.

［21］Mancuso M，Pasquali E，Leonardi S，et al.Role of connexin43 and ATP in long-range bystander radiation damage and oncogenesis in vivo［J］.Oncogene，2011，30（45）：4601-8.

［22］Mancuso M，Leonardi S，Giardullo P，et al.Oncogenic radiation abscopal effects in vivo：interrogating mouse skin［J］.Int J Radiat Oncol Biol Phys，2013，86（5）：993-9.

［23］Nagar S，Smith L E，Morgan W F.Characterization of a novel epigenetic effect of ionizing radiation：the death inducing effect［J］.Cancer Res，2003，63（2）：324-8.

［24］Belyakov O V，Mitchell S A，Parikh D，et al.Biological effects in unirradiated human tissue induced by radiation damage up to 1 mm away［J］.Proc Natl Acad Sci U S A，2005，102（40）：14203-8.

［25］Sedelnikova O A，Nakamura A，Kovalchuk O，et al.DNA double-strand breaks form in bystander cells after microbeam irradiation of three-dimensional human tissue models［J］.Cancer Res，2007，67（9）：4295-302.

［26］Hatzi V I，Laskaratou D A，Mavragani I V.Non-targeted radiation effects in vivo：a critical glance of the future in radiobiology［J］.Cancer Lett，2015，356（1）：34-42.

［27］Azzam E I，de Toledo S M，Little J B.Stress signaling from irradiated to non-irradiated cells［J］.Curr Cancer Drug Targets，2004，4（1）：53-64.

［28］Kovalchuk O，Zemp F J，F(xiàn)ilkowski J N，et al.MicroRNAome changes in bystander three-dimensional human tissue models suggest priming of apoptotic pathways［J］.Carcinogenesis，2010，31（10）：1882-8.

Q 691

A

1000-1492（2015）12-1847-04

時(shí)間：2015-11-18 10：12：35

http：／／www.cnki.net／KCMS／detail／34.1065.R.20151118.1012.070.html

2015-09-08接收

安徽省自然科學(xué)基金（編號(hào)：1408085QH161）

中科院合肥物質(zhì)科學(xué)研究院醫(yī)學(xué)物理與技術(shù)中心輻射生

物醫(yī)學(xué)研究室，合肥 230031

吳文青，女，碩士研究生；

聶莉莉，女，高級(jí)工程師，責(zé)任作者，E-mail：xiao433＠sina.com

*對本文具有同等貢獻(xiàn)