宋穎娉 宋立明
摘要:水稻是研究單子葉植物的模式作物,其落粒性的喪失是水稻被人工馴化的最為關(guān)鍵事件,近年來(lái)對(duì)水稻落粒性的研究取得了一系列進(jìn)展,4個(gè)控制落粒性基因/主效QTL已經(jīng)被克隆,并初步分析了相關(guān)基因的互作效應(yīng),為水稻人工馴化提供了重要依據(jù)。本文重點(diǎn)綜述了水稻落粒性的分子機(jī)制研究進(jìn)展,為水稻落粒性的遺傳網(wǎng)絡(luò)研究提供參考。
關(guān)鍵詞:水稻;落粒性;馴化;分子機(jī)制;雜草稻
中圖分類號(hào): S511.01 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A 文章編號(hào):1002-1302(2015)07-0088-03
一般將亞洲栽培稻分為秈稻(indica)和粳稻(japonica) 2個(gè)亞種。關(guān)于亞洲栽培稻(以下簡(jiǎn)稱栽培稻)的起源一直是一個(gè)困擾生物學(xué)家多年的難題,其中最主要的問(wèn)題就是栽培稻是在哪里何時(shí)被馴化成栽培稻的[1-3]、水稻是一次性還是多次性從不同的祖先人工馴化而來(lái)的。與野生稻相比,落粒性的減弱、種子休眠性的降低、更緊湊的株型、花序變大且數(shù)目增多及種子變大是栽培稻馴化的綜合特征。其中,落粒性的喪失是最重要的改變之一,這使得水稻成為易收獲的作物[4]。如今,一般粳稻較難脫粒,秈稻居中,而野生稻[包括普通野生稻(Oryza rufipogon)及尼瓦拉野生稻(Oryza nivara)]易落粒[5]。
生產(chǎn)上中等難度落粒的品種最受歡迎,因?yàn)檫@樣的品種對(duì)機(jī)械化操作最高效,也適用于手工收割和脫粒;容易落粒的品種,由于它們?cè)谑斋@中易引起減產(chǎn)而不受歡迎[6],所以在育種過(guò)程中,育種家傾向于選擇中等落粒性的品種[7]。水稻落粒性的研究對(duì)揭示水稻進(jìn)化機(jī)制及育種選擇具有重要意義,水稻離區(qū)(abscission zone)發(fā)育和籽粒脫落的機(jī)制一直是分子生物學(xué)研究的熱點(diǎn)之一。
1 水稻籽粒脫落的生理基礎(chǔ)
水稻種子的落粒性受護(hù)穎和枝梗之間離層(abscission layer)所控制[8],離層在水稻抽穗前16~20 d就已形成發(fā)生。與周圍枝梗和穎片細(xì)胞(大型厚壁細(xì)胞)組成不同,離層由 1~2 層小而圓的薄壁細(xì)胞組成[9]。當(dāng)種子成熟時(shí),離層細(xì)胞降解,使得水稻谷粒很容易地從母體植株上脫離下來(lái)。離層細(xì)胞可對(duì)激素產(chǎn)生響應(yīng),乙烯促進(jìn)離層細(xì)胞脫離,而生長(zhǎng)素則抑制脫離過(guò)程[10]。
不同的水稻品種具有不同的離層形態(tài),這是導(dǎo)致水稻品種間落粒性存在差異的根本原因。野生稻的護(hù)穎和花梗間的接合處一般會(huì)形成離層,當(dāng)中間薄壁細(xì)胞細(xì)胞壁發(fā)生降解時(shí),成熟籽粒就會(huì)自由脫落,以保證種群繁殖[10]。而栽培稻的離層不完全形成,籽粒成熟后不會(huì)脫落,因而成熟種子可以得到有效收獲。
2 水稻落粒性基因的發(fā)掘
水稻的落粒性是由多基因控制或由少數(shù)主效基因和多個(gè)微效基因共同控制的數(shù)量性狀。利用各種遺傳群體及其連鎖圖譜,許多學(xué)者對(duì)控制落粒性QTL 進(jìn)行了定位,檢測(cè)到了與落粒性相關(guān)的多個(gè)QTL。其中,在第1、3、4 染色體上檢測(cè)到的QTL 的頻率較高。這些控制落粒性的QTL 在野生稻(一年生或多年生)、雜草稻和栽培稻中都能檢測(cè)到[2,5,11-14]。
同時(shí),遺傳學(xué)家也在積極尋找和創(chuàng)制水稻落粒性相關(guān)突變體,Ji 等通過(guò)使用化學(xué)誘變的方法在不落粒的粳稻品種Hwacheong中獲得了1個(gè)易落粒突變體Hsh,發(fā)現(xiàn)Hsh 具有與尼瓦拉野生稻(O. nivara)類似發(fā)育良好的離層[15]。韓斌研究組使用一種巧妙的方法來(lái)發(fā)現(xiàn)新的水稻落粒調(diào)控基因,即將野生稻W(wǎng)1943的第4號(hào)染色體導(dǎo)入到栽培稻廣陸矮4號(hào)背景下,構(gòu)建了1個(gè)包含已知落?;騍H4和qSH1的材料——SL4,該材料表現(xiàn)出極易落粒的性狀。進(jìn)一步對(duì)SL4進(jìn)行射線誘變,篩選到2個(gè)完全不落粒的突變體shat1和shat2(與SH4等位),將其與已知的落粒調(diào)控基因聯(lián)系起來(lái),為水稻落粒性研究開啟了新視野[16-17]。
3 水稻落粒性的分子生物學(xué)研究
到目前為止,在水稻中已經(jīng)克隆了4個(gè)控制落粒性的基因/主效QTL,即SH4(SHA1、shat2)、qSH1、OsCPL1(sh-h)及SHAT1(SHATTERING ABORTION1)[4-6,12,17]。
Li 等利用秈稻品種和普通野生稻作親本得到F2 群體,對(duì)水稻中的落粒性狀進(jìn)行QTL遺傳分析,在水稻第4 染色體發(fā)現(xiàn)了1個(gè)貢獻(xiàn)率為69%的主效QTL 位點(diǎn),命名為SH4,該基因編碼1個(gè)與Myb3同源的未知功能轉(zhuǎn)錄因子,該基因第1個(gè)外顯子中的1個(gè)核苷酸替換(T替換了G)導(dǎo)致了在預(yù)測(cè)的Myb3 DNA 結(jié)合域上1個(gè)天冬酰氨替換賴氨酸,使得離層不能正常發(fā)育形成,從而使得表型從落粒變?yōu)榱瞬宦淞4]。SHA1(shattering1)是SH4的等位基因,通過(guò)對(duì)96份粳稻和112份秈稻的檢測(cè),發(fā)現(xiàn)了它們均含有不落粒等位基因sha1,但在25 份野生的材料中均為野生型的SHA1[12]。后續(xù)研究證明對(duì)sh4的選擇是一個(gè)獨(dú)立的事件,即通過(guò)對(duì)該基因的一次選擇而保留到水稻基因組上[18-19],支持了栽培稻不落粒的選擇早于秈粳分化的理論。
盡管秈稻與粳稻均含有相同的SH4基因型,但這2個(gè)水稻亞種的落粒性卻普遍有著顯著的差別,通常粳稻難落粒而秈稻較易落粒,這暗示了水稻秈粳亞種間還存在其他主要控制落粒性的基因,qSH1就是其中的1個(gè)主效基因。qSH1基因編碼1個(gè)BELl型同源盒基因,粳稻品種Nipponbare(日本晴)中qSH1基因5′調(diào)控區(qū)上的1個(gè)SNP(single nucleotide polymorphism)可引起離層無(wú)法形成,進(jìn)而導(dǎo)致其落粒性喪失,qSH1能解釋易落粒的秈稻品種Kasalath 與日本晴之間近70%的表型變異[5]。
Ji等從Hwacheong中獲得易落粒突變體Hsh,命名為sh-h。sh-h基因位于水稻第7染色體,編碼1個(gè)水稻carboxy-terminal domain (CTD) phosphatase類蛋白(OsCPL1),基因突變后功能失活促進(jìn)離層的形成,導(dǎo)致易落粒。CTD磷酸酯酶在細(xì)胞分化中起重要作用,但是sh-h基因的功能及其與SH4、qSH1的互作機(jī)制還有待于進(jìn)一步研究。
雖然SH4、qSH1在水稻的人工馴化過(guò)程中扮演著重要的角色,但是這2個(gè)基因的互作效應(yīng)一直未能有較好的解釋。韓斌課題組在一個(gè)包含已知落?;騍H4和qSH1并表現(xiàn)出極易落粒的材料SL4誘變突變體中篩選獲得1個(gè)極難落粒的材料shat1,SHAT1是一個(gè)未被人工選擇的基因,類似于小麥的Q基因,SHAT1編碼1個(gè)APETALA2轉(zhuǎn)錄因子[20],參與離層的發(fā)育,是落粒性必需基因。通過(guò)采用原位雜交等方法,研究人員第一次闡述了SHAT1、SH4和qSH1這3個(gè)基因的遺傳關(guān)系:SHAT1 在離層的表達(dá)受SH4 正向調(diào)節(jié),反過(guò)來(lái)SHAT1也起到維持SH4在離層表達(dá)的作用,qSH1作用于SH4和SHAT1下游,(還有可能有其他基因的參與)維持SHAT1和SH4在離層的持續(xù)表達(dá),從而促進(jìn)離層的形成(圖1)[17]。
4 總結(jié)與展望
作物馴化是一個(gè)復(fù)雜而且漫長(zhǎng)的過(guò)程[21-23],可以說(shuō)作物的馴化史就是人類文明的進(jìn)化史。隨著考古的發(fā)現(xiàn)以及分子生物學(xué)的發(fā)展[23-25],越來(lái)越多關(guān)于水稻馴化的證據(jù)被發(fā)掘出來(lái),最新研究已基本證明:栽培稻為單次起源[19],之后產(chǎn)生了秈粳分化,即野生稻首先在中國(guó)南方被馴化產(chǎn)生了粳稻,隨后往北逐漸擴(kuò)散。另一支則往南擴(kuò)散,進(jìn)入了東南亞,在當(dāng)?shù)嘏c野生稻種雜交,經(jīng)歷了第二次馴化,產(chǎn)生了秈稻[26]。
20世紀(jì)以來(lái),專業(yè)育種家的人工選擇與有目的的基因重組加速了水稻進(jìn)化的歷史,特別是近30年來(lái),隨著科技的日新月異,以及在糧食危機(jī)的壓力下,不同品種甚至亞種間的優(yōu)異基因?qū)崿F(xiàn)了高速的重組。然而,人們?cè)谟心康牡暮Y選優(yōu)良基因的同時(shí),卻導(dǎo)致了水稻基因型的單一化,當(dāng)大規(guī)模的病害(或其他災(zāi)害)來(lái)臨時(shí),水稻變得十分脆弱。例如,隨著勞動(dòng)力的轉(zhuǎn)移和科技的快速發(fā)展,輕簡(jiǎn)化的栽培方式興起,導(dǎo)致易落粒的雜草稻繁殖加速,對(duì)水稻的生產(chǎn)帶來(lái)諸多不利影響[27-28]??茖W(xué)研究進(jìn)一步對(duì)易落粒的雜草稻序列分析表明,在SH4位點(diǎn),它們均含有與栽培稻相似的難落?;蛐停╯h4)。這也帶來(lái)了一個(gè)新問(wèn)題:雜草稻具有與普通野生稻→亞洲栽培稻不相同的馴化歷史?或者是除了目前已知的控制落粒性的基因/主效QTL外,還存在其他的主效基因[29-30]?
在雙子葉模式植物——擬南芥中,已鑒定出多個(gè)與離區(qū)發(fā)育和器官脫落相關(guān)的基因,并已初步建立了擬南芥花器官脫落的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)[31]。水稻作為單子葉植物特別是禾本科作物的模式作物,到目前為止,只有4個(gè)對(duì)水稻離層發(fā)育所必需的落粒性基因被克隆。但是,它們之間的相互作用以及特別是OsCPL1基因的功能有待于深入研究,相關(guān)研究的匱乏難以解釋水稻落粒性的多樣性及復(fù)雜性。
最近,一個(gè)控制野生稻散穗的馴化基因SPR3(OsLG1)被克隆,SPR3編碼1個(gè)SQUAMOSA 啟動(dòng)子結(jié)合蛋白(SBP)。研究發(fā)現(xiàn)該基因除了能夠控制水稻的穗形外,還對(duì)落粒性有較大影響[32-33],這也更進(jìn)一步說(shuō)明水稻馴化是一個(gè)綜合的過(guò)程,同時(shí)也預(yù)示著花器官發(fā)育相關(guān)基因?qū)λ镜穆淞P砸财鹬{(diào)控作用。更多落粒性基因的發(fā)掘?qū)Ω玫亓私馑韭淞P缘姆肿踊A(chǔ)及現(xiàn)代育種具有重要的意義。
參考文獻(xiàn):
[1]Sang T,Ge S. The puzzle of rice domestication[J]. Journal of Integrative Plant Biology,2007,49:760-768.
[2]金 亮,盧 艷,包勁松. 水稻落粒性基因定位與克隆研究進(jìn)展[J]. 分子植物育種,2009,7(2):393-397.
[3]區(qū)樹俊,汪鴻儒,儲(chǔ)成才. 亞洲栽培稻主要馴化性狀研究進(jìn)展[J]. 遺傳,2012,34(11):1379-1389.
[4]Li C B,Zhou A L,Sang T. Rice domestication by reducing shattering[J]. Science,2006,311(5769):1936-1939.
[5]Konishi S,Izawa T,Lin S Y,et al. An SNP caused loss of seed shattering during rice domestication[J]. Science,2006,312(5778):1392-1396.
[6]Ji H,Kim S R,Kim Y H,et al. Inactivation of the CTD phosphatase-like gene OsCPL1 enhances the development of the abscission layer and seed shattering in rice[J]. The Plant Journal,2010,61(1):96-106.
[7]葉興鋒,徐林峰,施 聰,等. 中等落粒性的改良型超級(jí)稻 “協(xié)青早 A/M9308”應(yīng)用價(jià)值評(píng)價(jià)[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2012,28(21):131-134.
[8]Patterson S E. Cutting loose. Abscission and dehiscence in Arabidopsis[J]. Plant Physiology,2001,126(2):494-500.
[9]Jin I D. On the formation and development of abscission layer in rice plants,Oryza sativa L.[J]. Jap J Crop Sci,1986,55:451-457.
[10]Roberts J A,Elliott K A,Gonzalez-Carranza Z H. Abscission,dehiscence,and other cell separation processes[J]. Annual Review of Plant Biology,2002,53:131-158.
[11]Cai H W,Morishima H. Genomic regions affecting seed shattering and seed dormancy in rice[J]. Theoretical and Applied Genetics,2000,100(6):840-846.
[12]Lin Z W,Griffith M E,Li X R,et al. Origin of seed shattering in rice (Oryza sativa L.)[J]. Planta,2007,226(1):11-20.
[13]Qin Y,Kim S M,Zhao X H,et al. Identification for quantitative trait loci controlling grain shattering in rice[J]. Genes & Genomics,2010,32(2):173-180.
[14]Sun J,Qian Q,Ma D R,et al. Introgression and selection shaping the genome and adaptive loci of weedy rice in northern China[J]. The New Phytologist,2013,197(1):290-299.
[15]Ji H S,Chu S H,Jiang W Z,et al. Characterization and mapping of a shattering mutant in rice that corresponds to a block of domestication genes[J]. Genetics,2006,173(2):995-1005.
[16]Hofmann N R. SHAT1,A new player in seed shattering of rice[J]. The Plant Cell,2012,24(3):839.
[17]Zhou Y,Lu D F,Li C Y,et al. Genetic control of seed shattering in rice by the APETALA2 transcription factor shattering abortionl[J]. The Plant Cell,2012,24(3):1034-1048.
[18]Zhang L B,Zhu Q H,Wu Z Q,et al. Selection on grain shattering genes and rates of rice domestication[J]. The New Phytologist,2009,184(3):708-720.
[19]Molina J,Sikora M,Garud N,et al. Molecular evidence for a single evolutionary origin of domesticated rice[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2011,108(20):8351-8356.
[20]Simons K J,F(xiàn)ellers J P,Trick H N,et al. Molecular characterization of the major wheat domestication gene Q[J]. Genetics,2006,172(1):547-555.
[21]Doebley J F,Gaut B S,Smith B D. The molecular genetics of crop domestication[J]. Cell,2006,127(7):1309-1321.
[22]Vaughan D A,Lu B R,Tomooka N. The evolving story of rice evolution[J]. Plant Science,2008,174(4):394-408.
[23]Fuller D Q,Qin L,Zheng Y F,et al. The domestication process and domestication rate in rice:spikelet bases from the Lower Yangtze[J]. Science,2009,323(5921):1607-1610.
[24]Huang X H,Wei X H,Sang T,et al. Genome-wide association studies of 14 agronomic traits in rice landraces[J]. Nature Genetics,2010,42(11):961-967.
[25]樊龍江,桂毅杰,鄭云飛,等. 河姆渡古稻DNA提取及其序列分析[J]. 科學(xué)通報(bào),2011,56(增刊2):2398-2403.
[26]Huang X H,Kurata N,Wei X H,et al. A map of rice genome variation reveals the origin of cultivated rice[J]. Nature,2012,490(7421):497-501.
[27]戴偉民,宋小玲,吳 川,等. 江蘇省雜草稻危害情況的調(diào)研[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2009,25(3):712-714.
[28]梁帝允,強(qiáng) 勝. 我國(guó)雜草稻危害現(xiàn)狀及其防控對(duì)策[J]. 中國(guó)植保導(dǎo)刊,2011,31(3):21-24.
[29]Thurber C S,Reagon M,Gross B L,et al. Molecular evolution of shattering loci in U.S. weedy rice[J]. Molecular Ecology,2010,19(16):3271-3284.
[30]Zhu Y Q,Ellstrand N C,Lu B R. Sequence polymorphisms in wild,weedy,and cultivated rice suggest seed-shattering locus sh4 played a minor role in Asian rice domestication[J]. Ecology and Evolution,2012,2(9):2106-2113.
[31]王 翔,陳曉博,李愛(ài)麗,等. 植物器官脫落分子生物學(xué)研究進(jìn)展[J]. 作物學(xué)報(bào),2009,35(3):381-387.
[32]Luo J J,Hao W,Jin J,et al. Fine mapping of Spr3,a locus for spreading panicle from African cultivated rice (Oryza glaberrima Steud.)[J]. Molecular Plant,2008,1(5):830-838.
[33]Ishii T,Numaguchi K,Miura K,et al. OsLG1 regulates a closed panicle trait in domesticated rice[J]. Nature Genetics,2013,45(4):462-465.