楊先國(guó),谷陟欣,盧 捷,劉克明,黃 勝
(1.湖南中醫(yī)藥高等專科學(xué)校,湖南 株洲 412012;2.九芝堂股份有限公司,湖南 長(zhǎng)沙 410021; 3.湖南師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,湖南 長(zhǎng)沙 410081)
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4種紫珠屬藥用植物RAPD多態(tài)性分析
楊先國(guó)1,谷陟欣2,盧 捷2,劉克明3,黃 勝2
(1.湖南中醫(yī)藥高等??茖W(xué)校,湖南 株洲 412012;2.九芝堂股份有限公司,湖南 長(zhǎng)沙 410021; 3.湖南師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,湖南 長(zhǎng)沙 410081)
目的:運(yùn)用隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性技術(shù)探索4種紫珠屬藥用植物的遺傳多態(tài)性,為其種質(zhì)鑒定提供依據(jù)。 方法:采用試劑盒提取法提取裸花紫珠、廣東紫珠、大葉紫珠與杜虹花4種新鮮植物葉中的總DNA,采用經(jīng)過(guò)篩選的20條隨機(jī)引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增。結(jié)果:試劑盒可有效獲取4種紫珠植物的總DNA,擴(kuò)增得到條帶共152條,多態(tài)性條帶137條,多態(tài)率達(dá)到88.2%;聚類分析結(jié)果表明,4種紫珠供試材料共分為3類。結(jié)論:4種紫珠RAPD擴(kuò)增后的聚類分析結(jié)果與植物形態(tài)學(xué)觀察分類結(jié)果相一致,所得RAPD標(biāo)記可用于紫珠屬藥用植物的多態(tài)性研究,為開(kāi)發(fā)遺傳鑒定的分子標(biāo)記奠定基礎(chǔ)。
紫珠屬;基因組DNA;RAPD;多態(tài)性;聚類分析
紫珠屬植物(CallicarpaLinn)來(lái)源于馬鞭草科,我國(guó)紫珠屬植物有46種,主要分布于長(zhǎng)江以南的廣大地區(qū),如海南、廣東、廣西、云南、貴州、湖南、江西、福建等地。其中約有30多種可以作為藥用,入藥部位為莖葉或全株,其性平、味苦,歸肝、脾、肺經(jīng),具有活血止血、清熱解毒等功效,主要用于治療吐血、咳血、便血、崩漏、創(chuàng)傷出血等[1-2]。
紫珠作為一種重要的中藥資源,在我國(guó)被廣泛使用。對(duì)我國(guó)的中藥材地方標(biāo)準(zhǔn)中收載的紫珠品種進(jìn)行統(tǒng)計(jì)可知,我國(guó)湖南、廣東、廣西、江西、云南、河南以及山東7個(gè)省區(qū)的中藥材地方標(biāo)準(zhǔn)收載了近8種紫珠屬藥用植物,其中以裸花紫珠、廣東紫珠、大葉紫珠以及杜虹花為主,現(xiàn)已作為中成藥制劑的原料藥廣泛使用。由紫珠藥材制成的中成藥品種達(dá)20多種,其中裸花紫珠為九芝堂股份有限公司生產(chǎn)的裸花紫珠片的主要原料藥[3-4]。但在原料收集過(guò)程中,可能有紫珠屬的其他藥材混入到原料藥中,由于紫珠屬植物葉及枝均具有止血、解毒等功效,且原植物藥材性狀極其相似,在市場(chǎng)流通及臨床應(yīng)用過(guò)程中難以鑒別,因而常常相互混用。目前文獻(xiàn)研究主要集中在生藥學(xué)鑒定[5-6]、質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)研究方面[7-11],仍未從分子水平對(duì)常用紫珠屬藥材進(jìn)行鑒定。本研究采用RAPD分子標(biāo)記從DNA分子水平對(duì)四個(gè)紫珠品種展開(kāi)相關(guān)研究,為合理利用紫珠屬藥用植物資源、從DNA分子水平揭示四種紫珠屬藥用植物品種的親緣關(guān)系提供科學(xué)依據(jù)。
1.1 材料
裸花紫珠CallicarpanudifloraHooker & Amott,廣東紫珠callicarpakwangtungensisChun,大葉紫珠callicarpamacrophyllaVahl,杜虹花CallicarpaformosanaRolfe,由湖南中醫(yī)藥高等專科學(xué)校彭學(xué)著教授鑒定為真品。樣品來(lái)源及分類見(jiàn)表1,每種植物均取嫩葉提取基因組DNA,-20℃保存。
1.2 儀器
DYY-2C電泳儀(北京六一儀器廠),PCR儀MASTERCYCLER(德國(guó)Eppendorf),凝膠成像系統(tǒng)Tanon 1600R(上海天能),-80℃超低溫冰箱DW-HL538(中科美菱)。
1.3 試劑與引物
廣譜性植物總DNA提取試劑盒(HiPure Plant DNA Kits)購(gòu)自廣州Magen(美基)生物公司,2×Taq master Mix購(gòu)自康為世紀(jì),RAPD引物購(gòu)自上海生工公司產(chǎn)品(見(jiàn)表2)。其他試劑均為分析純。
表1 4種紫珠樣品來(lái)源及分類
表2 RAPD分析所用引物
2.1 紫珠植物組織DNA提取
采用Magen植物總DNA提取試劑盒標(biāo)示的使用方法進(jìn)行提取。采用液氮將植物樣品研磨成粉末,轉(zhuǎn)移50~100mg 凍藏樣品至 2mL離心管中,立即加入 600μL Buffer PTL/2-Me 和 5μL RNase Solution 至樣品中,劇烈渦旋使樣品充分分散,65°C水浴20min,期間顛倒混勻 2~3次,加入600μL氯仿-異戊醇(24∶1),渦旋混勻30s,室溫下12 000xg離心5min,轉(zhuǎn)移上清液至新的離心管中,加入等倍體積 Buffer PBL 至上清液中,渦旋混勻30s,將DNA 柱裝在收集管中,轉(zhuǎn)移混合液(<700μL)至柱子中,8 000xg離心30~60s。然后按照使用手冊(cè)方法進(jìn)行提取,將提取的 DNA 保存于-20℃下備用。
2.2 PCR擴(kuò)增及電泳檢測(cè)
為獲得穩(wěn)定的試驗(yàn)結(jié)果,減少實(shí)驗(yàn)過(guò)程中因操作導(dǎo)致的實(shí)驗(yàn)誤差,PCR反應(yīng)體系選擇2×Taq master Mix PCR擴(kuò)增體系,只需在反應(yīng)體系中加入DNA模板、引物以及去離子水,主要優(yōu)化對(duì)RAPD影響較大的3個(gè)反應(yīng)參數(shù),即PCR反應(yīng)體系中的DNA模板濃度(1μL、1.5μL、2.0μL、2.5μL、3.0μL)、引物濃度(0.4μL、0.8μL、1.2μL、1.6μL、2.0μL)、體系循環(huán)次數(shù)(25、30、35、40、45次)。優(yōu)化結(jié)果表明,DNA模板濃度為2.5μL、引物濃度為2.0μL、循環(huán)40次為最佳反應(yīng)條件。
PCR擴(kuò)增反應(yīng)程序:向紫珠RAPD反應(yīng)的50μL反應(yīng)體系中加入模板DNA 2.5μL、引物2μL、2×Taq Master Mix 25μL以及去離子水20.5μL。PCR擴(kuò)增程序?yàn)?4℃預(yù)變性5min,94℃變性30s,36℃退火30s,72℃延伸30s,40次循環(huán),72℃后延伸7min,4℃保存。取擴(kuò)增產(chǎn)物5μL,在1.5%瓊脂糖凝膠上恒壓(110V)電泳60min,凝膠中含0.5μg/mL溴化乙錠(EB),采用凝膠成像系統(tǒng)照相。
2.3 數(shù)據(jù)分析
對(duì)擴(kuò)增后電泳帶總數(shù)及多態(tài)性條帶數(shù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)。將電泳圖譜中的每一條帶(DNA片段)作為一個(gè)分子標(biāo)記,并在模板上有一個(gè)結(jié)合位點(diǎn),不同的樣本在凝膠上泳動(dòng)距離相同則表明其有相同的位點(diǎn)。根據(jù)各分子標(biāo)記的有無(wú)得到所有位點(diǎn)的二元數(shù)據(jù),有帶記為“1”(強(qiáng)帶和弱帶同記),無(wú)帶記為“0”,采用SPSS17.0軟件進(jìn)行聚類分析。
3.1 基因組DNA電泳檢測(cè)
取4種紫珠基因組DNA提取液10μL,在穩(wěn)壓110V、1.0%瓊脂糖凝膠上電泳60min?;蚪MDNA 電泳檢測(cè)結(jié)果表明(見(jiàn)圖1),通過(guò)試劑盒提取的紫珠DNA樣品整齊一致,條帶清晰,沒(méi)有出現(xiàn)拖尾與擴(kuò)散現(xiàn)象,純度較高,因而可以滿足RAPD擴(kuò)增試驗(yàn)的要求。
圖1 4種紫珠基因組DNA電泳譜
3.2 RAPD標(biāo)記多態(tài)性分析
20條RAPD引物對(duì)4種紫珠屬植物樣本進(jìn)行擴(kuò)增得到的條帶的相對(duì)分子量主要集中在300~200bp,共擴(kuò)增得到條帶152條,其中多態(tài)性條帶共137條,多態(tài)率達(dá)88.2%,平均每條引物產(chǎn)生7.6個(gè)條帶與6.8個(gè)多態(tài)性條帶(見(jiàn)表3),4個(gè)樣品的RAPD擴(kuò)增結(jié)果見(jiàn)圖2、圖3、圖4、圖5。
表3 RAPD分析所用引物序列及擴(kuò)增結(jié)果 (n)
3.3 聚類分析
根據(jù)擴(kuò)增條帶,采用SPSS17.0軟件中的Within-groups linkage方法,根據(jù)遺傳距離對(duì)4個(gè)樣本進(jìn)行聚類分析,繪出紫珠樣本間的RAPD聚類系統(tǒng)圖(見(jiàn)圖6)。從圖6中可以看出,利用RAPD方法可將4個(gè)紫珠樣本分為3類,其中杜虹花與廣東紫珠的遺傳距離最近,可歸為一類,大葉紫珠與裸花紫珠各為一類,而大葉紫珠比裸花紫珠在親緣關(guān)系上更靠近廣東紫珠與杜虹花。
RAPD是建立在PCR基礎(chǔ)上的一種可對(duì)整個(gè)未知序列的基因組進(jìn)行多態(tài)性分析的分子標(biāo)記技術(shù),該技術(shù)具有操作簡(jiǎn)單、快速,能在短時(shí)間內(nèi)完成對(duì)多個(gè)樣本研究的特點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于藥用植物種質(zhì)資源的遺傳多樣性研究[12-13]、種質(zhì)鑒定及評(píng)價(jià)[14-15]、引種馴化[16]和分類學(xué)研究等方面[17]。但由于RAPD-PCR的影響因素較多,重復(fù)性與穩(wěn)定性較差,為提高實(shí)驗(yàn)的穩(wěn)定性與可重復(fù)性,本實(shí)驗(yàn)采用2×Taq master Mix PCR混合反應(yīng)體系,該體系中含有Mg2+、dNTP以及Taq酶濃度等均經(jīng)過(guò)優(yōu)化,適宜各類植物的擴(kuò)增實(shí)驗(yàn)。在體系的優(yōu)化過(guò)程中,僅需要對(duì)基因組DNA模板的濃度、引物濃度及循環(huán)次數(shù)等參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,DNA模板濃度為2.5μL、引物濃度為2.0μL、循環(huán)40次時(shí),擴(kuò)增的條帶較多,條帶較清晰。
圖2 裸花紫珠RAPD擴(kuò)增圖
圖3 廣東紫珠RAPD擴(kuò)增圖
圖4 大葉紫珠RAPD擴(kuò)增圖
圖5 杜虹花RAPD擴(kuò)增圖
圖6 紫珠樣品RAPD聚類分析結(jié)果
紫珠屬植物RAPD分析結(jié)果表明,20個(gè)引物共檢測(cè)出152條帶,多態(tài)性條帶共137條,多態(tài)率達(dá)88.2%。從DNA分子水平來(lái)說(shuō),樣本間遺傳距離越大,說(shuō)明遺傳分化越大;聚類分析結(jié)果表明,4個(gè)紫珠屬樣本可分為3類,其中杜虹花與廣東紫珠的遺傳距離最近,大葉紫珠與裸花紫珠各為一類,上述分析結(jié)果與紫珠屬植物的生藥學(xué)分類相一致。采用RAPD分子標(biāo)記研究紫珠屬資源之間的遺傳多樣性和親緣關(guān)系,對(duì)于紫珠屬藥用植物種質(zhì)資源的遺傳育種、合理利用具有重要意義。
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(責(zé)任編輯:尹晨茹)
Polymorphism of Four Kinds of Medicinal Plants Callicarpa Linn by RAPD
Yang Xianguo1,Gu Zhixin2,Lu Jie2,Liu Keming3,Huang Sheng2
(1.Traditional Chinese Medical College of Hunan,Zhuzhou 412012,China;2.Jiuzhitang Co Ltd,Changsha 410021,China;3.College of Life Science,Hunan Normal University,Changsha 410081,China)
Objective:To research the polymorphism of four kinds of medicinal plants Callicarpa linn by random amplified polymorphic DNA(RAPD)analysis and provide a basis for germplasm identification.Methods:The extraction kit was used to extract the genomic DNA of several plants,including 3 regions of Callicarpa nudiflora Hooker﹠Amott,callicarpa kwangtungensis Chun,callicarpa macrophylla Vahl and Callicarpa formosana Rolfe,then amplified by 20 selected random primers.Results:Extraction kit Was effeetive for 4 Callicarpa linn species genome DNA.With the DNA extracted from several plants as template,20 primers amplified a total of 152 bands,137 bands were polymorphic,polymorphism rate was 88.2%,and the effect amplification was good.The dendogram reflected that 4 samples clustered into three taxa.Conclusion:This result is in accordance with their morphological observed.RAPD markers can be used to analyze polymorphisms of medicinal plants Callicarpa linn,and provide the genetic basis for identification.
Callicarpa Linn;Genomic DNA;RAPD;Polymorphism;Clustering Analysis
2014-11-03
楊先國(guó)(1977-),男,湖南中醫(yī)藥高等??茖W(xué)校講師,研究方向?yàn)橹兴庂|(zhì)量與中藥資源。
R282.6
A
1673-2197(2015)07-0028-04
10.11954/ytctyy.201507014