劉敏 閆嘉惟 劉婭玲 郝玉慶
1.濱州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院口腔內(nèi)科,濱州 256603;2.口腔疾病研究國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 華西口腔醫(yī)院(四川大學(xué)),成都 610041;3.成都市第五人民醫(yī)院口腔科,成都 610041
自溶酶是革蘭陽(yáng)性菌產(chǎn)生的一種細(xì)胞壁肽聚糖水解酶。目前,細(xì)菌自溶酶的作用與調(diào)控機(jī)制已成為致病性生物膜研究的熱點(diǎn)之一,但對(duì)于有益菌自溶酶的研究甚少,而有益菌自溶酶對(duì)細(xì)菌生存競(jìng)爭(zhēng)與生物膜生態(tài)平衡可能具有重要作用[1]。
口腔有益菌格氏鏈球菌(Streptococcus gordonii,S.gordonii)是菌斑生物膜最早期的定植菌之一,在健康菌斑中占有相當(dāng)高的比例,對(duì)維護(hù)菌斑的生態(tài)平衡具有重要意義[2]。S.gordoniisg2013蛋白是形成正常細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)、生物膜及細(xì)菌自溶酶的關(guān)鍵蛋白。該蛋白能夠水解S.gordonii細(xì)胞壁的肽聚糖,具有自溶酶功能,命名為AtlS[3]。研究[3]發(fā)現(xiàn),AtlS對(duì)細(xì)菌生存競(jìng)爭(zhēng)及拮抗致齲菌有重要作用。基于AtlS在S.gordonii生存競(jìng)爭(zhēng)及拮抗致齲菌具有重要作用以及氧和pH值對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)的影響,本實(shí)驗(yàn)運(yùn)用熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(fluorescence quantitative polymerase chain reaction,F(xiàn)Q-PCR)的方法研究S.gordonii的atlS基因在不同生長(zhǎng)期及pH值的表達(dá)差異,進(jìn)而分析調(diào)控S.gordoniiatlS表達(dá)的因素。
S.gordoniiATCC 35105購(gòu)于美國(guó)標(biāo)準(zhǔn)品收藏中心。腦心浸液(brian heart infusion,BHI)培養(yǎng)基(Oxoid公司,英國(guó));兩種TY(tryptone yeast)培養(yǎng)基,一種pH=7.0,由50 mmol·L-1磷酸鉀緩沖液配制;另一種pH=5.5,由6 mol·L-1鹽酸配制。
YJ-875型超凈工作臺(tái)(蘇州凈化設(shè)備廠),7300型FQ-PCR儀(Applied Biosystems公司,美國(guó)),Hermle Z323K型低溫離心機(jī)(Hermle Labartechnik公司,德國(guó)),SPΕCTRONIC 200型分光光度計(jì)(Thermo Fisher公司,美國(guó)),pH計(jì)(Mettler Toledo公司,瑞士),Bio-Rad電泳儀(Bio-Rad公司,美國(guó))。
1.3.1 實(shí)驗(yàn)菌株的培養(yǎng) 1)BHI培養(yǎng)基中實(shí)驗(yàn)菌株的培養(yǎng)。S.gordoniiATCC 35105于37 ℃下置于BHI瓊脂培養(yǎng)基中復(fù)蘇,兼性厭氧(80% N2、10% H2、10% CO2)條件下培養(yǎng)24 h后傳代,接種于液體BHI培養(yǎng)基,37 ℃兼性厭氧培養(yǎng)12 h,備用。2)TY培養(yǎng)基中實(shí)驗(yàn)菌株的培養(yǎng)。S.gordoniiATCC 35105于37 ℃下置于BHI瓊脂培養(yǎng)基中復(fù)蘇,兼性厭氧培養(yǎng)24 h后分別接種于TY/pH7.0和TY/pH5.5培養(yǎng)基中傳代,37 ℃兼性厭氧培養(yǎng)12 h,備用。
1.3.2S.gordonii生長(zhǎng)曲線的測(cè)量 將S.gordonii培養(yǎng)物調(diào)整到相同的菌密度后,一式三份分別接種于含有50 mL BHI、TY/pH7.0和TY/pH5.5培養(yǎng)基的錐形瓶中,混勻菌液,在96孔板上分3組,每組3孔,每孔加菌液200 μL,培養(yǎng)24 h。用自動(dòng)酶標(biāo)儀每小時(shí)測(cè)量1次光密度(optical density,OD)值,重復(fù)3次,繪制24 h生長(zhǎng)曲線,確定S.gordonii的生長(zhǎng)期。
1.3.3S.gordonii樣本收集 以BHI作為培養(yǎng)基,分別在S.gordonii對(duì)數(shù)生長(zhǎng)早期、對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期、對(duì)數(shù)生長(zhǎng)晚期及生長(zhǎng)穩(wěn)定期收集細(xì)胞。將TY/pH7.0和TY/pH5.5培養(yǎng)基分別植入菌液后置于37 ℃有氧搖床(速度為150 r·min-1)上培養(yǎng),收集S.gordonii生長(zhǎng)穩(wěn)定期細(xì)胞;其中TY/pH7.0培養(yǎng)基作為中性條件,TY/pH5.5培養(yǎng)基作為酸性條件。
1.3.4 FQ-PCR檢測(cè)atlS基因mRNA表達(dá)水平S.gordonii收集完成后,采用FQ-PCR方法檢測(cè)atlS基因在不同生長(zhǎng)期(對(duì)數(shù)生長(zhǎng)早、中、晚期和穩(wěn)定期)和不同pH值(7.0和5.5)條件下mRNA的表達(dá)水平。1)RNA提取和cDNA合成。按Trizol總RNA抽提試劑說明書分別對(duì)不同生長(zhǎng)期和不同pH值下收集的S.gordonii進(jìn)行RNA提取,按照Fermentas逆轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,-20 ℃保存。2)引物設(shè)計(jì)。采用S.gordoniiATCC 35105的16S rRNA基因?yàn)閮?nèi)參。根據(jù)參考文獻(xiàn)[4]中得到的S.gordoniiATCC 35105的atlS基因片段核苷酸序列,利用Primer5.0軟件設(shè)計(jì)引物,序列如下。atlS基因引物,F(xiàn):5’-CAGTCATAACGGAAGCATAAGC-3’,R:5’-CACTTGCAAACCAGCCAACTGG -3’,產(chǎn)物154 bp;16S rRNA內(nèi)參[5]引物,F(xiàn):5’-AAGCAACGCGAAGAACCTTA-3’,R:5’-GTCTCGCTAGAGTGCCCAAC-3’ ,產(chǎn)物195 bp。設(shè)計(jì)的引物在GenBank上用BLAST程序檢測(cè)其特異性,結(jié)果顯示與S.gordonii的atlS基因的匹配率最高。3)FQ-PCR擴(kuò)增。采用TaKaRa公司的SYBR?Premix Εx TaqTMⅡ(Perfect Real Time)試劑盒,操作按說明書進(jìn)行,反應(yīng)體系總體積為20 μL。用RNase Freed H20將每個(gè)cDNA樣本稀釋5~10倍,置于7300型FQPCR儀上,進(jìn)行PCR反應(yīng),每組的目的基因atlS與內(nèi)參基因16S各設(shè) 3個(gè)平行管。讀取各樣本Ct值。4)瓊脂糖電泳。取5 μL PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,加1 μL 6×Loading Buffer,在1.2%瓊脂糖凝膠,1×TBΕ緩沖液中電泳35 mins,電壓為100 V,電流為80 mA,采用Bio-Rad凝膠成像系統(tǒng)觀察并記錄。5)數(shù)據(jù)分析。atlS基因mRNA的相對(duì)表達(dá)量用2-ΔΔCt法計(jì)算。不同生長(zhǎng)期和不同pH條件下的ΔCt計(jì)算公式如下:ΔCt=atlS基因Ct值-16S rRNA Ct值。對(duì)不同生長(zhǎng)期的分析中,以對(duì)數(shù)生長(zhǎng)早期為對(duì)照組;對(duì)不同pH條件下分析中,以TY/7.0為對(duì)照組。ΔΔCt=ΔCt處理組-ΔCt對(duì)照組,計(jì)算得出atlS基因mRNA的相對(duì)表達(dá)量。使用SPSS 16.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析,兩組間的比較采用t檢驗(yàn),多組比較采用方差分析,檢驗(yàn)水準(zhǔn)為雙側(cè)α=0.05。
S.gordonii在BHI和TY/pH7.0、TY/pH5.5培養(yǎng)基中的生長(zhǎng)曲線見圖1、2:該細(xì)菌的對(duì)數(shù)生長(zhǎng)早期為3 h,對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期為4 h,對(duì)數(shù)生長(zhǎng)晚期為5 h,穩(wěn)定期為7 h;在中性和酸性條件下到達(dá)穩(wěn)定期的時(shí)間分別為7 h和8 h。
圖1 BHI培養(yǎng)基中S.gordonii的生長(zhǎng)曲線Fig 1 The growth curve of S.gordonii in BHI culture medium
圖2 TY培養(yǎng)基中S.gordonii的生長(zhǎng)曲線Fig 2 The growth curve of S.gordonii in TY culture medium
atlS基因在不同生長(zhǎng)期和pH值下的相對(duì)表達(dá)量見圖3、4。經(jīng)統(tǒng)計(jì)學(xué)檢驗(yàn),在不同生長(zhǎng)時(shí)期atlS基因的相對(duì)表達(dá)量均有差異(P<0.05),可以認(rèn)為從對(duì)數(shù)生長(zhǎng)早期到穩(wěn)定期該基因的表達(dá)逐步升高;在中性和酸性條件下表達(dá)量的差異也有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),中性條件下的表達(dá)量高于酸性條件下。
圖3 S.gordonii在不同生長(zhǎng)期atlS基因表達(dá)差異Fig 3 Differential expression of atlS gene of S.gordonii at different growth stages
圖4 S.gordonii在不同pH值下atlS基因表達(dá)差異Fig 4 Differential expression of atlS gene of S.gordonii at different pH value
齲病是最常見的人類感染性疾病之一,屬于生態(tài)失衡性疾病,其發(fā)生與菌斑生物膜密切相關(guān)。如何維護(hù)菌斑的生態(tài)平衡是齲病防治的關(guān)鍵,有效的抗齲治療不能對(duì)有益的共生菌造成危害,因此自溶途徑有望成為抗齲治療的潛在靶點(diǎn)[6-7]。
2006年,H?varstein等[8]發(fā)現(xiàn)肺炎鏈球菌自溶酶LytA與細(xì)菌壓力耐受密切相關(guān)。在酸性、抗生素等多種壓力下,LytA表達(dá)增強(qiáng),作為分泌蛋白溶解其他細(xì)菌的同時(shí)產(chǎn)生保護(hù)機(jī)制使自身免于溶解;通過清除“老弱病殘”的同種細(xì)菌并拮抗其他種類的細(xì)菌,同時(shí)獲得外源性DNA與生長(zhǎng)所需營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),減少細(xì)菌間的競(jìng)爭(zhēng)壓力[8-9]。LytA的作用機(jī)制被認(rèn)為是肺炎鏈球菌應(yīng)對(duì)環(huán)境壓力的重要應(yīng)答反應(yīng),對(duì)細(xì)菌的生存競(jìng)爭(zhēng)具有重大意義[8,10-11]。
有研究發(fā)現(xiàn),S.gordonii通過產(chǎn)生多種蛋白水解酶、過氧化氫及細(xì)菌素可抑制變異鏈球菌(Streptococcus mutans,S.mutans)的過度生長(zhǎng)與毒力因子的產(chǎn)生[5];臨床研究也證實(shí),當(dāng)牙菌斑生物膜中檢出高比例的S.gordonii時(shí),變異鏈球菌產(chǎn)酸及細(xì)菌毒力作用能夠被有效地抑制[12]。AtlS是S.gordoniisg2013蛋白,因其能夠溶解S.gordonii的細(xì)胞壁肽聚糖而命名。Liu等[3]已經(jīng)證實(shí),S.gordoniiatlS與細(xì)菌形成感受態(tài)、耐酸耐氧密切相關(guān),在培養(yǎng)了48 h的S.gordonii生物膜中可以檢測(cè)到大量的AtlS蛋白,提示AtlS可能在菌斑生物膜中大量釋放。在與變異鏈球菌的生存競(jìng)爭(zhēng)實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),加入AtlS重組蛋白可以明顯提高S.gordonii拮抗S.mutans的能力[3]。由此推測(cè),S.gordoniiAtlS的作用機(jī)制可能與肺炎鏈球菌LytA相似。
細(xì)菌的存在是齲病發(fā)生的先決條件,口腔中主要的致齲菌是S.mutans,它具有極強(qiáng)的產(chǎn)酸、耐酸及附著能力。菌斑中的S.mutans可使局部pH值下降至5.5以下,并能維持相當(dāng)長(zhǎng)的時(shí)間,同時(shí)避開唾液的緩沖作用,從而造成局部脫礦。在口腔鏈球菌中,S.gordonii是有益菌,具有拮抗S.mutans的作用。S.gordonii的atlS基因與S.mutans的atlA基因有36%的同源性。S.mutans的atlA基因與其生物膜形成有重要關(guān)系[13],由此推測(cè),atlS與S.gordonii的生物膜形成或許也有相關(guān)性[6]。
基于atlS基因在S.gordonii生存競(jìng)爭(zhēng)及拮抗致齲菌中表現(xiàn)出來的重要作用,本實(shí)驗(yàn)運(yùn)用FQ-PCR法研究S.gordonii的atlS基因在不同生長(zhǎng)期及pH值下的表達(dá)差異,結(jié)果顯示,細(xì)菌生長(zhǎng)期和pH值是影響atlS基因表達(dá)的相關(guān)因素。在不同的生長(zhǎng)期(對(duì)數(shù)生長(zhǎng)早期、對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期、對(duì)數(shù)生長(zhǎng)晚期、穩(wěn)定期)和不同pH值(7.0和5.5)下atlS基因均有表達(dá),且表達(dá)量高低存在差異。從對(duì)數(shù)生長(zhǎng)早期到穩(wěn)定期,atlS基因表達(dá)量呈上升趨勢(shì),到穩(wěn)定期達(dá)到最高水平;中性條件下的表達(dá)量高于酸性條件。
本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),S.gordoniiatlS基因在細(xì)菌生長(zhǎng)的不同階段表達(dá)具有差異性,從對(duì)數(shù)生長(zhǎng)早期到穩(wěn)定期呈增長(zhǎng)趨勢(shì)。當(dāng)細(xì)菌生長(zhǎng)到穩(wěn)定期時(shí),細(xì)菌量達(dá)到最高值,atlS基因的表達(dá)也在穩(wěn)定期達(dá)到最高,這可能與細(xì)菌數(shù)量不斷增多有關(guān)。
菌斑在齲病的發(fā)生過程中起重要的作用是因?yàn)榫咧锌梢苑e聚酸,當(dāng)pH值下降到臨界值(5.5)以下時(shí),可造成羥磷灰石中的鈣丟失,釉質(zhì)脫礦。只有少數(shù)致齲菌如S.mutans可以在這種環(huán)境下繼續(xù)生長(zhǎng)并產(chǎn)酸[7,14]。Liu等[3]發(fā)現(xiàn),AtlS可以增加S.gordonii的耐酸性,atlS缺陷株在酸性條件下不能生長(zhǎng)。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),在中性或酸性條件下atlS基因都可以表達(dá),但是atlS基因在臨界pH值(5.5)時(shí)的表達(dá)不如其在中性條件下高,這可能會(huì)降低了當(dāng)口腔處于易患齲環(huán)境時(shí)對(duì)S.mutans的拮抗作用。
本研究顯示,pH值和細(xì)菌生長(zhǎng)期均能影響atlS的表達(dá),但需要進(jìn)一步排除各種因素間的相互干擾,篩選調(diào)控atlS表達(dá)的主要因素并明確其作用機(jī)制,及以上因素對(duì)AtlS蛋白水解酶活性的影響。另外,還需篩選并驗(yàn)證調(diào)控atlS表達(dá)的關(guān)鍵分子通路,以了解外界因素是通過怎樣的分子網(wǎng)絡(luò)進(jìn)行信號(hào)傳遞以調(diào)控atlS基因的表達(dá)。
[1]Keep NH,Ward JM,Cohen-Gonsaud M,et al.Wake up!Peptidoglycan lysis and bacterial non-growth states[J].Trends Microbiol,2006,14(6):271-276.
[2]Marchant S,Brailsford SR,Twomey AC,et al.The predominant microflora of nursing caries lesions[J].Caries Res,2001,35(6):397-406.
[3]Liu Y,Burne RA.The major autolysin ofStreptococcus gordoniiis subject to complex regulation and modulates stress tolerance,biof ilm formation,and extracellular-DNA release[J].J Bacteriol,2011,193(11):2826-2837.
[4]Itzek A,Zheng L,Chen Z,et al.Hydrogen peroxide-dependent DNA release and transfer of antibiotic resistance genes inStreptococcus gordonii[J].J Bacteriol,2011,193(24):6912-6922.
[5]Kreth J,Zhang Y,Herzberg MC.Streptococcal antagonism in oral biof ilms:Streptococcus sanguinisandStreptococcus gordoniiinterference withStreptococcus mutans[J].J Bacteriol,2008,190(13):4632-4640.
[6]Ahn SJ,Burne RA.The atlA operon ofStreptococcus mutans:role in autolysin maturation and cell surface biogenesis[J].J Bacteriol,2006,188(19):6877-6888.
[7]Quivey RG,Kuhnert WL,Hahn K.Genetics of acid adaptation in oral streptococci[J].Crit Rev Oral Biol Med,2001,12(4):301-314.
[8]H?varstein LS,Martin B,Johnsborg O,et al.New insights into the pneumococcal fratricide:relationship to clumping and identif ication of a novel immunity factor[J].Mol Microbiol,2006,59(4):1297-1307.
[9]Εldholm V,Gutt B,Johnsborg O,et al.The pneumococcal cell envelope stress-sensing system LiaFSR is activated by murein hydrolases and lipid II-interacting antibiotics[J].J Bacteriol,2010,192(7):1761-1773.
[10]Claverys JP,H?varstein LS.Cannibalism and fratricide:mechanisms and raisons d’être[J].Nat Rev Microbiol,2007,5(3):219-229.
[11]Εldholm V,Johnsborg O,Haugen K,et al.Fratricide inStreptococcus pneumoniae:contributions and role of the cell wall hydrolases CbpD,LytA and LytC[J].Microbiology,2009,155(Pt 7):2223-2234.
[12]Becker MR,Paster BJ,Leys ΕJ,et al.Molecular analysis of bacterial species associated with childhood caries[J].J Clin Microbiol,2002,40(3):1001-1009.
[13]Shibata Y,Kawada M,Nakano Y,et al.Identif ication and characterization of an autolysin-encoding gene ofStreptococcus mutans[J].Infect Immun,2005,73(6):3512-3520.
[14]樊明文,邊專.齲病學(xué)[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,2003:22-23.