任榮梅(綜述),白　懷(審校)

(四川大學華西第二醫(yī)院遺傳代謝性疾病及圍生醫(yī)學實驗室，成都 610041)

分子生物醫(yī)學

血管生成三維培養(yǎng)模型的研究進展

任榮梅△(綜述),白懷※(審校)

(四川大學華西第二醫(yī)院遺傳代謝性疾病及圍生醫(yī)學實驗室，成都 610041)

血管生成或血管新生是指從已有血管長出新血管的過程。機體在生理狀態(tài)，如胚胎發(fā)育、組織再生以及病理狀態(tài)(如腫瘤、糖尿病視網(wǎng)膜病變、類風濕關節(jié)炎等)均有血管新生。血管生成是內(nèi)皮細胞的重要功能。傳統(tǒng)單層細胞培養(yǎng)(2D培養(yǎng))模型所取得的研究結(jié)果和體內(nèi)的情況并不符合；動物模型的使用雖然具有其優(yōu)點，但由于體內(nèi)多種因素的制約以及體內(nèi)和外界環(huán)境的相互影響,難以研究單一過程；三維培養(yǎng)(3D培養(yǎng))模型可使細胞呈立體生長,更接近于體內(nèi)自然生長狀態(tài)，有利于研究細胞-細胞的相互作用，以及旁分泌對細胞的作用。血管生成3D培養(yǎng)系統(tǒng)的建立，已成為向著構(gòu)建組織器官特異性3D血管生成模型目標邁進的關鍵環(huán)節(jié)。現(xiàn)對血管生成3D培養(yǎng)模型的研究進展進行綜述。

13D培養(yǎng)與2D培養(yǎng)的比較

2D培養(yǎng)即在體外細胞單層培養(yǎng)，細胞呈片層樣生長。利用2D培養(yǎng)，可以做一些基礎的細胞生物學方面的研究，如細胞的形態(tài)結(jié)構(gòu)以及細胞對環(huán)境理化刺激的應答反應等研究。然而，體內(nèi)的細胞不像二維一樣單層生長，如要研究細胞與細胞、細胞與基質(zhì)之間的相互作用以及作用機制等用2D培養(yǎng)難以達到研究目的。

近幾年3D培養(yǎng)技術在組織形成、血管發(fā)育和器官再造、腫瘤等領域得到了廣泛的應用，同時在篩選新藥的療效分析和毒理實驗等方面也顯示出了重要的價值。

2生物材料

生物材料應具有天然組織的適應性，以利于細胞附著、存活、增殖和分化。多數(shù)3D培養(yǎng)模型均使用天然蛋白性材料，如Ⅰ型膠原蛋白、纖維蛋白或富含層粘連蛋白膜性基質(zhì)提取物，這些材料來源廣泛并容易操作。此外，天然材料攜帶多種內(nèi)源性信號，有利于細胞的存活，并且能有效地促進形態(tài)發(fā)生，如乳腺癌的形態(tài)發(fā)生[2]﹑內(nèi)皮細胞毛細血管形態(tài)發(fā)生[3]和出芽[4]等。但天然蛋白3D支架也存在不足之處，如對其降解難以調(diào)控、機械穩(wěn)定性不夠，且存在產(chǎn)品批次間的差異等。近年來人們傾向于使用合成材料作為支架，其優(yōu)點是易于進行化學修飾，也能很好地控制支架的化學成分和機械性能。

應用合成材料建立的3D腫瘤模型已有一些報道[5-7]。通過一定的配體交聯(lián)方法和特定支架相配合獲得的合成基質(zhì)能控制支架硬度和黏附配體的濃度比例；合成支架的降解性可以人為控制達到需要的穩(wěn)定性時間，這能通過在支架中引入特異的金屬蛋白酶位點或特定性化學基團而實現(xiàn)[8]。此外，合成支架可以傳遞多種生長因子的活性，以介導細胞的命運[9]。但天然和合成支架均存在很高的含水量(高于90%)，而致其致密度偏低，為準確模擬腫瘤的外環(huán)境，致密程度更高的支架才能與抗腫瘤藥物在體內(nèi)生理性環(huán)境滲透特性相當[10]。

3培養(yǎng)分類

3D培養(yǎng)模型的種類較多，概括起來可以分為靜態(tài)培養(yǎng)和動態(tài)培養(yǎng)兩大類。

3.1靜態(tài)培養(yǎng)3D靜態(tài)培養(yǎng)的原理是將細胞直接接種于3D支架材料中，讓其靜止生長培養(yǎng)。細胞懸浮培養(yǎng)和球狀聚集培養(yǎng)是其代表。

3.1.1靜態(tài)細胞懸浮培養(yǎng)近年Nyga等[10]建立了膠原蛋白3D摸擬結(jié)腸癌血管新生模型，在含有人HT29結(jié)腸腺癌細胞的膠原蛋白基質(zhì)中加入一定的可塑性材料，使膠原密度提高6倍，這種高密度膠原模擬組織的缺氧核心，在其外圍非致密的膠原中種植人臍靜脈內(nèi)皮細胞和結(jié)腸成纖維細胞系CF56，經(jīng)過21 d培養(yǎng)，中心處腫瘤細胞發(fā)展為缺氧腫瘤團塊，而內(nèi)皮細胞向內(nèi)遷移到核心結(jié)構(gòu)的外層。然而，該模型的缺點是形成的血管結(jié)構(gòu)不明顯，且外圍非致密的膠原蛋白支架會發(fā)生收縮而出現(xiàn)分層。

Ingthorsson等[11]應用Matrigel支架研究了內(nèi)皮細胞對人乳腺上皮細胞生長與分化的影響，發(fā)現(xiàn)內(nèi)皮細胞刺激正常和腫瘤乳腺上皮細胞分化和克隆形成效能，其作用經(jīng)可溶性因子介導。但在整個實驗過程中內(nèi)皮細胞仍保持圓形的靜止狀態(tài)，未見血管結(jié)構(gòu)形成。該模型不適宜直接觀察內(nèi)皮細胞和上皮細胞的相互作用。

此外，Verbridge等[12]報道了口腔鱗癌細胞影響血管新生的膠原蛋白3D模型。這種模型是將內(nèi)皮細胞種植于含腫瘤細胞的膠原蛋白表面，培養(yǎng)3 d后，內(nèi)皮細胞向膠原中的腫瘤細胞方向侵入，提示腫瘤細胞對內(nèi)皮細胞具有化學趨化作用。近年還發(fā)展出了雙層生物工程化血管新生模型，該模型使用端粒酶永生化微血管內(nèi)皮細胞，將其種植于Ⅰ型膠原水凝膠表面，水凝膠層之下為種植于Ⅰ型膠原內(nèi)的MDA-MB-231或人乳腺癌細胞[13]。研究發(fā)現(xiàn)，兩種細胞僅MDA-MB-231細胞能介導內(nèi)皮細胞增殖并侵入到膠原蛋白層，形成復雜的網(wǎng)狀毛細血管樣結(jié)構(gòu)。

尿白蛋白／尿肌酐與α1微球蛋白及C反應蛋白對早期糖尿病腎病的診斷價值…………………… 何云英 朱敏 蔣玲霞 等（1）117

3.1.2靜態(tài)細胞球狀聚集培養(yǎng)與常規(guī)的懸浮細胞培養(yǎng)和單層細胞培養(yǎng)相比，腫瘤細胞球狀聚集培養(yǎng)可以復制原始組織的形態(tài)和功能特性[14-15]。腫瘤細胞在球狀結(jié)構(gòu)中的生長慢于單層培養(yǎng)細胞，在3D球狀細胞結(jié)構(gòu)中包含外增殖層、中靜止層和內(nèi)壞死細胞層3個區(qū)域。各區(qū)域腫瘤細胞的反應特性依腫瘤的大小而不同[14,16]。有研究利用厚層mitrigel，挖去其中一部分后，填入懸浮于Ⅰ型膠原的卵巢癌細胞，然后與培養(yǎng)基中含內(nèi)皮細胞和肌成纖維細胞一起培養(yǎng)，48 h后培養(yǎng)基中的上述細胞圍繞腫瘤細胞發(fā)生黏附和遷移，表面的細胞向腫瘤細胞處移動，形成管樣結(jié)構(gòu)，最后侵入腫瘤細胞簇；對腫瘤血管形成的分析發(fā)現(xiàn)，內(nèi)皮細胞在侵入腫瘤細胞簇的過程中，肌成纖維細胞起支持作用。還有利用球狀培養(yǎng)模型進行早期腫瘤血管新生的研究，即在膠原蛋白基質(zhì)中培養(yǎng)內(nèi)皮細胞、成纖維細胞和MDA-MB-231乳腺癌細胞，2 d后可見乳腺癌細胞促進毛細血管芽狀結(jié)構(gòu)形成[17]，這些芽狀結(jié)構(gòu)能對一些特定抗血管生成藥物發(fā)生應答反應，該研究還發(fā)現(xiàn)基質(zhì)細胞支持內(nèi)皮細胞在血管生成過程中的侵入作用，提示臨床前藥物的篩選模型中應加入基質(zhì)細胞。此外，另一項基于相同方法的研究模型，是利用臍靜脈外植體和埋于Matrigel中的前列腺癌細胞聚集體的共培養(yǎng)[18]，培養(yǎng)20～25 d后可觀察到腫瘤細胞簇刺激微血管外生，而不需添加外源性生長因子，此模型適用于篩選抗腫瘤藥物，與小鼠主動脈環(huán)和常規(guī)細胞培養(yǎng)方法相比其敏感性更高。

為了克服基于細胞外基質(zhì)來源的基質(zhì)存在的固有缺陷，另一實驗小組開發(fā)了半合成性starPEG-heparin水凝膠作為組織工程化材料，該系統(tǒng)具有可調(diào)控細胞微環(huán)境的特性，其機械性特征的變化與生長因子、黏附配體和可降解多態(tài)序列等生物性功能分子之間的關系可以人為加以控制，上述水凝膠與細胞外基質(zhì)的相似之處在于可以同時附著和存貯多種生長因子，特別適用于腫瘤與血管生成關系的研究[19]。

3.2動態(tài)培養(yǎng)剪切力和血液流動在血管化過程和新生成的血管芽狀結(jié)構(gòu)的維持等方面起重要作用。微流體裝置能模擬活體的微環(huán)境結(jié)構(gòu)，可控制物質(zhì)的運輸和可溶性分子的時空傳遞，并能適時監(jiān)控同類或異類細胞與細胞間的相互作用，因而優(yōu)于傳統(tǒng)的體外實驗系統(tǒng)[20-21]。有研究小組制備了中心種植有內(nèi)皮細胞的微流通道，其周圍由含有MDA-MB-231細胞的Ⅰ型膠原所圍繞[22]。通過施以腫瘤血管內(nèi)相當?shù)囊后w剪切力3 d，腫瘤細胞對與其共培養(yǎng)的內(nèi)皮細胞產(chǎn)生應答反應，促血管生成基因的表達增加。

另外，Moya等[23]研發(fā)了另一種微流體模型，這種模型使用纖維蛋白或Ⅰ型膠原作為基質(zhì)，其內(nèi)種植有內(nèi)皮集落形成細胞來源的內(nèi)皮細胞，形成連續(xù)的微血管灌流網(wǎng)絡，基質(zhì)內(nèi)同時含有共培養(yǎng)的結(jié)腸癌SW620細胞；該系統(tǒng)內(nèi)可加入基質(zhì)細胞，如正常人肺成纖維細胞[24]或ips-來源的心臟肌細胞[23]。

Shin等[25]和Chung等[26]研發(fā)了3D和2D相結(jié)合的微流體模型，應用該模型可研究空間和時間上細胞-細胞之間和細胞-細胞外基質(zhì)之間的相互作用。Moll等[27]建立了用于外周神經(jīng)髓鞘腫瘤研究的3D組織化腫瘤模型，該模型使用一段脫細胞的豬空腸段，在其頂端種植上原代成纖維細胞和S462腫瘤細胞，微血管內(nèi)皮細胞種植于其底部和側(cè)面，將種植有細胞的支架放置于流動的生物反應器中，使細胞暴露于剪切力14 d后，在組織學上觀察不同細胞群的反應特性。這種支架的優(yōu)點是保存有原血管結(jié)構(gòu)，并能新種上血管內(nèi)皮細胞，且保存有細胞外成分和結(jié)構(gòu)。該模型有利于觀察細胞黏附和組織分化。

總之，3D腫瘤動態(tài)血管新生模型能重現(xiàn)基本血管單位——毛細血管結(jié)構(gòu)，以及一定程度的腫瘤生長。但該領域的研究尚處于初期階段，未見有相關應用方面的研究報道。

4理想的培養(yǎng)模型

2005年來血管生成模型方面以腫瘤血管生成模型的研究進展尤為顯著，雖然建立了很多新的復雜模型,但新模型尚有很多地方需要完善。理想的腫瘤血管生成模型應重現(xiàn)腫瘤的生理環(huán)境，即能對3D支架從生理、化學和生物學特性等方面加以控制，并能適時觀察血管化過程中腫瘤微環(huán)境所發(fā)生的變化。要達到這些要求，以下方面尤為重要。

4.1材料不同類型腫瘤的基質(zhì)成分在構(gòu)成種類及其含量上均有不同[28]，構(gòu)建腫瘤血管成生成模型因而具有相應的差別；此外，腫瘤基質(zhì)成分在腫瘤發(fā)展過程中會發(fā)生由纖維蛋白樣轉(zhuǎn)變成膠原蛋白樣的變化。在構(gòu)建新腫瘤血管生成模型時還應考慮特定腫瘤微環(huán)境和血管生成過程相一致的環(huán)境。迄今多數(shù)3D模型均使用Ⅰ型膠原，其他天然材料，如透明質(zhì)酸、繭絲和合成支架等已應用于血管仿生領域[29-30]，這些材料在3D培養(yǎng)血管生成模型中的應用有待探索。

4.2細胞種類腫瘤細胞微環(huán)境含有多種細胞，其構(gòu)成細胞的種類依特定腫瘤類型的不同而不同。理想的模型應包括活體特定環(huán)境中所有的細胞種類。迄今多數(shù)3D腫瘤血管生成模型使用的細胞僅為腫瘤細胞和內(nèi)皮細胞[11-13]。但很多研究均提示，間質(zhì)成纖維細胞參與調(diào)節(jié)腫瘤侵入和血管生成，這類細胞應加入3D腫瘤血管生成模型中[17,31-32]。其他類型的細胞(如炎性細胞)加入到模型中，可以確定其在腫瘤血管生成中的作用。此外，來源于不同組織的內(nèi)皮細胞在形態(tài)、標志分子的表達和代謝特性等均有不同[33]，還存在有與親代腫瘤細胞相同的自發(fā)性突變等問題[34]，因而細胞來源在設計3D模型時也應加以考慮[35]。多數(shù)3D模型均使用的是永生化細胞株，未包含腫瘤干細胞或循環(huán)腫瘤細胞[36-37]，因此，在3D模型中應使用患者標本來源的原代腫瘤細胞，有利于研究其生長及長期存活。為增加實驗模型所獲結(jié)果的預見性效力，使用患者自體來源的細胞以用于個性化的藥物試驗將是未來努力的方向。

4.3結(jié)構(gòu)特性實體腫瘤組織的結(jié)構(gòu)為由基質(zhì)圍繞腫瘤實質(zhì)所構(gòu)成[38]。腫瘤的結(jié)構(gòu)依賴于腫瘤類型及其進展階段有所不同。目前多數(shù)3D模型仍然采用隨機方式將細胞種植于基質(zhì)內(nèi)。通過3D微圖形成型技術、光刻技術和微形打印技術[39]等方式可以獲得期望的細胞空間排列的結(jié)構(gòu)。這些新方法的使用有助于達到自由控制不同細胞群與群之間的距離以及相互作用類型的目的，同時在時空上給予生物化學和生物物理性刺激[20]。

4.4培養(yǎng)條件傳統(tǒng)的3D血管新生模型一般是靜態(tài)模型，近年在此基礎上發(fā)展出了組織工程化動態(tài)微流模型，該模型已開始用于腫瘤研究。理想的腫瘤血管生成3D模型應包括模擬血流的動態(tài)成分，因為活體狀態(tài)內(nèi)皮細胞連續(xù)地暴露于剪切刀和組織間液的流動，循環(huán)系統(tǒng)對抗腫瘤藥物的運輸是通過組織間液的流動而實現(xiàn)，且液體的流動能產(chǎn)生可溶性因子的濃度遞變幅度[40]。目前對添加可溶性因子(如血管內(nèi)皮生長因子)在腫瘤血管生成研究領域的使用目前還存在爭論。此外，長期3D培養(yǎng)對細胞活性的維持也是一個問題，高細胞密度的培養(yǎng)要求研制新的裝置以克服氧產(chǎn)生的不足或代謝廢物的積聚。

4.5分析方法目前對多數(shù)3D模型實驗結(jié)果的分析仍采用描述性的方法，如常規(guī)的顯微分析法及共聚焦顯微分析法等[41]。將來期望從實驗結(jié)果中獲取更多的數(shù)據(jù)用于分析。進一步建立高解析力的4D顯微分析技術，有助于對腫瘤環(huán)境中血管生成事件加以詳細的記錄；對腫瘤細胞募集、細胞間相互作用和刺激新的血管結(jié)構(gòu)形成等動態(tài)性觀察會增進人們對腫瘤血管生成的深入理解。開發(fā)3D和4D顯微成像獲取數(shù)據(jù)的自動分析系統(tǒng)，有助于避免結(jié)果的偏差，并簡化和加速數(shù)據(jù)的分析過程。此外，為更詳細記錄3D腫瘤模型的影像，還必須建立穩(wěn)定的熒光蛋白表達細胞系(如腫瘤細胞、內(nèi)皮細胞和其他細胞系)，并克服現(xiàn)在使用的細胞示蹤分子穩(wěn)定性較低及存在毒性的問題。

5結(jié)語

2005年來3D組織工程領域取得了很大的進展，已研究出一些新的能控制生化和生物物理特性用于血管生成模型研究的新方法。已有的3D腫瘤血管生成模型雖然包含有細胞和無細胞成分，但并未能完全模擬腫瘤微環(huán)境的異質(zhì)性。新一代3D血管生成模型應更加注重生理上精確模擬活體組織的特性，以獲得準確的實驗結(jié)果。研發(fā)新的3D培養(yǎng)模型有助于增進對腫瘤血管生成機制的理解以及提高抗腫瘤藥物的開發(fā)效率。

參考文獻

[1]Elliott NT,Yuan F.A review of three-dimensional in vitro tissue models for drug discovery and transport studies[J].J Pharm Sci,2010,100(1):59-74.

[2]Luca AC,Mersch S,Deenen R,etal.Impact of the 3D microenvironment on phenotype,gene expression,and EGFR inhibition of colorectal cancer cell lines[J].PLoS One,2013,8(3):e59689.

[3]Katanasaka Y,Asai T,Naitou H,etal.Proteomic characterization of angiogenic endothelial cells stimulated with cancer cell-conditioned medium[J].Biol Pharm Bull,2007,30(12):2300-2307.

[4]Buchanan CF,Szot CS,Wilson TD,etal.Cross-talk between endothelial and breast cancer cells regulates reciprocal expression of angiogenic factors in vitro[J].J Cell Biochem,2012,113(4):1142-1151.

[5]Hutmacher DW.Biomaterials offer cancer research the third dimension[J].Nat Mater,2010,9(2):90-93.

[6]Papetti M,Herman IM.Mechanisms of normal and tumor-derived angiogenesis[J].Am J Physiol Cell Physiol,2002,282(5):C947-970.

[7]Loessner D,Stok KS,Lutolf MP,etal.Bioengineered 3D platform to explore cell-ECM interactions and drug resistance of epithelial ovarian cancer cells[J].Biomaterials,2010,31(32):8494-8506.

[8]Chwalek K,Levental KR,Tsurkan MV,etal.Two-tier hydrogel degradation to boost endothelial cell morphogenesis[J].Biomaterials,2011,32(36):9649-9657.

[9]Silva AK,Richard C,Bessodes M,etal.Growth factor delivery approaches in hydrogels[J].Biomacromolecules,2009,10(1):9-18.

[10]Nyga A,Loizidou M,Emberton M,etal.A novel tissue engineered three-dimensional in vitro colorectal cancer model[J].Acta Biomater,2013,9(8):7917-7926.

[11]Ingthorsson S,Sigurdsson V,Fridriksdottir A,etal.Endothelial cells stimulate growth of normal and cancerous breast epithelial cells in 3D culture[J].BMC Res Notes,2010,3(10):184.

[12]Verbridge SS,Choi NW,Zheng Y,etal.Oxygen-controlled three-dimensional cultures to analyze tumor angiogenesis[J].Tissue Eng Part A,2010,16(7):2133-2141.

[13]Szot CS,Buchanan CF,Freeman JW,etal.In vitro angiogenesis induced by tumor-endothelial cell co-culture in bilayered,collagen I hydrogel bioengineered tumors[J].Tissue Eng Part C Methods,2013,19(11):864-874.

[14]Celli JP,Rizvi I,Blanden AR,etal.An imaging-based platform for high-content,quantitative evaluation of therapeutic response in 3D tumour models[J].Sci Rep,2014,4(10):3751.

[15]Kunz-Schughart LA.Multicellular tumor spheroids:intermediates between monolayer culture and in vivo tumor[J].Cell Biol Int,1999,23(3):157-161.

[16]Fischbach C,Chen R,Matsumoto T,etal.Engineering tumors with 3D scaffolds[J].Nat Methods,2007,4(10):855-860.

[17]Correa de Sampaio P,Auslaender D,Krubasik D,etal.A heterogeneous in vitro three dimensional model of tumour-stroma interactions regulating sprouting angiogenesis[J].PLoS One,2012,7(2):e30753.

[18]Seano G,Chiaverina G,Gagliardi PA,etal.Modeling human tumor angiogenesis in a three-dimensional culture system[J].Blood,2013,121(21):e129-137.

[19]Freudenberg U,Hermann A,Welzel PB,etal.A star-PEG-heparin hydrogel platformA star-PEG-heparin hydrogel platform to aid cell replacement therapies for neurodegenerative disease[J].Biomaterials,2009,30(28):5049-5060.

[20]Zervantonakis IK,Kothapalli CR,Chung S,etal.Microfluidic devices for studying heterotypic cell-cell interactions and tissue specimen cultures under controlled microenvironments[J].Biomicrofluidics,2011,5(1):13406.

[21]Ziolkowska K,Kwapiszewski R,Brzozka Z.Micro fluidic devices as tools for mimicking the in vivo environment[J].New J Chem,2011,35(1):979-990.

[22]Buchanan CF,Voigt EE,Szot CS,etal.Three-dimensional microfluidic collagen hydrogels for investigating flow-mediated tumor-endothelial signaling and vascular organization[J].Tissue Eng Part C Methods,2014,20(1):64-75.

[23]Moya M,Tran D,George SC.An integrated in vitro model of perfused tumor and cardiac tissue[J].Stem Cell Res Ther,2013,4 Suppl 1:S15.

[24]Moya ML,Hsu YH,Lee AP,etal.In vitro perfused human capillary networks[J].Tissue Eng Part C Methods,2013,19(9):730-737.

[25]Shin Y,Han S,Jeon JS,etal.Microfluidic assay for simultaneous culture of multiple cell types on surfaces or within hydrogels[J].Nat Protoc,2012,7(10):1247-1259.

[26]Chung S,Sudo R,Mack PJ,etal.Cell migration into scaffolds under co-culture conditions in a microfluidic platform[J].Lab Chip,2009,9(2):269-275.

[27]Moll C,Reboredo J,Schwarz T,etal.Tissue engineering of a human 3D in vitro tumor test system[J].J Vis Exp,2013,6(78):256-263.

[28]Nyga A,Cheema U,Loizidou M.3D tumour models:novel in vitro approaches to cancer studies[J].J Cell Commun Signal,2011,5(3):239-248.

[29]Moon JJ,Saik JE,Poche RA,etal.Biomimetic hydrogels with pro-angiogenic properties[J].Biomaterials,2010,31(14):3840-3847.

[30]Hanjaya-Putra D,Bose V,Shen YI,etal.Controlled activation of morphogenesis to generate a functional human microvasculature in a synthetic matrix[J].Blood,2011,118(3):804-815.

[31]Shekhar MP,Werdell J,Tait L.Interaction with endothelial cells is a prerequisite for branching ductal-alveolar morphogenesis and hyperplasia of preneoplastic human breast epithelial cells:regulation by estrogen[J].Cancer Res,2000,60(2):439-449.

[32]Shekhar MP,Werdell J,Santner SJ,etal.Breast stroma plays a dominant regulatory role in breast epithelial growth and differentiation:implications for tumor development and progression[J].Cancer Res,2001,61(4):1320-1326.

[33]Garlanda C,Dejana E.Heterogeneity of endothelial cells.Specific markers[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,1997,17(7):1193-1202.

[34]Schneider BP,Miller KD.Angiogenesis of breast cancer[J].J Clin Oncol,2005,23(8):1782-1790.

[35]Bouis D,Hospers GA,Meijer C,etal.Endothelium in vitro:a review of human vascular endothelial cell lines for blood vessel-related research[J].Angiogenesis,2001,4(2):91-102.

[36]Nagrath S,Sequist LV,Maheswaran S,etal.Isolation of rare circulating tumour cells in cancer patients by microchip technology[J].Nature,2007,450(7173):1235-1239.

[37]Visvader JE,Lindeman GJ.Cancer stem cells in solid tumours:accumulating evidence and unresolved questions[J].Nat Rev Cancer,2008,8(10):755-768.

[38]Dvorak HF,Nagy JA,Dvorak AM.Structure of solid tumors and their vasculature:implications for therapy with monoclonal antibodies[J].Cancer Cells,1991,3(3):77-85.

[39]Stroock AD,Fischbach C.Microfluidic culture models of tumor angiogenesis[J].Tissue Eng Part A,2010,16(7):2143-2146.

[40]Buchanan C,Rylander MN.Microfluidic culture models to study the hydrodynamics of tumor progression and therapeutic response[J].Biotechnol Bioeng,2013,110(8):2063-2072.

[41]Pampaloni F,Reynaud EG,Stelzer EH.The third dimension bridges the gap between cell culture and live tissue[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2007,8(10):839-845.

摘要：血管生成是內(nèi)皮細胞的重要功能，在胚胎發(fā)育、組織再生、炎癥﹑腫瘤的生長與轉(zhuǎn)移等多種生理和病理過程均有血管生成。傳統(tǒng)的單層細胞培養(yǎng)(2D培養(yǎng))模型是迄今最常用的體外實驗研究模型，但存在諸多的不足，如細胞的生長特性與體內(nèi)差異較大等。三維培養(yǎng)(3D培養(yǎng))模型上細胞呈立體生長,更接近于體內(nèi)的自然生長狀態(tài)。3D培養(yǎng)已經(jīng)發(fā)展出了多種方法，特別是近年組織工程技術的應用，3D血管生成模型的建立取得了很多新進展，在腫瘤領域的相關研究尤為活躍。

關鍵詞：血管內(nèi)皮細胞；血管生成；三維培養(yǎng)

Recent Advances in Three-dimensional Models of AngiogenesisRENRong-mei，BAIHuai.(LaboratoryofGeneticMetabolicDiseaseandPerinatalMedicine,SichuanUniversityWestChinaSecondHospital,Chengdu610041,China)

Abstract:Angiogenesis is an important function of endothelial cells,which participates in physiological and pathological processes,such as embryo development，tissue regeneration,inflammation,tumor growth and metastasis.Monolayer(two-dimensional,2D) cell culture models are the traditional culture models widely used for in vitro experimental cell research.However,these models have several drawbacks,such as cell growing differs greatly from naturally grown cells.Cells growing in three-dimensional(3D) matrix is closer to growth in vivo.In recent years 3D culture has developed a variety of novel methods,especially in combination with utilizing tissue engineering technology.A lot of progress has been achieved in 3D in vitro angiogenesis model,especially in the tumor research field.

Key words:Vascular endothelial cells; Angiogenesis; Three-dimensional culture

收稿日期：2014-11-03修回日期：2015-01-19編輯：相丹峰

基金項目：國家自然科學基金(81271733)

doi：10.3969/j.issn.1006-2084.2015.16.001

中圖分類號：R363

文獻標識碼：A

文章編號：1006-2084(2015)16-2881-04