王興平,羅仍卓么,歐陽助姣,李峰,李娜,王京仁
(1.湖南文理學院生命科學學院,湖南 常德 415000;2.湖南省高校動物學重點實驗室,湖南 常德 415000)
湘西黃牛是湖南省優(yōu)秀的地方家畜品種,主產(chǎn)于湖南省湘西北地區(qū),耐粗飼,耐熱,其肉質(zhì)富含蛋白質(zhì)和必需氨基酸,脂肪含量適宜,營養(yǎng)全面[1–3]。但是,湘西黃牛體型較小,生長發(fā)育緩慢,產(chǎn)肉率較低,嚴重制約了湘西黃牛產(chǎn)業(yè)的經(jīng)濟效益。為提高湘西黃牛生長發(fā)育速度和產(chǎn)肉率,同時保持其優(yōu)良肉質(zhì),國內(nèi)研究者已經(jīng)對湘西黃牛的微衛(wèi)星多態(tài)性[4–5]和MC3R[6]、SST[7]、H–FABP[8]、LPL[9–11]等功能基因的多態(tài)性與生長性能的關聯(lián)進行了探索,結(jié)果表明,上述基因的部分多態(tài)性位點與湘西黃牛的生長性狀相關。但是,這些位點還不足以進行分子育種,更多的標記位點有待于進一步挖掘。
胰島素樣生長因子I 受體(IGF–IR)是胰島素樣因子家族(IGFs)的重要受體,通過與IGF–I 結(jié)合,共同介導生長激素(GH)的促生長信號通路,在哺乳動物細胞分化與增殖、胚胎發(fā)育、神經(jīng)發(fā)育、骨骼肌和骨骼發(fā)育等過程中起著重要的調(diào)節(jié)作用[12–16]。迄今為止,未見湘西黃牛IGF–IR 基因分子遺傳特征與生長性狀相關的研究報道。本試驗采用PCR 擴增及PCR–RFLP 技術,分析了IGF–IR 基因在湘西黃牛群體中的遺傳變異及分子遺傳特征,并對多態(tài)位點與湘西黃牛的生長性狀進行了關聯(lián)分析,現(xiàn)將結(jié)果報道如下。
1.1.1 供試牛
在湖南省常德地區(qū)隨機選擇205 頭湘西黃牛母牛,經(jīng)頸靜脈采集每頭牛的血液,并對牛進行口齒年齡鑒定和生長性狀指標(體重、體高、體斜長和胸圍)的測定。
1.1.2 試 劑
Taq DNA聚合酶、Taq I限制性內(nèi)切酶購自寶生物工程(大連)有限公司; DNA快速純化試劑盒、dNTP混合物、DNA Marker II購自天根生化科技(北京)有限公司;100 bp ladder plus Marker購自北京博凌科為生物科技有限公司。
1.1.3 引 物
引物(F:CCCA ATGGATTGATCCTCATGT;R: GCTGTGTAGTTCCC TGGGTT)[12,17–19],用于擴增IGF–IR基因序列,包括12號外顯子(exon12)部分序列、12號內(nèi)含子(intron12)全序列及13號外顯子(exon13)部分序列預期擴增長度為616 bp。
1.2.1 基因組DNA 提取
頸靜脈采集2 mL湘西黃牛血液,離心,收集細胞,加血樣裂解液、SDS和蛋白酶K共計1 mL以裂解細胞,并采用等體積的酚/仿抽提?;蚪MDNA[20],TE緩沖液溶解,0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測基因組DNA的純度,–20 ℃保存,備用。
1.2.2 PCR 擴增
用205頭湘西黃牛樣本的DNA為模板分別進行PCR擴增。PCR反應體系(20 μL)為:10×Buffer(含Mg2+) 2.0 μL,10 μmol/L上、下游引物各0.5 μL,10 μmol/L dNTPs 0.5 μL,2 U/μL Taq DNA聚合酶0.3 μL,DNA 1 μL,超純水15.2 μL。PCR反應條件為:95 ℃預變性5 min;35個循環(huán)(94 ℃變性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸40 s);終延伸10 min。產(chǎn)物經(jīng)0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測后分別用DNA快速純化試劑盒純化。
1.2.3 SNP 篩查
隨機挑選4頭湘西黃牛的PCR產(chǎn)物純化樣品,送生工生物工程(上海)有限公司進行測序,其序列與已公布的安格斯牛IGF–IR基因序列(GenBank登錄號為JQ924783)進行多序列比對,確定湘西黃牛SNP數(shù)目、突變類型及SNP的位置。將獲得的SNP與現(xiàn)有文獻資料和SNP數(shù)據(jù)庫進行比較,以確定湘西黃牛IGF–IR基因的新SNP。
1.2.4 RFLP 與基因分型
根據(jù)SNP酶切位點的分析結(jié)果,確定基因分型位點及RFLP分析用限制性內(nèi)切酶,對純化后的PCR產(chǎn)物進行酶切。酶切體系為:PCR純化產(chǎn)物3 μL,10×限制性內(nèi)切酶Buffer 1 μL,0.1% BSA 1 μL,限制性內(nèi)切酶0.5 μL,滅菌雙蒸水4.5 μL,65 ℃水浴8~10 h。酶切產(chǎn)物用4%瓊脂糖凝膠電泳,凝膠成像系統(tǒng)拍照。根據(jù)條帶初步判斷基因型,并以初步判斷的純合子個體的基因組DNA為模板分別進行PCR(反應條件同上)。PCR產(chǎn)物純化后送生工生物工程(上海)有限公司測序,驗證基因分型的準確性。
1.2.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計
用POPGENE1.31軟件對基因頻率和基因型頻率、多態(tài)信息含量、群體雜合度、有效等位基因數(shù)和Hardy–Weinberg平衡χ2檢驗進行統(tǒng)計。根據(jù)影響牛生長性狀的因素,在對基因型與表型性狀的關聯(lián)分析時采用了固定模型:Trait(生長性狀)=μ(均值)+A(年齡)+G(基因型)+e(隨機殘差),運用SAS (Statistical analysis system) 8.2 軟件GLM程序,分析標記基因型對生長性狀的影響,并采用文獻[21]的方法估計基因效應。
PCR產(chǎn)物的電泳結(jié)果如圖1所示。結(jié)合測序結(jié)果可知,PCR擴增產(chǎn)物長度為616 bp,其在IGF–IR基因序列(GenBank登錄號為JQ924783)中的位置為第95~710 bp。
圖1 湘西黃牛IGF–IR基因的PCR產(chǎn)物電泳結(jié)果Fig.1 Electrophoresis patterns of PCR product for IGF–IR gene in Xiangxi cattle
多重比對結(jié)果表明,湘西黃牛IGF–IR基因部分序列中存在34個SNPs(表1),其中32個SNPs位于intron 12,2個SNPs位于exon 13;插入突變2個,缺失突變2個,轉(zhuǎn)換突變23個,顛換突變7個;exon 13中的2個SNPs(g.659 C>T和g.668 T>C)均屬于酪氨酸的同義突變。34個SNPs中,除了g.551G>T位點有文獻[12,17–19]報道外,其余33個SNPs均未見相關文獻報道,也未有在SNP數(shù)據(jù)庫中收錄。
表1 湘西黃牛IGF–IR基因SNP篩查結(jié)果Table 1 SNPs identified within IGF–IR gene in Xiangxi cattle
在上述34個SNPs中,僅有g.551G>T位點能被Taq I內(nèi)切酶所識別,且在其他牛品種上有相關的文獻報道[12,17–19]。為了能夠與其他牛品種群體遺傳多態(tài)性進行比較,揭示湘西黃牛群體遺傳特征,本研究選擇g.551G>T位點進行群體遺傳多態(tài)性分析。
PCR產(chǎn)物的TaqI內(nèi)切酶(識別T?CGA序列)酶切產(chǎn)物的結(jié)果(圖2)顯示,該位點在湘西黃牛群體中共出現(xiàn)3種基因型,分別為AA型(569、47 bp),AB型(569、408、161、47 bp)和BB型(408、161、47 bp)。純合子基因型測序結(jié)果(圖3)表明,3種基因型的PCR產(chǎn)物的47~50 bp處均存在Taq I限制性內(nèi)切酶識別位點。
圖2 酶切產(chǎn)物的電泳結(jié)果Fig. 2 Electrophoresis and genotyping for PCR product digested by Taq I
圖3 純合子個體的PCR 產(chǎn)物測序結(jié)果Fig. 3 Sequecing results of PCR products from individuals with IGF–IR genotype AA and BB
IGF–IR 基因g.551G>T 位點的群體遺傳特征統(tǒng)計結(jié)果見表2。3 種基因型分布頻率的高低順序為AB、AA、BB。A 為優(yōu)勢等位基因。多態(tài)信息含量為0.363 7(介于0.25~0.50)。從雜合度和有效等位基因數(shù)可看出,g.551G>T 位點在湘西黃牛群體中處于中度多態(tài)性,并且已經(jīng)達到了Hardy–Weinberg 平衡狀態(tài)(P>0.05)。
表2 湘西黃牛IGF–IR 基因g.551G>T 位點的群體遺傳特征Table 2 The population genetic characters of g.551G>T locus in IGF–IR gene in Xiangxi cattle
差異顯著性檢驗結(jié)果(表3)表明,湘西黃牛3種基因型個體的體高、體長、胸圍和體重差異均不顯著(P>0.05)。等位基因效應結(jié)果(表4)表明,A 等位基因?qū)ο嫖鼽S牛的體高、體長、胸圍和體重4 個性狀均為正效應,而B 等位基因均為負效應。綜上結(jié)果可知,A 等位基因雖然對生長性狀均有正效應,但其影響均不顯著,因此,從生物統(tǒng)計的角度判斷,g.551G>T 位點不適合作為湘西黃牛生長性狀的分子標記位點。
表3 IGF–IR 基因g.551G>T 位點不同基因型及等位基因?qū)ο嫖鼽S牛生長性狀的影響Table 3 The effects of g.551G>T locus in IGF–IR gene on growth traits in Xiangxi cattle
表4 IGF–IR 基因g.551G>T 位點對湘西黃牛生長性狀的等位基因效應Table 4 The Effective of different alleles of g.551G>T locus in IGF–IR gene on growth traits in Xiangxi cattle
本試驗用文獻[12,17–19]中的引物擴增了湘西黃牛的IGF–IR基因部分序列,長度為616 bp,與GenBank 中收錄的安格斯牛的序列長度相同(JQ92478)。但是用同樣的引物從郟縣紅牛、秦川牛、南陽牛、安格斯、荷斯坦牛、西門塔爾雜交牛、安格斯雜交牛和Najdi牛中擴增出的PCR產(chǎn)物長度均為625 bp[12,17–19]。
迄今為止,SNP數(shù)據(jù)庫(http://www.ncbi.nlm.nih. gov/snp/?term=IGF1R+bos)收錄了2 233個牛IGF–IR基因的SNPs,可見牛IGF–IR基因具有豐富的遺傳多態(tài)性。本試驗所檢測到的34個SNPs均未包含在該數(shù)據(jù)庫中,而僅有g.551G>T有相關文獻[12,17–19]報道。說明除了g.551G>T之外的33個SNPs均為筆者新發(fā)現(xiàn)的SNPs,該結(jié)果也說明湘西黃牛群體中IGF–IR基因具有豐富的遺傳多態(tài)性,可作為揭示湘西黃牛群體遺傳特征的候選基因。
本試驗PCR–RFLP的結(jié)果表明,湘西黃牛與其他牛[12,17–19]IGF–IR基因g.551G>T位點的群體遺傳多態(tài)性有以下差異:①酶切片段長度有差異。湘西黃牛在該位點存在3種基因型:AA型(569、47 bp),AB型(569、408、161、47 bp)和BB型(410、170、47 bp),而郟縣紅牛、秦川牛和南陽牛等品種[12,17–19]中的3種基因型則分別為AA型(580、45 bp),AB型(580、410、170、45 bp)和BB型(410、170、45 bp),這種差異是由IGF–IR基因序列長度差異所造成的。②基因型分布頻率與部分牛品種有差異。湘西黃牛3種基因型分布頻率的高低順序為AB、AA、BB,與Curi等[17]報道的基因型分布的趨勢相同,而Zhang等[18]報道郟縣紅牛、秦川牛和南陽牛群體中3種基因型分布頻率的高低順序為AA、AB、BB,其中BB型個體數(shù)量很少。經(jīng)分析發(fā)現(xiàn),湘西黃牛AA和AB的基因型頻率與上述?;蛐皖l率分布存在顯著差異(P<0.05),而BB基因型頻率分布差異不顯著(P>0.05)。③等位基因頻率分布有差異。湘西黃牛A和B等位基因的頻率分別為0.609和0.3902。經(jīng)分析發(fā)現(xiàn),湘西黃牛與Nellore、Canchim牛群體[17]的A和B基因頻率分布沒有顯著差異(P>0.05),而與西門塔爾雜交牛和安格斯雜交牛[17]、郟縣紅牛、秦川牛和南陽牛[18]、荷斯坦牛和Najdi牛[19]群體的A和B基因頻率分布存在顯著差異(P<0.05)。群體遺傳特征表明,湘西黃牛群體的IGF–IR基因g.551G>T位點處于中度多態(tài),且在群體中達到了Hardy–Weinberg平衡狀態(tài)(P>0.05),說明該位點不適合用于分子標記輔助育種。 研究 表明,1周歲牦牛IGF–IR基因exon 1的SSCP多態(tài)位點的EE型個體的胸圍、體斜長、體重等顯著高于EF和FF型個體(P<0.05),而對于成年牦牛沒有影響。Szewczuk等[23]研究表明,牛IGF–IR基因rs41640706/MspI位點(A/G)的GG型個體的斷奶重顯著高于AG型個體(+5.06 kg)。對于IGF–IR基因g.551G>T位點而言,該位點的RFLP/TaqI不同基因型對南陽牛生長性狀影響不顯著[12]。上述文獻結(jié)果顯示,IGF–IR基因多態(tài)性對不同牛品種(或在同一品種的不同發(fā)育階段)生長性狀的影響效果不同。為了進一步確定IGF–IR基因多態(tài)性對湘西黃牛生長性狀的關系,筆者進行了g.551G>T位點的關聯(lián)分析,結(jié)果表明,g.551G>T位點的多態(tài)性對湘西黃牛群體的體高、體長、胸圍和體重均無顯著影響(P>0.05),表明g.551G>T位點可能與湘西黃牛的生長性狀QTL沒有連鎖關系,不適合作為湘西黃牛生長性狀的分子標記位點。
[1]于建文.湘西黃牛的特征及選育技術探討[J].中國畜牧獸醫(yī)文摘,2013,29(1):76.
[2]易康樂,李志才,燕海峰,等.湘西黃牛肉質(zhì)特性研究[J].家畜生態(tài)學報,2011,32(5):39–42.
[3]劉瑩瑩,肖兵南,田科雄.湘西黃牛的保種與開發(fā)利用[J].中國畜禽種業(yè),2008(10):15–17.
[4]梁斌,李文平,肖兵南,等.微衛(wèi)星標記測定湘西黃牛雜交牛的遺傳多樣性及其與生產(chǎn)性能的相關性研究[J].湖南畜牧獸醫(yī),2008,30(3):10–13.
[5]邱志國. 湘西黃牛遺傳多樣性及微衛(wèi)星標記與生長發(fā)育性狀相關性研究[D]. 長沙:湖南農(nóng)業(yè)大學,2007
[6]Luoreng Z M,Wang X P,Ma Y,et al.Three novel SNPs in the coding region of the bovine MC3R gene and their association with growth traits [J].Biochemical Genetics,2014,52(1/2):116–124.
[7]羅仍卓么,王興平,李峰,等.生長抑素基因第1外顯子多態(tài)性與湘西黃牛體尺性狀的關聯(lián)分析[J].中國畜牧獸醫(yī),2012,39(11):165–168.
[8]李志才,易康樂.湘西黃牛的H–FABP基因?qū)Υ罄硎y和肌內(nèi)脂肪含量相關性分析[J].中國牛業(yè)科學,2010,36(1):1–4.
[9]Wang X P,Luoreng Z M,Li F,et al.Genetic polymorphisms of lipoprotein lipase gene and their associations with growth traits in Xiangxi cattle[J]. Molecular Biology Reports,2012,39(12):10331–10338.
[10]王興平,羅仍卓么,李峰,等.湘西黃牛LPL基因exon5的多態(tài)性與生長性狀的相關性[J].江蘇農(nóng)業(yè)學報,2012,28(4):792–796.
[11]王興平,羅仍卓么,李峰,等.湘西黃牛LPL基因第2外顯子的遺傳多態(tài)性及其與生長性狀的關聯(lián)分析[J].江蘇農(nóng)業(yè)學報,2012,28(6):1349–1353.
[12]張潤鋒,陳宏,支立峰,等.南陽牛IGF–IR、CAPNⅡ和UCP–3 基因多態(tài)性與生長性狀的相關分析[J].農(nóng)業(yè)生物技術學報,2010,18 (5):893–898.
[13]Wang Y,Nishida S,Boudignon B M,et al.IGF–I receptor is required for the anabolic actions of parathyroid hormone on bone[J].Bone Miner BES,2007,22(9):1329–1337.
[14]Rosenfeld R G.Insulin–like growth factors and the basis of growth[J].New England Journal of Medicine,2003,349(23):2184–2186.
[15]Renaville R,Hammadi M,Portetelle D.Role of the somatotropic axis in the mammalian metabolism[J]. Domestic Animal Endocrinology,2002,23(1/2):351– 360.
[16]Baserga R,Hongo A,Rubini M,et al.The IGF–1 receptor in cell growth,transformation and apoptosis[J]. Biochmica et Biophysica Acta,1997,1332(3):105–126.
[17]Curi R A,de Oliveira H N,Silveira A C,et al. Association between IGFI,IGFIR and GHRH gene polymorphisms and growth and carcass traits in beef cattle[J].Livestock Production Science,2005,94(3):159–167.
[18]Zhang R,Li X.Association between IGF–IR,m–calpain and UCP–3 gene polymorphisms and growth traits in Nanyang cattle[J].Molecular Biology Reports,2011,38(3):2179–2184.
[19]Bakhtari A,Rahmani R,Edriss M A,et al.Association of bovine insulin-like growth factor–I receptor polymer- phism gene with milk production traits in Iranian Najdi and Holstein dairy cows[J].Cuban Journal of Agricultural Science,2010,44(4):343–346.
[20]Sambrook J,Russell D W.分子克隆實驗指南[M].3版.黃培堂,王棟梁,周曉巍,等譯.北京:科學出版社,2002.
[21]劉桂瓊,曹勤忠,姜勛平,等.小梅山豬促卵泡素β基因多態(tài)性及其與繁殖性能的關系[J].中國畜牧雜志,2004,40(12):6–8.
[22]梁春年.牦牛MSTN和IGF–IR基因的克隆及SNPs與生產(chǎn)性能的相關性[D].甘肅農(nóng)業(yè)大學動物科技學院,2011.
[23]Szewczuk M,Zych S,Wójcik J,et al.Association of two SNPs in the coding region of the insulin–like growth factor 1 receptor (IGF1R) gene with growth–related traits in Angus cattle[J].Journal of Applied Genetics,2013,54(3):305–308.