張錦明,張曉軍,李云鋼,劉 健,徐白萱,王瑞民,田嘉禾
(中國人民解放軍總醫(yī)院 核醫(yī)學(xué)科,北京 100853)
11C-Raclopride為經(jīng)典的多巴胺D2受體顯像劑,臨床用于帕金森氏病(PD)的鑒別診斷和研究[1-2]。通常采用11C-CH3I或11C-CH3-Triflate與去甲基Raclopride前體化合物芳香環(huán)上的氧-碳甲基化反應(yīng)合成11C-Raclopride,合成效率為5%~60%[3-5],由于采用氣相法合成11C-CH3I的效率低(20%~30%),以及沒有選擇合適的甲基化反應(yīng)方式等,致使最終產(chǎn)品的放射性活度較低[6],通常合成產(chǎn)物的放射性活度低于2 GBq。試嘗用18F-Fallypride取代11C-Raclopride,但18F-Fallypride為D2和D3受體顯像劑,其對(duì)D2的親和力遠(yuǎn)高于11C-Raclopride[7]。18F-Fallypride在早期PD患者時(shí),由于紋狀體攝取放射性很高,不容易區(qū)別單側(cè)紋狀體的上調(diào),因此臨床診斷仍依賴11C-Raclopride。
11C-Raclopride已經(jīng)成功應(yīng)用于PET/CT顯像,文獻(xiàn)也報(bào)導(dǎo)了多種11C-Raclopride的合成方法,每種方法均有優(yōu)缺點(diǎn)。合成原料采用高活性的11CH3-Triflate替代11CH3I,可以提高合成效率,降低前體用量[8-10]。仍有文獻(xiàn)[11]用11CH3I作為標(biāo)記前體,直接合成11C-Raclopride,其不校正合成效率為9%~14%(從有11CO2計(jì)),該方法效率高于Ishiwata 等的采用11CH3-Triflate合成效率11%~14%(從11CH3I計(jì)),但采用11CH3I合成時(shí)前體用量為11CH3-Triflate 的4倍。合成方法有三種:1) 溶液法,即將前體溶于合適溶劑,放射性氣體通入到溶劑中,該方法的優(yōu)點(diǎn)是溶劑對(duì)放射性氣體的捕獲效率高度,由于接觸面小,導(dǎo)致合成效率偏低;2) SEP-PAK柱上反應(yīng)法[12],即將前體溶于微量溶液后裝載于SEP-PAK柱上,放射性氣體通過SEP-PAK柱,在柱上反應(yīng),放射性的捕獲效率與溶劑種類相關(guān),效率同樣不高;3) LOOP法[12],即將溶有前體的溶劑裝載于HPLC的LOOP環(huán)中,將放射性氣體通過LOOP環(huán),通過增加接觸面提高反應(yīng)效率,放射性氣體的捕獲效率與溶劑有關(guān),其中以2-丁酮和環(huán)已烷效率最高,但該方法需制備特殊的前體[13]。Shaw等[14]為了減少有機(jī)溶劑在產(chǎn)品中殘留,采用乙醇作溶劑合成11C-Raclopride,合成效率僅為3.7%,與實(shí)際應(yīng)用有較大的差距。因此,在臨床實(shí)際應(yīng)用中,必須選擇一種合適的方法,以保證產(chǎn)品的放化純度和比活度達(dá)到要求,產(chǎn)品的活度和放射性濃度要較高,注射體積不宜過大,產(chǎn)品中乙醇濃度低于10%。目前文獻(xiàn)報(bào)導(dǎo)合成總活度及濃度均偏低,有的僅合成1.1 GBq[15],導(dǎo)致注射體積大或乙醇濃度高。
本研究選擇液相法合成11CH3I,合成效率達(dá)60%,并將之轉(zhuǎn)化為高活性11CH3-Triflate,以丙酮為溶劑,采用分析型HPLC分離產(chǎn)品,提高11C-Raclopride濃度,減小體積。采用國產(chǎn)商品化的碳-11多功能合成模塊,通過提高液相法合成11C-CH3I的效率,并優(yōu)化合成流程及純化工藝,使產(chǎn)品可滿足PET/CT檢查的需求。
HM-20 回旋加速器:日本住友重機(jī)械株式會(huì)社;自動(dòng)化碳-11多功能合成模塊:內(nèi)置液相法碘代甲烷合成儀、 Triflate在線轉(zhuǎn)換、半制備HPLC系統(tǒng)(配紫外和放射性檢測(cè)器),派特(北京)科技有限公司;分析型HPLC儀:配Biocan Flow Count放射性檢測(cè)器和2487紫外檢測(cè)器,美國Waters公司;Endosafe-PTS細(xì)菌內(nèi)毒素快速檢測(cè)儀:美國 Charles River公司;Sep-Pak C-18柱和CM柱:美國Waters公司;1 mol/L的氫化鋰鋁四氫呋喃溶液:美國Aldrich公司;57%HI(AR), 百靈威J&K公司,乙醇(USP級(jí)):美國Milennium公司;丙酮(AR):美國Sigma公司; 去甲基Raclopride和2-丁酮:江蘇常熟華益化工有限公司產(chǎn)品;Raclopride氫溴酸鹽標(biāo)準(zhǔn)品和1 mol/L 四丁基銨水溶液:美國Aldrich公司。
采用HM-20加速器經(jīng)14N(p,α)11C反應(yīng)在靶內(nèi)產(chǎn)生11CO2,直接將11CO2傳到自動(dòng)化碳-11多功能合成模塊,用液氮冷卻的不銹鋼LOOP環(huán)捕獲,隨后從液氮中移出LOOP環(huán),將LOOP環(huán)內(nèi)的11CO2釋放到有0.2 mL 1 mol/L的氫化鋰鋁四氫呋喃(THF)溶液反應(yīng)管中,隨后,通入氮?dú)獠⒓訜岢HF,反應(yīng)管中加入0.2 mL 57%氫碘酸,生成11C-CH3,加熱并用氮?dú)鈱⒅糁罷riflate轉(zhuǎn)化爐中,11C-CH3在線轉(zhuǎn)換成11C-CH3-Triflate。
將含有0.1~0.4 mg的Nor-Raclopride溶于0.2 mL丙酮中,加入10 μL 0.1~ 5 moL/L NaOH, 通入在線轉(zhuǎn)化的11C-CH3-Triflate,常溫或者85 ℃加熱5 min后,經(jīng)半制備HPLC分離,分離柱為Alltech C-18 250×10 mm,流動(dòng)相為V(乙腈)∶V(0.1 mol/L 甲酸銨溶液)=4∶6,收集7~8 min的產(chǎn)品,根據(jù)峰面積分析產(chǎn)品的標(biāo)記率。
將11C-CH3-Triflate通入到新配制的200 μL含0.2 mg去甲基Raclopride/10 μL的0.5 mol/L氫氧化鈉的丙酮溶液(圖1中的C)內(nèi),觀察R4的放射性計(jì)數(shù)達(dá)到最大時(shí),停止通氣。常溫下反應(yīng)1 min后,將V14內(nèi)的流動(dòng)相加到反應(yīng)瓶終止反應(yīng),并轉(zhuǎn)移到中轉(zhuǎn)瓶,將中轉(zhuǎn)瓶?jī)?nèi)溶液轉(zhuǎn)移到HPLC柱上純化(圖1中D部分),流動(dòng)相為V(乙腈)∶V (0.1 mol/L 甲酸銨溶液)=4∶6,流速為6 mL/min,收集7~8 min的放射性溶液入固相萃取瓶,固相萃取瓶中預(yù)先加入60 mL水,以稀釋HPLC收集液。將經(jīng)稀釋后溶液轉(zhuǎn)移到Sep-Pak C-18柱上,用10 mL水清洗Sep-Pak C-18柱后,用1 mL乙醇將產(chǎn)品從Sep-Pak C-18柱上洗脫(圖1中E部分),并加生理鹽水稀釋,過無菌濾膜。
在鉛玻璃后檢查產(chǎn)品的澄明度, 用pH試紙檢測(cè)。根據(jù)最終體積計(jì)算乙醇濃度,采用Endosafe-PTS細(xì)菌內(nèi)毒素快速檢測(cè)儀測(cè)注射液的熱原;按中國藥典 2010年版二部附錄Ⅺ H進(jìn)行細(xì)菌檢測(cè)。
圖1 全自動(dòng)合成11C-Raclopride的模塊Fig.1 The module of auto-synthesis for 11C-Raclopride
圖2 合成11C-Raclopride線路圖Fig.2 Scheme of 11C-Raclopride synthesis
采用HPLC測(cè)量放化純度和比活度,檢測(cè)波長(zhǎng)為254 nm;分析柱為反相Nova-Park C-18柱(3.9 mm×150 mm),流動(dòng)相為V(乙腈)∶V (0.1 mol/L 甲酸銨溶液)=4∶6,流速為1 mL/min。分別采用11C-Raclopride、標(biāo)準(zhǔn)品、11C-Raclopride和標(biāo)準(zhǔn)品混合物進(jìn)樣,測(cè)量產(chǎn)品的相對(duì)保留時(shí)間,并計(jì)算產(chǎn)品的比活度和放化純度。
將11C-CH3-Triflate通入到含有0.2 mL丙酮溶解的0.4 mg 去甲基Raclopride(游離堿)/3 μL 5 mol/L NaOH的反應(yīng)瓶中,常溫下反應(yīng),經(jīng)半制備HPLC分離,結(jié)果示于圖3,有3個(gè)主要的放射性峰。
圖3 半制備HPLC純化11C-Raclopride放射性圖譜Fig.3 The radioactivity trace of 11C-Raclopride from Semi-HPLC
采用單獨(dú)進(jìn)11C-CH3-Triflate樣品,確認(rèn)放射性峰1為未反應(yīng)的11C-CH3-Triflate峰,收集放射性峰3樣品與標(biāo)準(zhǔn)的Raclopride在分析HPLC上紫外對(duì)照,放射性峰3為11C-Raclopride峰,而放射性峰2為副反應(yīng)峰。
結(jié)果表明,游離堿前體的穩(wěn)定性不高,常溫貯存會(huì)造成前體分解,合成效率下降,同時(shí)出現(xiàn)了多個(gè)雜峰(圖4)。因此,建議低溫存貯游離堿前體。
圖4 常溫貯存的游離堿前體合成 11C-Raclopride的產(chǎn)品HPLC圖譜Fig.4 The radioactivity trace of 11C-Raclopride with RT stored precursor at Semi-HPLC
反應(yīng)體系中NaOH的量從1 μmol到50 μmol,產(chǎn)品的合成效率基本不變(見圖5),低量堿時(shí),放射性峰1量變大,而峰2變小(圖5b);加大堿量,放射性峰1量變小幾乎消失,而峰2變大(圖5a)。
由于前體去甲基Raclopride分子上有多個(gè)可甲基化的基團(tuán),副反應(yīng)可能有兩個(gè),一是五元環(huán)上的仲胺可甲基化為季胺,用40%乙腈水溶液作流動(dòng)相,單獨(dú)收集放射性峰2分析,放射性峰2不能被陽離子交換樹脂吸附,說明峰2為無電荷,不是季胺鹽;另一是酰胺上的氮原子甲基化,該甲基化需要強(qiáng)堿下進(jìn)行[16],而合成體系中堿的量主要影響了副反應(yīng)的效率。從圖5b發(fā)現(xiàn),增加堿量,放射性峰2含量增加,副反應(yīng)可能為酰胺上C-N甲基化。
a—10 μL 5 moL/L NaOH;b—2 μL 0.5 moL/L NaOH; 圖5 不同的堿量對(duì)11C-Raclopride合成及副反應(yīng)的影響 a—10 μL 5 moL/L NaOH;b—2 μL 0.5 moL/L NaOHFig.5 Synthesis of 11C-Raclopride and by-production at different base
本研究也嘗試采用LOOP法合成,采用100 μL的2-丁酮溶解1 mg的游離堿去甲基Raclopride前體,體系中加入10 μL 1 mol/L四丁基銨水溶液,將該溶液裝載于HPLC的 LOOP環(huán)中,但未能得到產(chǎn)品??赡艿脑蚴俏春铣伤亩』@的去甲基Raclopride前體,體系中含有水,可能影響了產(chǎn)品的合成。
采用碳-11自動(dòng)化合成模塊,以40 μA的束流轟擊氣體靶15 min,可收集到含(7.4±0.6) GBq的HPLC淋洗液,再經(jīng)固相萃取,可得到3.7~5.6 GBq的11C-Raclopride。放射性損失主要是產(chǎn)品在C-18柱上的漏穿和殘留,共約20%??偤铣蓵r(shí)間從11CO2開始為28 min,校正合成效率為(55.1+8.4)%(以11CH3I計(jì),n=40)。與文獻(xiàn)[17]相比,本方法模塊內(nèi)置的固相萃取提高了合成速度。而文獻(xiàn)中采用BioScan公司的ReForm-Plus system,不但轉(zhuǎn)移速度慢,而且需要獨(dú)立的熱室。
最終產(chǎn)品為含10%乙醇的無色透明液體,pH為6.0~7.0。 產(chǎn)品無菌、無熱源。
將11C-Raclopride產(chǎn)品與標(biāo)準(zhǔn)品混和后在HPLC上共進(jìn)樣,標(biāo)準(zhǔn)品的紫外保留時(shí)間為4.4 min,而樣品的放射性保留時(shí)間也為4.4 min,產(chǎn)品的相對(duì)保留時(shí)間為 1.0。鑒定產(chǎn)品為11C-Raclopride。
單獨(dú)將11C-Raclopride產(chǎn)品進(jìn)樣,測(cè)放化純度和比活度,結(jié)果表明,11C-Raclopride放化純度大于99%,比活度為1.73×1014Bq/g。產(chǎn)品的放射性濃度在370~550 MBq/mL,乙醇濃度低于10%。
本研究采用液相法合成11CH3I,其優(yōu)點(diǎn)是合成效率高,約為60%,高于氣相法的20%,因此可提高終產(chǎn)品的總活度,降低產(chǎn)品中乙醇的含量。最新文獻(xiàn)[19]研究表明,11CH3I的比活度與合成方法無關(guān),主要是加速器靶轟擊時(shí)高溫、高壓產(chǎn)生了非放射性的二氧化碳,如果通過多次預(yù)處理靶及傳輸管線和釋放系統(tǒng),可以將液相法合成11C標(biāo)記化合物的比活度提高到5 700 TBq/moL[20],遠(yuǎn)高氣相法的550 TBq/moL。 本研究未采用氦氣等飽和傳輸管線,因此比活度低于文獻(xiàn)值,但高于美國藥典規(guī)定的不低于18.5 TBq/moL標(biāo)準(zhǔn),滿足臨床受體顯像的要求。
參考文獻(xiàn):
[1] Kim J Y, Chung E J, Lee W Y, et al. Therapeutic effect of repetitive transcranial magnetic stimulation in Parkinson’s disease: analysis of11C- raclopride PET study[J]. Mov Disord, 2008, 23(2): 207-211.
[2] Politis M, Piccini P, Pavese N,et al. Evidence of dopamine dysfunction in the hypothalamus of patients with Parkinson's disease: an in vivo11C-raclopride PET study[J]. Exp Neurol, 2008, 214(1): 112-116.
[3] Langer O, Nagren K, Dolle F, et al. Precursor synthesis and radiolabelling of the dopamine D-2 receptor ligand C-11 raclopride from C-11 methyl triate[J]. J Labelled Compd Radiopharm,1999, 42: 1 183-1 193.
[4] Zheng Q H, Mock B H. Puricfication of carbon-11 PET radiotracers from unlabeled precursors by preparative HPLC and SPE[J]. Biomed Chromatogr, 2005, 19, 671-676.
[5] 張錦明,田嘉禾,姚樹林,等.11C-Raclopride的快速制備及生物學(xué)分布[J]. 中華核醫(yī)學(xué)雜志,2008,28(4):227-230.
Zhang Jinming, Tian Jiahe, Yao Shulin, et al. Fast synthesis of11C-Raclopride and its initial PET study on animal model[J].Chin J Nucl Med, 2008, 28(4):227-230(in Chinese).
[6] 李軍,侯寧,李廣義. 多巴胺D2受體正電子示蹤劑-11C-雷氯必利的自動(dòng)化合成及質(zhì)量控制[J]. 中國藥學(xué)雜志,2007,42:706-708.
Li Jun, Hou Ning, Li Guangyi. Automatic Synthesis and Quality control of11C-Raclopride Dopamine D2 receptor PET Radiotracer[J]. Chinese Pharm J, 2007, 42: 706-708(in Chinese).
[7] Paulis T. The discovery of epidepride and its analogs as high-affinity radioligands for imaging extrastriatal dopamine D(2) receptors in human brain[J].Cur Pharma Des, 2003, 9: 673-696
[8] Kersemans K , Meestere D D, Goethals I ,et al. Improved HPLC puri cation strategy for11C-raclopride and11C-DASB leading to high radiochemical yields and more practical high quality radiopharmaceutical formulations[J]. Appl Radiat Isot, 2013, 78: 62-67.
[9] 張錦明,田嘉禾,王武尚,等. 在線制備11C-Triflate-CH3[J]. 同位素,2006,(02):124-128.
Zhang Jinming, Tian Jiahe, Wang Wushang, et al. Preparation of11C-Triflate-CH3on-line[J]. Journal of Isotopes, 2006, (2): 124-128(in Chinese).
[10] Ishiwata K, Ishii S-I, Senda M. An alternative synthesis of11C-raclopride for routine use[J]. Ann Nuc Med,1999, 13: 195-197.
[11] Wilson A A, Garcia A, Houle S, et al. Utility of commercial radiosynthestic modules in captive solvent11C-methylation reactions[J]. J Label Compd Radiopharm, 2009, 52: 490-492.
[12] Iwata R, Pascalic A, Bognic A, et al. A simple loop method for the automated preparation of11C-raclopride from11C-methyl triflate[J]. Appl Radiat Isot, 2001, 55: 17-22.
[13] Shao X ,Kilbourn MP.A simple modication of GE tracerlab FX C Pro for rapid sequential preparation of11C -carfentanil and11C -raclopride[J].Appl Radiat Isot, 2009, 67: 602-605.
[14] Shao X, Schnau PL, Fawaz MV, et al. Enhanced radiosyntheses of11C-raclopride and11C-DASB using ethanolic loop chemistry[J]. Nucl Med Biol, 2013, 40: 109-116.
[15] 閆衛(wèi)紅,程焱,高碩,等. 輕型帕金森病D2受體的PET顯像[J]. 中華神經(jīng)外科雜志,2006,39:374-377.
Yan Weihong, Cheng Yan, Gao Shuo, et al. PET image of D2receptor in Parkinson. s disease[J].Chinese J Neurology, 2006, 39: 374-377(in Chinese).
[16] 王明芳,張錦明,唐剛?cè)A,等.11C-CH3-Triflate甲基化法合成11C-PK11195[J]. 同位素,2010,23(4):230-234.
Wang Mingfang, Zhang Jinming, Tang Guanghua et al. Radiosynthesis of11C-PK11195 by Using [11C]Methyl Triflate[J]. Journal Of Isotopes, 2010, 23(4): 230-234(in Chinese).
[17] Gomez-Vallejo V, Llop J. Fully automated and reproducible radiosynthesis of high specific activity11C-raclopride and11C-Pittsburgh compound-B using the combination of two commercial synthesizers[J]. Nucl Med Commun, 2011, 32: 1 011-1 017.
[18] Iwata R, Ido T, Ujiie A , et al. Sugahara M. Comparative study of specic activity of [11C ] methyl iodide: a search for the source of carrier carbon Int.[J]. J Radiat Appl Instrum(A), 1988, 39 (1): 1-7.
[19] Vanessa Go′mez-Vallejo, Jordi Llop. Specic activity of [11C]CH3I synthesized by the “wet” method: Main sources of non-radioactive carbon[J]. Appl Radiat Isot, 2009, 67: 111-114.
[20 ] Ermert J, Stusgen S, Lang M, et al. High molar activity of [11C ] TCH346 via [11C ]methyl tri .ate using the “wet” [11C ]CO2reduction method[J]. Appl Radiat Isot, 2008, 66: 619-624.