肖興莉,楊朝鮮,高小青,陳秀(瀘州醫(yī)學(xué)院:附屬醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科;神經(jīng)生物教研室,四川瀘州646000)
海馬神經(jīng)元原代培養(yǎng)方法
肖興莉,楊朝鮮1,高小青1,陳秀
(瀘州醫(yī)學(xué)院:附屬醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科;1神經(jīng)生物教研室,四川瀘州646000)
目的:掌握海馬神經(jīng)元的有效培養(yǎng)方法和細胞保存培養(yǎng)方法,利于細胞模型的建立。方法:取出出生1 d的SD大鼠海馬,聯(lián)合機械吹打法和胰酶消化法分離海馬細胞,加入DMEM/F12+10%FBS制備細胞懸液,接種在玻璃培養(yǎng)瓶內(nèi)1~2 d,收集上清細胞液、離心、重懸細胞;再接種在培養(yǎng)板上,培養(yǎng)1 d后,全液更換為Neurobasal+2%B27,以后每3 d半量換液。利用倒置相差顯微鏡觀察細胞形態(tài)變化;利用NF-200、Neu-N抗體免疫熒光、免疫組化技術(shù)鑒定海馬神經(jīng)元;利用96孔板培養(yǎng)細胞,計數(shù)每個孔海馬細胞比例;利用MTT法測定細胞活性。結(jié)果:接種在培養(yǎng)板上第1 d細胞貼壁,第3~4 d細胞長出突觸,第7~8 d細胞突觸生長迅速,第11~13 d細胞交織成網(wǎng)狀,第15~20 d細胞生長旺盛,20 d后細胞形態(tài)開始改變。免疫熒光技術(shù)鑒定細胞突觸呈紅色,細胞核呈綠色;免疫組化技術(shù)鑒定突觸和胞核都呈棕黃色。細胞純度95~97.5%,細胞活性以15~17 d最高(93.94~95.13%),與其他時間點比較,P<0.01。結(jié)論:該方法簡便可行,節(jié)約取材及時間,可獲得純度高、活性好的海馬細胞,為后續(xù)研究提供實驗基礎(chǔ)。
海馬神經(jīng)元;原代培養(yǎng);細胞保存培養(yǎng)
海馬是大腦邊緣系統(tǒng)的重要結(jié)構(gòu)之一,參與內(nèi)臟活動和情緒活動的調(diào)節(jié),以及個人保存和種族保存的維持,同時與學(xué)習(xí)記憶活動密切相關(guān),特別是近期記憶。海馬是中樞神經(jīng)系統(tǒng)神經(jīng)形成的特殊結(jié)構(gòu)[1]。近來研究證明,海馬結(jié)構(gòu)早期變化參與Alzheimer'sdisease(阿爾茨海默病,AD)、海馬硬化癥、癡呆等相關(guān)神經(jīng)元退行性疾病的病理生理過程[2]。正是由于海馬結(jié)構(gòu)和功能的重要性,對于它的研究較多,但是在細胞水平和亞細胞結(jié)構(gòu)方面的研究較少,本實驗提供了一較好的細胞模型基礎(chǔ),為后續(xù)研究做準(zhǔn)備。
1.1 材料
1.1.1 主要試劑和器材
大鼠抗NF-200單克隆抗體購自武漢博士德生物工程有限公司;兔抗Neu-N單克隆抗體購自武漢博士德生物工程有限公司;胎牛血清(FBS)購自Hyclone公司;胰蛋白酶購自Sigma公司;B27 Serum-Frrsupplement購自Gibco公司;DMEM/F12培養(yǎng)基購自Hyclone公司;多聚-D-賴氨酸(poly-D-lysine)購自Sigma公司;Neurobasal培養(yǎng)液購自Gibco公司;Goatanti-rabbit IgG(H+L)FITC conjugated購自北京博奧森生物技術(shù)有限公司,羅丹明標(biāo)記山羊抗小鼠IgG購自北京中杉金橋;抗熒光淬滅封片液(強)購自碧云天生物技術(shù)研究所;MTT購自Sigma公司;青霉素-鏈霉素購自北京博奧森生物技術(shù)有限公司;培養(yǎng)板、培養(yǎng)瓶若干。
1.1.2 實驗動物
新生24h的SD大鼠2只,購自瀘州醫(yī)學(xué)院實驗動物中心。
1.2 主要試劑
1.2.1 主要試劑的配置
①細胞爬片液的配置:用購自Sigma公司的poly-D-lysine原液分裝,以1∶10的比例用0.01mol/L的PBS液配置,4°C保存?zhèn)溆?;②FBS的滅活:FBS用10m l的離心管分裝備用,-20°C保存。用前先在37°C溶解,再在55°C~60°C下滅活30min;③細胞種植液和無血清培養(yǎng)液的配置:DMEM/F12+10% FBS+1%青霉素-鏈霉素;Neurobasal+2%B27+1%青霉素-鏈霉素;4°C保存?zhèn)溆?;④一抗和二抗的配置:NF-200、Neu-N、Goatanti-rabbit IgG(H+L)FITC conjugated、羅丹明標(biāo)記山羊抗小鼠IgG分別用0.01 mol/L的PBS稀釋至1∶300、1∶100,一抗-20°C保存?zhèn)溆?;二抗現(xiàn)用現(xiàn)配。
1.2.2 細胞爬片的制備
選擇與培養(yǎng)板大小合適的蓋玻片,清洗、泡酸過夜、消毒、烘干。分別放入培養(yǎng)板內(nèi),每個蓋玻片上滴一滴爬片液、鋪勻、37°C孵箱孵育過夜;次日吸出多余的爬片液,用無菌蒸餾水沖洗3遍,讓其自然風(fēng)干,至少4h,備用[3]。
1.2.3 取材
①消毒:用新生SD大鼠2只,先用酒精浸泡1 min,再用碘伏消毒;②固定、暴露、定位:左手固定頭部,新生鼠頭腹曲,首先用無菌眼科剪把皮膚和顱骨剪開,向前翻;暴露出全部大腦,在其中后1/3的地方輕輕剝離出像月牙狀的對稱海馬組織(見圖1);③清洗:放入盛有無菌PBS的培養(yǎng)皿中,剝離腦膜,清洗組織;④剪切、機械吹打、消化:干凈后放入無菌的干燥培養(yǎng)皿內(nèi),用眼科剪剪碎成稀糊狀,再吸入裝有組織體積4倍的DMEM/F12培養(yǎng)液的離心管內(nèi),用吸管吹打50次左右,靜置5min后,吸取上清液,剩下的沉淀再按照相同的比例加入DMEM/F12,再加入等體積的0.25%的胰酶,在常溫下,邊吹打邊觀察,液體變得均勻混濁后加入等體積的FBS終止消化。最后配平,1100 r/min離心,收集細胞沉淀。以上都要在冰上操作。
圖1 分離出的新鮮海馬組織
1.2.4 細胞懸液的制備和接種
收集的細胞加入細胞體積3倍的種植液,吹打混勻,用2%臺盼藍和白細胞計數(shù)板粗略檢測活細胞濃度,接種在50ml的玻璃培養(yǎng)瓶中。
1.2.5 細胞差速貼壁
細胞接種在培養(yǎng)瓶1~2 d后,收集上清液、1100 r/min離心、收集細胞。同樣加入細胞體積3倍的種植液,吹打混勻,用2%臺盼藍和白細胞計數(shù)板粗略檢測活細胞濃度,1×104~1×105個/L接種300μl的細胞懸液在多聚賴氨酸包被好的24孔培養(yǎng)板上。培養(yǎng)1 d后,全量更換種植液為無血清培養(yǎng)液,此后每3 d半量換液,每天觀察細胞的生長情況。
1.2.6 細胞保存培養(yǎng)
對于一次取材太多,為減少取材的次數(shù),不讓細胞浪費,可把培養(yǎng)瓶內(nèi)的細胞在第一次收集后,又重懸細胞懸液,接種在新的培養(yǎng)瓶內(nèi),繼續(xù)貼壁生長,4 d左右又可收集細胞懸液,繼續(xù)前方法,把貼壁的細胞用胰酶消化收集、離心、重懸、接種在培養(yǎng)板上,如上方法培養(yǎng)。
1.2.7 細胞的鑒定
對生長成熟的海馬神經(jīng)元去除培養(yǎng)基,4%多聚甲醛固定細胞、0.3%Tritonx-100打孔、0.3%H2O2去除過氧化物酶、山羊血清封閉非特異性抗體、一抗NF-200、Neu-N 4°C過夜、熒光二抗閉光室溫孵育1 h、免疫熒光檢測。
1.2.8 細胞純度檢測
細胞純度計算:利用96孔板培養(yǎng)細胞,一個孔表示一個視野,計數(shù)每個孔海馬神經(jīng)元的比例:每個孔海馬神經(jīng)元總數(shù)/每個孔細胞總數(shù)×100%,依次得到96個值;采用Excel繪圖,直觀的看出神經(jīng)元的純度百分比分布情況。
1.2.9 活性檢測
采用MTT法測定細胞活性。細胞懸液接種在96孔板上,培養(yǎng)不同時間點的海馬細胞,吸去培養(yǎng)液后,每個孔加入100~200μl 10%的MTT,培養(yǎng)4 h輕吸去MTT后加入等量的DMSO,在恒溫水浴振蕩器中震蕩10 min,在酶聯(lián)免疫檢測儀上測定吸光度值(同時設(shè)定空白對照,即:未加入細胞)[3]。計算方法:細胞生存率=實驗組吸光度/對照組吸光度值× 100%;重復(fù)10次。
1.3 統(tǒng)計分析
采用SPSS19.0統(tǒng)計分析軟件,利用x±s計量分析。各組間比較采用單因素方差分析,用LSD法進行兩兩比較。按照α=0.05的水準(zhǔn)判斷是否具有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 細胞形態(tài)觀察(如圖2)
圖2 不同時間點的細胞形態(tài)變化
2.2 NF-200、Neu-N免疫熒光鑒定和免疫組化鑒定(圖3)
圖3 海馬神經(jīng)元NF-200、Neu-N鑒定
2.3 細胞純度檢測
通過倒置相差顯微鏡觀察96孔板成熟海馬神經(jīng)元(胞體圓、折光性強、立體感強、突起粗大),計算海馬神經(jīng)元的細胞純度(圖4)。
圖4 SD大鼠海馬細胞純度頻次分布
2.4 細胞活性情況
海馬神經(jīng)元在不同時間點細胞生存率不同,從1~15 d海馬神經(jīng)元生存率逐漸升高;15~17 d大概在平臺期,以后細胞生存率降低,迅速凋亡見表1。
表1 不同時間點海馬神經(jīng)元活性情況
海馬是大腦的重要結(jié)構(gòu)之一,體積小、功能多樣、位置隱蔽、分層復(fù)雜,包含有古皮層(3層)和新皮層(6層),主要有椎體細胞和細顆粒細胞組成,參與大腦邊緣系統(tǒng)構(gòu)成,在神經(jīng)科學(xué)領(lǐng)域?qū)τ谠撓到y(tǒng)的研究仍是熱點和難點之一[1]。神經(jīng)系統(tǒng)的任務(wù)是接收、發(fā)放、處理、存儲和提取信息,這些任務(wù)都是通過其基本單位——神經(jīng)細胞來完成。海馬神經(jīng)元就是重要的神經(jīng)元之一[4]。由于神經(jīng)元是形態(tài)各異、功能復(fù)雜、化學(xué)性遞質(zhì)繁多的特化細胞,這就決定了神經(jīng)元培養(yǎng)的特殊性。由于海馬組織由神經(jīng)元和非神經(jīng)元構(gòu)成,取材的部位不能完全準(zhǔn)確這些原因都會影響神經(jīng)元的純度。除此之外,海馬細胞原代培養(yǎng)還有取材來源和培養(yǎng)調(diào)節(jié)苛刻、步驟繁瑣、費時等情況。Neurobasal培養(yǎng)基是一種能滿足新生和成體腦神經(jīng)元細胞培養(yǎng)的特殊基礎(chǔ)培養(yǎng)基,含有抑制膠質(zhì)細胞生長的成分,B27是一種神經(jīng)元生長及維持的添加劑,能夠代替血清中的某些成分,故聯(lián)合使用能提高神經(jīng)元的純度和活性。本實驗利用成纖維細胞、膠質(zhì)細胞比神經(jīng)元貼壁快的原理,即差速貼壁法,能有效的提高神經(jīng)元的純度。同時利用玻璃培養(yǎng)瓶聯(lián)合培養(yǎng)板培養(yǎng),即細胞的保存培養(yǎng):在一次取材多時,可以先讓細胞在玻璃培養(yǎng)瓶內(nèi)生長備用,從而解決一次取材少但又要多次取材的難題。
NF-200是神經(jīng)纖維絲的一種,主要表達在胞漿和突觸,參加構(gòu)成神經(jīng)細胞的骨架。Neu-N是一種特有的神經(jīng)元DNA結(jié)合蛋白,分子質(zhì)量46~48 kDa,它的功能還不是很清楚,但Soylemezoglu等研究證實:它是神經(jīng)系統(tǒng)專有的細胞核調(diào)節(jié)分子之一[5],它們都是海馬神經(jīng)元特有的結(jié)構(gòu)成分。本實驗聯(lián)合免疫熒光、免疫組化方法對神經(jīng)元進行細胞核、軸突的鑒定,更具有說服力。
大部分的研究集中在動物組織層面,對于細胞及亞細胞結(jié)構(gòu)的研究尚少。細胞培養(yǎng)的質(zhì)量直接影響到研究的進展,也將影響到實驗結(jié)果的真實性和可靠性。為此,本實驗就提供了一種穩(wěn)定、簡單、細胞純度和活性較高的細胞培養(yǎng)方法,為后續(xù)研究提供細胞基礎(chǔ)。
1.李云慶.Basic Neuroscience[M].北京:高等教育出版社,2010,260~261.
2.Cheng Y,Yu Lc.Galanin Protects Am yloid-β-Induced neurotoxicity on primary cultured hippocampal neurons of rats[J].Journalof Alzheimer'sDisease,2010,10:1143~1157.
3.D.L.斯佩克特,R.D.戈德曼.CellA LaboratoryManual[M].北京:科學(xué)出版社2001,953~954.
4.鄭志竑,林玲.神經(jīng)細胞培養(yǎng):理論與實踐[M].北京:科學(xué)出版社,2002,4~29.
5.GillSK,IshakM,RyleteRJ,etal.Exposureofnuclearantigens in form alinfixed,paraffin embedded necropsy human spinal cord tissue:Detection of NeuN[J].Journal of NeuroscienceMethods,2005,148:26~35.
(2013-06-28收稿)
Primary culturemethod of hippocam pal neurons
Xiao Xingli,Yang Chaoxian1,Gao Xiaoqing1,Chen Xiu1
Department of Neurology,the Affiliated Hospital of Luzhou Medical College;1Department of Neurological Biology,Luzhou Medical College
Ob jective:To establish an effective culturemethod of hippocampalneuronsand preservable cells for the establishimentof cellmodels.Methods:SD rathippocampal neruons(born 1 day)were isolated bymechanical blow and pancreatic enzyme digestion.DMEM/F12+10%FBSsuspended hippocampalneuronswere inoculated on the glassculture vessels(1~2 days).The upper cellsuspensionwas collected,centrifugated,resuspended and inoculated on orifice plates forone day.Themedium was replaced by Neurobasal+2%B27 every 3 days.Inverted phase contrast microscopewasused toobservecellmorphologicalchangse.Hippocampusneuronalidentificationand cellactivitywere detected with immunocytochemistry and MTT.Resu lts:Hippocampal neuronswere adherent to orifice plates on the firstday.Thecellsynapsesgrew on the3th~4th day.Thecellsynapses reticulateon the11th~13th day.Thecellsgrew especially strongon the 15th~20th day and after the20th day therewas cellapoptosis.The cellsynapsewas red and nucleuswas green thatwas identified with immunofluorescent staining.The cell synapse and nucleuswere brownish yellowwith immunohistochemistry.Theneruon puritywas95%~97.5%.Thecellactivitywas thehighestin the15th~17th day(93.94%~95.13%)compared with other time growps(P<0.01).Conclusion:Our culturemethod is economical and can save a lot of time with simplicility and feasibity.The high purity and activity of hippocampal neuronsprovide theexperimentalbasisfor furtherstudy.
Hippocampalneurons;Primary culture;Preservablecellculture
R741
A
10.3969/j.issn.1000-2669.2014.02.014
肖興莉(1987-),女,住院醫(yī)師,碩士生,E-mail:245964222@qq.com