劉桓江 綜述,張 柳,王文雅 審校
(河北聯(lián)合大學附屬醫(yī)院骨科,河北唐山063000)
低位腰痛是椎間盤退變患者就診的最常見起因,也是影響成年人生活和工作能力的重要因素[1]。椎間盤切除術和脊柱融合術是常用的緩解疼痛的方法,但并不能恢復椎間盤的功能[2]。椎間盤源性的疼痛是由椎間盤炎癥、神經(jīng)支配增多以及椎間盤負荷過度引起的。椎間盤疾病的生物學療法近來被廣泛研究,修復和重塑椎間盤主要通過以下3條途經(jīng):生物分子療法、細胞療法、組織工程方法。以下將總結(jié)各種方法最新的研究進展,并且重點總結(jié)其應用優(yōu)勢和局限性。
合成代謝和分解代謝的平衡是維持健康椎間盤內(nèi)環(huán)境的重要因素,打破平衡會導致細胞外基質(zhì)的流失。生物分子療法的目的是誘導細胞減少分解因子的產(chǎn)生,或者增加合成因子的產(chǎn)生,從而促使細胞外基質(zhì)再生。生物分子和基因療法能夠在蛋白和基因水平改變細胞生物合成。若使這些方法有效,必須在組織中有大量的可利用細胞,使靶分子得到重組表達。由于這些原因,既往研究認為分子生物學療法在椎間盤退變的早期階段更有效。以下是幾種分子生物學方法治療椎間盤退變的研究。
1.1 促進基質(zhì)合成代謝 生長因子通過刺激基質(zhì)合成進而調(diào)節(jié)椎間盤細胞新陳代謝。轉(zhuǎn)化生長因子(transforming growth factor-β,TGF-β)和骨形成蛋白(bone morphogenetic protein,BMPs)能夠通過調(diào)節(jié)椎間盤細胞中糖胺聚糖、蛋白多糖、Sox9和2型膠原的含量促進軟骨的形成[3-4]。當把動物的髓核細胞培養(yǎng)在含有TGF-β和BMP-2的培養(yǎng)基中時,二者能正向調(diào)節(jié)1型膠原、糖胺聚糖及2型膠原mRNA的表達[5]。血小板衍生因子(platelet derived growth factor,PDGF)、成纖維細胞生長因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)和胰島素樣生長因子(insulinlike growth factor,IGF-1)這3種蛋白分裂素,已經(jīng)被證實能刺激牛髓核細胞增殖。最近,Kim等[6]證實IGF-1在牛的髓核細胞中能夠增強合成代謝,并能提高BMP-7的作用。Gruber等[7]研究發(fā)現(xiàn),當退變的纖維環(huán)細胞處于IGF-1和PDGF中時,細胞凋亡加強。Wang等[8]把BMP-7和動物椎間盤細胞培養(yǎng)在藻酸鹽凝膠中,證實能促進蛋白多糖合成。Masuda等[9]在動物的椎間盤退變模型中注射BMP-7,椎間盤的生物化學成分得到修復。Imai等[10]將人重組BMP-7注射進動物的椎間盤中,增加了椎間盤高度。相對于重組生長因子而言,合成肽可能是一種更有效更安全的生物分子。已證實Link N是一種具有類似生長因子功能的合成肽,能有效刺激糖胺聚糖基因表達并且抑制蛋白酶的表達[11-12]。
1.2 基因療法 由于生物分子半衰期較短,所以研究一種長效的治療方法顯得尤為重要?;虔煼ㄒ呀?jīng)被用作一種增強椎間盤細胞新陳代謝的方法。慢病毒載體和腺病毒相關載體(adenoviral-associated vectors,AAV)已經(jīng)被應用于修復椎間盤組織。Leckie等[13]發(fā)現(xiàn),AVV2能引起椎間盤細胞產(chǎn)生BMP-2或TIMP-1蛋白,延緩退變。但是在這些載體應用于臨床之前其本身的免疫原型和其基因產(chǎn)物的長期療效仍然是一個亟待解決的問題。
1.3 抑制基質(zhì)分解代謝 促炎因子已經(jīng)被證實能促使椎間盤退變,并且與退變時間相關。退變椎間盤細胞產(chǎn)生的IL-1和腫瘤壞死因子α(TNF-α),均是蛋白酶的間接產(chǎn)物,而且基質(zhì)金屬蛋白酶(MMPs)和蛋白聚糖酶能夠分解基質(zhì)。最近Sinclair等[14]在體外實驗中證實可溶性TNF-α受體能明顯減弱TNF-α在人椎間盤細胞中的作用,并且在一定程度上可以下調(diào)NO、PGE2和IL-6。Chubinskaya等[15]在一個大鼠椎間盤退變模型中證實BMP-7通過降低蛋白酶和細胞因子及疼痛相關蛋白水平使分解代謝降低。在椎間盤退變過程中siRNA分子能抑制干擾蛋白。在動物椎間盤退變模型中,Seki等[16]證實單獨注射蛋白聚糖酶siRNA能抑制退變并且能重塑髓核組織。這些療法的重點是提高髓核細胞的代謝功能而不增加細胞數(shù)量,但是細胞功能降低、營養(yǎng)缺乏、低氧及衰老這些因素都會使療效下降。因此生物療法聯(lián)合細胞或生物材料成為新的趨勢。
退變的椎間盤細胞失去自身修復能力,所以細胞移植能夠提供健康細胞用來再生細胞外基質(zhì)。有學者認為椎間盤退變起始在髓核,因此合成蛋白多糖、膠原和基質(zhì)蛋白的各種細胞之間具有較高關聯(lián)性。此類細胞具有成熟椎間盤細胞、關節(jié)軟骨細胞和間充質(zhì)干細胞(MSCs)的所有表型[17]。
2.1 椎間盤細胞 分化的椎間盤細胞能合成必需的細胞外基質(zhì)分子,用于治療或重建椎間盤微環(huán)境。在沙鼠等椎間盤退變模型中,椎間盤細胞能限制基質(zhì)破壞,促進椎間盤高度恢復,并能合成新的蛋白多糖和1、2型膠原[18]。Benz等[19]發(fā)現(xiàn),羊的椎間盤能自發(fā)修復,但是椎間盤細胞的注入加速了修復過程。在臨床試驗中,通過微創(chuàng)術將移植細胞注入到患者體內(nèi),疼痛癥狀明顯緩解。在注入細胞2年后,相對那些單純做椎間盤切除術的患者椎間盤液體含量增加。但這種方法需要獲得椎間盤細胞,因此這就會導致2次創(chuàng)傷性手術,增加了感染和損傷神經(jīng)根的概率。況且,在體外培養(yǎng)時,從患者退變組織獲得的椎間盤細胞分化能力不強,并且喪失了產(chǎn)生糖胺聚糖和2型膠原的能力[20]。盡管椎間盤細胞能通過生物分子或者3D培養(yǎng)再分化,但是這并不能達到正常細胞水平[21-22]。由于這些原因,軟骨細胞和間充質(zhì)干細胞成為新的研究方向。
2.2 軟骨細胞 近來,在豬去髓核模型中,將培養(yǎng)的自體軟骨細胞運送到體內(nèi)3個月后,軟骨形成密度增加,并且在移植12個月后細胞活力上升[23]。Arana等[24]在體外實驗中發(fā)現(xiàn)軟骨組織通過調(diào)節(jié)炎性反應能刺激髓核細胞合成。然而軟骨細胞產(chǎn)生的蛋白多糖與膠原的比值比髓核細胞低。與髓核細胞相似,軟骨細胞移植也面臨一樣多的問題(如二次創(chuàng)傷和供體組織的缺乏),因此軟骨細胞可能并不是最好的細胞療法。
2.3 間充質(zhì)干細胞 Jin等[25]認為,MSCs是椎間盤修復更好的選擇,因為這些細胞有單獨分化的能力并且能在椎間盤基質(zhì)中產(chǎn)生蛋白多糖和膠原。MSCs的獲取途徑很多,可以提供合適的自體細胞來源。而且能在體外擴增到臨床所需要的數(shù)量并能以未分化祖細胞的形式注射到體內(nèi),分化成與椎間盤細胞相類似的表型。在動物的退變模型中,與沒有注射組相比,MSCs注射組最小化了椎間盤高度的降低,并使GAG的水平在16周后增加,而干細胞組和髓核細胞注射組差異無統(tǒng)計學意義[26]。在體外實驗中,當與健康髓核細胞共同培養(yǎng)時,MSCs分化成一種類似髓核細胞的表型,有抑制糖胺聚糖和SOX9的作用。當MSCs與退變的髓核細胞一起培養(yǎng)時,髓核細胞能產(chǎn)生更多的蛋白多糖和膠原。最近的研究發(fā)現(xiàn)MSCs和髓核細胞的主要聯(lián)系是二者膜成分的雙向改變[27-29]。MSCs不僅具有促進基質(zhì)合成作用,還可以降低椎間盤中的炎性反應[30]。在體外培養(yǎng)中,干細胞能誘導髓核細胞抑制基質(zhì)退變的相關分子基因的表達,如MMPs和炎癥因子。干細胞的免疫調(diào)節(jié)作用,包括其表達Fas配體(免疫細胞中一種跨膜蛋白)的能力,是通過合成抗免疫反應因子(尤其是TGF-β)來降低免疫反應的[31]。然而對體內(nèi)干細胞產(chǎn)生抗免疫反應因子的機制還不是完全明白。自體MSCs療法是有效的,能明顯緩解疼痛降低殘疾率,并且沒有并發(fā)癥,能使椎間盤中液體含量明顯增加,然而椎間盤高度在治療12個月后沒有增加。這與先前的動物實驗結(jié)果一致,MSCs能抑制椎間盤脫水的過程并能誘導水分的獲取。自體MSCs注入到兩位椎間盤退變患者2年后,其疼痛癥狀減輕并且椎間盤液體含量增多。然而這些研究周期較短,并且患者數(shù)量較少,難以確定感染和其他并發(fā)癥的發(fā)生風險。然而MSCs抑制的長期療效和分化能力還需要進一步研究。
單純地將生物分子和細胞共同注射進椎間盤雖然可以再生組織,但是退變早期細胞和基質(zhì)流失嚴重,此時需要大量的因子和細胞。因此組織工程將細胞、運載支架、生物力學和生物化學條件相結(jié)合,其優(yōu)點是可整合并重塑椎間盤結(jié)構及功能。
3.1 仿生學方法模擬椎間盤組織 支架結(jié)構作為細胞附著和引導組織生長的一種支撐,如果惰性植入則只提供生理支撐,沒有轉(zhuǎn)變細胞生物活性的作用;如果活性植入,會產(chǎn)生生物活性分子引導細胞生物合成。理想的支架既可以提供生物力學作用,又可以使新基質(zhì)沉積而增強負荷能力。水凝膠支架可以保持新沉積的蛋白多糖含量。含藻酸鹽和瓊脂糖并以水凝膠為基礎的培養(yǎng)基已經(jīng)應用于髓核培養(yǎng)。水凝膠由透明質(zhì)酸組成,可以保持髓核表型,并維持其生物力學。最近的研究的熱點是如何提高支架材料性能,嘗試聯(lián)合膠原分子或聚合凝膠的方法提高拉力并壓縮機械組成。EP依附于纖維環(huán)和髓核纖維,并且與椎體相鄰近。Fernando等[32]用一種混合模型,證實EP能提供一種黏附力,能夠減弱在骨與椎間盤連接處的負荷。EP細胞含有特殊因子,能刺激蛋白多糖合成,并能抑制TNF-α,說明髓核與EP在內(nèi)環(huán)境中存在交聯(lián)。另外,在組織生長和內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定中,人造生物反應器能被用于再生其物理功能。See等[33]將MSCs培養(yǎng)在含絲的支架中,其周圍被一個硅做的椎間盤包繞,形成一種類似椎間盤結(jié)構的東西。將其培養(yǎng)在一種自定義的生物反應器中,持續(xù)壓縮椎間盤4周,這種結(jié)構被徑向拉伸,導致2型膠原和細胞外基質(zhì)增加,使之與內(nèi)層纖維環(huán)相似。因此,生物反應器可以應用于工程組織,其性能更接近于正常的組織。
3.2 臨床移植的障礙 組織工程仍然處于起步階段,組織工程治療中支架材料的切開移植勢必損傷原本完整的纖維環(huán)結(jié)構,引起炎性反應,從而加重椎間盤退變。另外載體支架的仿生學性能并未達到我們的期望,在今后的研究中組織工程將會完善這些問題,為臨床治療提供更有力的保障。
[1] Wang SZ,Rui YF,Tan Q,et al.Enhancing intervertebral disc repair and regeneration through biology:platelet-rich plasma as an alternative strategy[J].Arthritis Res Ther,2013,15(5):220.
[2] 鄧忠良.微創(chuàng)腰椎椎間融合術[J].重慶醫(yī)學,2008,37(8):1673-1675.
[3] Rejon CA,Hancock MA,Thompson TB,et al.Activins bind and signal via bone morphogenetic protein receptor typeⅡ (BMPR2)in immortalized gonadotrope-like cells[J].Cell Signal,2013,25(12):2717-2726.
[4] 田峰,崔學生,張帥,等.轉(zhuǎn)化生長因子β1及白介素1β對終板軟骨細胞的作用[J].重慶醫(yī)學,2012,41(1):36-38.
[5] Park SY,Kim KH,Shin SY,et al.Dual delivery of rhPDGF-BB and bone marrow mesenchymal stromal cells expressing the BMP2gene enhance bone formation in a critical-sized defect model[J].Tissue Eng Part A,2013,19(21/22):2495-2505.
[6] Kim JS,Ellman MB,An HS,et al.Insulin-like growth factor 1synergizes with bone morphogenetic protein 7-mediated anabolism in bovine intervertebral disc cells[J].Arthritis Rheum,2010,62(12):3706-3715.
[7] Gruber HE,Norton HJ,Hanley EN,et al.Anti-apoptotic effects of IGF-1and PDGF on human intervertebral disc cells in vitro[J].Spine(Philadelphia),2000,25(17):2153-2157.
[8] Wang H,Zhou Y,Huang B,et al.Utilization of stem cells in alginate for nucleus pulposus tissue engineering[J].Tissue Eng Part A,2014,20(5/6):908-920.
[9] Masuda K,Imai Y,Okuma M,et al.Osteogenic protein-1 injection into a degenerated disc induces the restoration of disc height and structural changes in the rabbit anular puncture model[J].Spine (Philadelphia),2006,31(7):742-754.
[10] Imai Y,Okuma M,Nakagawa K,et al.Restoration of disc height loss by recombinant human osteogenic protein-1 injection into intervertebral discs undergoing degeneration induced by an intradiscal injection of chondroitinase ABC[J].Spine(Philadelphia),2007,32(11):1197-1205.
[11] Gawri R,Antoniou J,Ouellet J,et al.Best paper NASS 2013:link-N can stimulate proteoglycan synthesis in the degenerated humanintervertebral discs[J].Cell Mater,2013,11(26):107-119.
[12] Wang Z,Weitzmann MN,Sangadala S,et al.Link protein N-terminal peptide binds to bone morphogenetic protein(BMP)typeⅡ receptor and drives matrix protein expression in rabbit intervertebral disc cells[J].Biol Chem,2013,288(39):28243-28253.
[13] Leckie SK,Bechara BP,Hartman RA,et al.Injection of AAV2-BMP2and AAV2-TIMP1into the nucleus pulposus slows the course of intervertebral disc degeneration in an in vivo rabbit model[J].Spine,2012,12(1):7-20.
[14] Sinclair SM,Shamji MF,Richardson WJ,et al.Attenuation of inflammatory events in human intervertebral disc cells with a tumor necrosis factor antagonist[J].Spine(Philadelphia6),2011,36(15):1190-1196.
[15] Chubinskaya S,Kawakami M,Matsumoto T,et al.Anticatabolic effect of OP-1in chronically compressed intervertebral discs[J].Orthop Res,2007,25(4):517-530.
[16] Seki S,Asanuma-Abe Y,Masuda K,et al.Effect of small interference RNA (siRNA)for ADAMTS5on intervertebral disc degeneration in the rabbit anular needle-puncture model[J].Arthritis Res Ther,2009,11(6):R166.
[17] Liang C,Li H,Zhou X,et al.Responses of human adipose-derived mesenchymal stem cells to chemical microenvironment of the intervertebral disc[J].Transl Med,2012,10:49.
[18] Huang B,Zhuang Y,Liu LT,et al.Regeneration of the intervertebral disc with nucleus pulposus cell-seeded collagen Ⅱ/hyaluronan/chondroitin-6-sulfate tri-copolymer constructs in a rabbit disc degeneration model[J].Spine(Philadelphia),2011,36(26):2252-2259.
[19] Benz K,Stippich C,F(xiàn)ischer L,et al.Intervertebral disc cell and hydrogel-supported and spontaneous intervertebral disc repair in nucleotomized sheep[J].Eur Spine,2012,21(9):1758-1768.
[20] Hegewald AA,Endres M,Abbushi A,et al.Adequacy of herniated disc tissue as a cell source for nucleus pulposus regeneration[J].Neurosurg Spine,2011,14(2):273-280.
[21] Cabraja M,Endres M,Vetterlein S,et al.A 3Denviron-ment for anulus fibrosus regeneration[J].Neurosurg Spine,2012,17(2):177-183.
[22] Hegewald AA,Enz A,Sittinger M,et al.Engineering of polymer-based grafts with cells derived from human nucleus pulposus tissue of the lumbar spine[J].Tissue Eng Regen Med,2011,5(4):275-282.
[23] Acosta FL,Metz L,Adkisson HD,et al.Porcine intervertebral disc repair using allogeneic juvenile articular chondrocytes or mesenchymal stem cells[J].Tissue Eng Part A,2011,17(23/24):3045-3055.
[24] Arana CJ,Diamandis EP,Kandel RA.Cartilage tissue enhances proteoglycan retention by nucleus pulposus cells in vitro[J].Arthritis Rheum,2010,62(11):3395-3403.
[25] Jin ES,Min J,Choi KH,et al.Analysis of molecular expression in adipose tissue-derived mesenchymal stem cells:prospects for use in the treatment of intervertebral disc degeneration[J].Korean Neurosurg Soc,2013,53(4):207-212.
[26] Feng G,Zhao X,Zhang H,et al.Transplantation of mesenchymal stem cells and nucleus pulposus cells in a degenerative disc model in rabbits:a comparison of 2cell types as potential candidates for disc regeneration[J].Neurosurg Spine,2011,14(3):322-329.
[27] Strassburg S,Richardson SM,F(xiàn)reemont AJ,et al.Co-culture induces mesenchymal stem cell differentiation and modulation of the degenerate human nucleus pulposus cell phenotype[J].Regen Med,2010,5(5):701-711.
[28] Strassburg S,Hodson NW,Richardson SM,et al.Bi-directional exchange of membrane components occurs during co-culture of mesenchymal stem cells and nucleus pulposus cells[J].PLoS One,2012,7(3):337-339.
[29] Svanvik T,Henriksson HB,Hagman M,et al.Human disk cells from degenerated disks and mesenchymal stem cells in co-culture result in increased matrix production[J].Cells Tissues Organs,2010,191(1):2-11.
[30] Bertolo A,Thiede T,Baur M,et al.Human mesenchymal stem cell co-culture modulates the immunological properties of human intervertebral disc tissue fragments in vitro[J].Eur Spine,2011,20(4):592-603.
[31] English K.Intervertebral disc repair:mesenchymal stem cells to the rescue[J].Transplantation,2011,92(7):733-734.
[32] Fernando HN,Czamanski J,Yuan TY,et al.Mechanical loading affects the energy metabolism of intervertebral disc cells[J].Orthop Res,2011,29(11):1634-1641.
[33] See EY,Toh SL,Goh JC.Effects of radial compression on a novel simulated intervertebral disc-like assembly using bone marrow-derived mesenchymal stem cell cell-sheets for annulus fibrosus regeneration[J].Spine(Philadelphia),2011,36(21):1744-1751.