左 琦,吳秉宇,張建華,錢炳俊
(上海交通大學(xué)農(nóng)業(yè)與生物學(xué)院,上海200240)
特異性蛋白酶酶解蝦副產(chǎn)物制備ACE抑制肽
左 琦,吳秉宇,張建華*,錢炳俊
(上海交通大學(xué)農(nóng)業(yè)與生物學(xué)院,上海200240)
ACE抑制肽構(gòu)效關(guān)系(QSAR)的研究認為小肽C末端氨基酸的疏水性和其ACE抑制活性之間呈正相關(guān)關(guān)系。針對性地選擇胰凝乳蛋白酶和脯氨酸蛋白酶兩步酶解蝦副產(chǎn)物制備ACE抑制肽。在一定溫度、pH和加酶量條件下,以蛋白質(zhì)的水解度和ACE抑制率為指標,確定胰凝乳蛋白酶、脯氨酸蛋白酶的最佳酶解時間均為4h。兩步酶解產(chǎn)物ACE抑制的IC50值為1.645mg protein/mL。經(jīng)透析后,得到0~500u(組分1)和500~1000u(組分2)兩個組分,組分1和組分2的IC50值分別降為0.333mg peptide/mL和1.320mg peptide/mL。質(zhì)譜分析結(jié)果表明組分1中含有10個肽,分別由5~14個氨基酸組成;組分2中含有15個肽,分別由7~14個氨基酸組成。25個已知序列多肽中有22個多肽的羧基端是脯氨酸或芳香族氨基酸,與預(yù)期相符。
α-胰凝乳蛋白酶,脯氨酸蛋白酶,蝦副產(chǎn)物,ACE抑制肽
血管緊張素轉(zhuǎn)換酶(ACE)在血壓調(diào)節(jié)中有至關(guān)重要的作用,它能將沒有活性的血管緊張素I(Asp-Val-Tyr-Ile-His-Pro-Phe-His-Leu)C末端的二肽裂解,使其轉(zhuǎn)換為能促使血壓升高的血管緊張素Ⅱ(Asp-Val-Tyr-Ile-His-Pro-Phe)[1]。因此,抑制ACE的活性將能降低血壓。
ACE抑制肽構(gòu)效關(guān)系(QSAR)的研究認為,ACE抑制肽的C端氨基酸是與ACE活性部位結(jié)合的關(guān)鍵,C末端氨基酸的疏水性和小肽的ACE抑制活性之間正相關(guān)[2]。C末端氨基酸為具環(huán)狀結(jié)構(gòu)的芳香族氨基酸(包括色氨酸、酪氨酸和苯丙氨酸)或脯氨酸的ACE抑制肽,其活性一般較強[3],如Ile-Pro-Pro和Val-Pro-Pro[4]。
目前廣泛用于治療高血壓的肽類藥物,如卡托普利(Captopril)和賴諾普利(Lasinopril)都是C末端氨基酸為脯氨酸的肽,但都是化學(xué)合成品,雖然具有很好的降壓效果,但是會引發(fā)皮膚病、咳嗽、腎功能衰竭等副作用[5]。近年來,有從乳清[6]、魚[7]、雞肉組織[8]和雞蛋[8]等食物原料中分離得到ACE抑制肽的報道,尋找毒副作用小的食源性ACE抑制肽成為目前的研究熱點。
我國蝦類資源極為豐富,蝦仁加工業(yè)比較發(fā)達,然而蝦仁加工同時產(chǎn)生的大量蝦頭、蝦殼等副產(chǎn)物卻沒有得到充分的利用[9]。蝦副產(chǎn)物中蛋白質(zhì)的比例較高,若能選用合適的酶對其進行酶解,制備ACE抑制肽,將能提高蝦副產(chǎn)物的利用價值。本實驗結(jié)合前期國內(nèi)外對功能性寡肽構(gòu)效關(guān)系(QSAR)的研究成果,選擇α-胰凝乳蛋白酶和脯氨酸蛋白酶兩種特異性蛋白酶酶解蝦副產(chǎn)物,有望制備得到羧基端為脯氨酸或芳香族氨基酸的ACE抑制肽。
1.1 材料與儀器
南美白對蝦 上海海旭水產(chǎn)有限公司;α-胰凝乳蛋白酶 國藥集團化學(xué)試劑有限公司;脯氨酸蛋白酶 帝斯曼(中國)有限公司;TNBS(三硝基苯磺酸)、血管緊張素轉(zhuǎn)化酶(ACE)、底物(Hippuryl-His-Leu)、肽標準混合物(由Gly-Tyr、Val-Tyr-Val、Tyr-Gly-Gly-Phe-Met、Tyr-Gly-Gly-Phe-Leu、Asp-Arg-Val-Tyr-Ile-His-Pro-Phe組成) 美國Sigma公司;CE透析袋 上海新睿生物科技有限公司。
多功能粉碎機 上海正慧工貿(mào)有限公司;DK-8D三孔電熱恒溫水浴鍋 上海齊欣科學(xué)儀器有限公司;恒溫干燥箱 德國Binder有限公司;UVmini-1240分光光度計 日本島津儀器有限公司;5415D離心機 德國Eppendorf公司;320 pH計 美國梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;L-8900全自動氨基酸分析儀 日本日立公司;納升液相色譜-四極桿飛行時間串聯(lián)質(zhì)譜聯(lián)用儀 德國Bruke Dionex公司。
1.2 實驗方法
1.2.1 原料準備 南美白對蝦剝皮、去頭,放于恒溫干燥箱中65℃烘干12h,取出粉碎,過60目篩。
1.2.2 酶解條件 α-胰凝乳蛋白酶和脯氨酸蛋白酶的酶解條件[10-11]如表1所示。
表1 兩種酶的酶解條件Table 1 Hydrolysis conditions ofα-chymotrypsin and proline specific protease
1.2.3 蛋白質(zhì)含量測定和氨基酸分析 稱取1.0g樣品,加入12mL硫酸和催化劑(硫酸銅和硫酸鉀),放在FOSS消化爐上,消化1.5h。然后用自動凱氏定氮儀測定上清液的蛋白質(zhì)含量[12]。氨基酸分析:氨基酸專用高效液相色譜法[13]。
1.2.4 水解度的測定 參考Adler-Nissen[14]的方法進行改進。在試管中加入2.00mL pH8.2的磷酸鹽緩沖液和0.25mL樣品混勻,再加入2.00mL 0.10%TNBS溶液搖勻,50℃水浴中避光反應(yīng)60min后,加入4.00mL(0.10mol/L HCl)終止反應(yīng),室溫冷卻30min后,于340nm波長處測定吸光度。用不同濃度的亮氨酸代替樣品做標準曲線。
水解度的計算:
式中:hNH2為反應(yīng)后氨基態(tài)氮濃度(mmol/g);h0為反應(yīng)前氨基態(tài)氮濃度(mmol/g);htot為每克原料蛋白的肽鍵毫摩爾數(shù)(mmol/g),蝦殼蛋白htot=8.073(mmol/g)。
1.2.5 ACE抑制率測定 參考Cushman[15]和Li-Chan[16]的方法進行改進。以Hippuryl-His-Leu為底物,測定抑制劑對ACE的抑制活性。試管中加入ACE(酶活力為0.86U/mL)和抑制劑各15μL,37℃水浴5min,然后加入HHL 75μL,37℃水浴45min后,加入1mol/L HCL終止反應(yīng)。然后加入0.7mL乙酸乙酯萃取、離心(4000r/min,10min),吸取0.5mL乙酸乙酯層于試管中,120℃條件下使乙酸乙酯完全揮發(fā),最后加入2mL去離子水,渦旋混勻后,228nm波長處測定其吸光值。ACE抑制率計算公式:
式中:C為ACE與HHL完全反應(yīng)后的吸光度;A為加入抑制劑和ACE的吸光度;B為加滅活A(yù)CE的吸光度。
1.2.6 透析 首先將酶解液裝入截留分子量為1000u的透析袋,放入裝有去離子水的燒杯中;在磁力攪拌條件下透析6h后,換一次水,再透析4h;將燒杯里的溶液收集起來,得到分子量1000u以下的多肽溶液,45℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮后,裝入截留分子量為500u的透析袋,最后透析得到分子量500~1000u的多肽溶液和分子量500u以下的多肽溶液,45℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮備用。
1.2.7 多肽含量測定 根據(jù)Church[17]的方法進行改進。首先配制50mL OPA溶液:分別加入25mL(100mmol/L)的四硼酸鈉、2.5mL 20%(w/w)的十二烷基硫酸鈉(SDS)、40mg的OPA(溶解在1mL甲醇中);100μL的β-巰基乙醇,用去離子水定容至50mL。然后取50μL的酶解液與2mL的上述OPA溶液在室溫下反應(yīng)2min于340nm波長處測定吸光度。用不同濃度梯度的肽標準混合物代替酶解液做標準曲線。
1.2.8 質(zhì)譜條件 負離子模式檢測;檢測范圍為m/z 100~1000;毛細管電壓為2800V;樣品孔電壓為20V;
MCP檢測電壓為2100V;噴霧氣流量為50L/h;脫溶劑氣流量為350L/h;脫溶劑溫度為300℃;離子源溫度為100℃;碰撞能量為25eV。
2.1 蝦副產(chǎn)物蛋白質(zhì)含量及氨基酸組成分析
凱式定氮測得蝦副產(chǎn)物蛋白質(zhì)含量為59.94%± 0.98%,蛋白質(zhì)含量較高,具備制備ACE抑制肽的基本條件。氨基酸分析結(jié)果(見表2)表明,蝦副產(chǎn)物中,除去酸水解破壞的色氨酸外,脯氨酸和芳香族氨基酸(酪氨酸和苯丙氨酸)占氨基酸總量的12.28%,從蛋白質(zhì)含量和氨基酸組成兩方面分析,蝦副產(chǎn)物是制備ACE抑制肽好的來源。
表2 蝦副產(chǎn)物氨基酸組成Table 2 Amino acid composition of shrimp byproducts
2.2 α-胰凝乳蛋白酶和脯氨酸蛋白酶酶解時間的確定
α-胰凝乳蛋白酶為內(nèi)切酶,可從酪氨酸、色氨酸和苯丙氨酸的羧基處切斷肽鍵;脯氨酸特異性蛋白酶則能夠在肽鏈中含有脯氨酸的羧基處切斷肽鍵[10]。蛋白質(zhì)的水解度代表蛋白質(zhì)在酶解過程中,肽鍵被裂解的程度或百分比。根據(jù)兩種蛋白酶酶解蝦副產(chǎn)物的水解時間-水解度曲線確定兩種酶的最佳酶解時間。
測定水解度的亮氨酸標準曲線如圖1所示,胰凝乳蛋白酶的水解結(jié)果如圖2所示。
一般認為,1個亮氨酸分子含有1個α-氨基,由此可將α-氨基的濃度轉(zhuǎn)化為亮氨酸的濃度,在進行酶解液水解度測定時就可以根據(jù)圖1得到酶解過程中產(chǎn)生的α-氨基,從而計算出相應(yīng)的水解度。
圖1 亮氨酸標準曲線Fig.1 Standard curve of Leucine
由圖2可知,在0~30min之內(nèi),水解度的增加速率很快,這可能是在最初的30min內(nèi)蛋白質(zhì)中可斷裂的肽鍵較多,水解度提高快,而隨著時間的推移,酶可作用的肽鍵數(shù)目減少,水解速率下降,到4h水解度達到11%后,水解度保持不變,說明此時蛋白已經(jīng)被完全水解。選擇蛋白的水解終點,可以保證充分水解,便于后續(xù)分離得到小肽。因此,第一步酶解時間的確定,只需考慮水解充分性的因素,選擇4h時間點。而第二步酶解時間的確定,則需要綜合考慮酶解的充分性和ACE抑制率。
圖2 蝦副產(chǎn)物胰凝乳蛋白酶水解曲線Fig.2 Hydrolysis curve of shrimp byproduct by α-chymotrypsin
2.3 兩步酶解產(chǎn)物ACE抑制活性的變化
脯氨酸蛋白酶的水解度和ACE抑制活性的變化如圖3所示。
圖3 脯氨酸蛋白酶水解度曲線和酶解液的ACE抑制活性Fig.3 Degree of hydrolysis and ACE inhibitory activity of proline specific proteases hydrolysate
由圖3可知,在4h水解度達到4.74%以后,水解度保持不變,說明此時間點是脯氨酸蛋白酶的水解終點。脯氨酸蛋白酶酶解之后,進行ACE抑制活性測定。由圖3可知,隨著酶解時間的延長,ACE抑制率先上升,后下降,最后又上升。中間ACE抑制率的下降,可能是由于本來有抑制活性的大分子肽被酶解產(chǎn)生了無ACE抑制作用的小分子肽[18]。而隨著酶解的進行,這些肽進一步被酶解成分子量更小的肽,其具有較高的ACE抑制率,當(dāng)然,也有可能是肽濃度的增大,使ACE抑制率隨之增大。根據(jù)結(jié)果得知,4h酶解時間的酶解液ACE抑制率最高,為61.30%,IC50為1.645mg/mL,選擇此時間點的酶解液來進行后續(xù)實驗。
2.4 透析后不同截留分子量透析液的ACE抑制活性
已有的研究結(jié)果表明,具有ACE抑制活性的肽,一般含有2~12個氨基酸,即分子量范圍在256~1500u之間[19]。因此,選擇截留分子質(zhì)量1000u和500u的透析袋透析后,可以得到2個組分:組分1的分子質(zhì)量小于500u,組分2的分子質(zhì)量在500~1000u范圍內(nèi)。由于透析之后,去掉了分子量大于1000u以上的肽,所以要確定透析之后酶解液的肽濃度。測定肽濃度的標準曲線如圖4所示。
圖4 多肽標準曲線Fig.4 Standard curve of peptide mixture
圖4中所指的肽標準混合物是由Gly-Tyr、Val-Tyr-Val、Tyr-Gly-Gly-Phe-Met、Tyr-Gly-Gly-Phe-Leu、Asp-Arg-Val-Tyr-Ile-His-Pro-Phe構(gòu)成的混合物,這5個肽分別由2~8個氨基酸組成。用此混合物作為標準底測定透析液中的肽含量,可以比較精確的定量肽含量。標準曲線中,肽標準物濃度和吸光度值的相關(guān)系數(shù)R2=0.9994,線性相關(guān)性較強,可用公式y(tǒng)= 0.1887x-0.0001計算透析后透析液的肽濃度。
表3 透析產(chǎn)物和不同食物來源酶解肽的ACE抑制率IC50Table 3 ACE inhibitory peptides derived from different food proteins
由表3可知,未透析前,兩步酶解產(chǎn)物的IC50值為1.645mg protein/mL,經(jīng)過透析之后:組分1(0~500u)和組分2(500~1000u)的IC50值分別降為0.333mg peptide/ mL和1.320mg peptide/mL,可見透析分離后,IC50值有所下降。尤其是分子量為0~500u的肽,其IC50有較大程度的下降,表明經(jīng)過透析,去掉了大分子的肽,得到分子量較小的肽,這些肽具有更高的ACE抑制活性。
由表3的對比可發(fā)現(xiàn),蝦副產(chǎn)物酶解液經(jīng)過透析之后,分子量小于500u的透析液,其ACE抑制的IC50值低于以往研究中得到的食源性肽。說明蝦副產(chǎn)物經(jīng)過特異性蛋白酶的兩步酶解,能制得ACE抑制率較高(IC50值低)的肽。
2.5 質(zhì)譜分析結(jié)果
由表4可知,通過胰凝乳蛋白酶和脯氨酸蛋白酶兩步酶解之后,組分1中含有10個肽,分別由5~14個氨基酸組成;組分2中含有15個肽,分別由7~14個氨基酸組成。25個已知序列多肽中只有EGGEL,VVIMTSHGNEQL,MSFQDSNNDGIGDL這3個多肽的羧基端不是脯氨酸或芳香族氨基酸,與文獻[13]報道的ACE抑制性較強肽的羧基端應(yīng)具有的結(jié)構(gòu)相符合。
表4 兩組分中多肽的組成Table 4 Composition of peptides in component 1 and 2
然而,得到的這22個羧基端是脯氨酸或芳香族氨基酸的肽,除了MIAMFMF、GKHLHTF、CYTEEVF這三個肽為7肽,其余19個肽都含有8個或8個以上的氨基酸。人體攝入之后,仍有可能被體內(nèi)消化酶酶解。因此有必要模擬人體胃腸道消化,再對其進一步酶解。一方面考察這些肽經(jīng)過消化酶酶解之后的活性變化,另一方面有望從中分離得到ACE抑制活性更高的肽。
本文用胰凝乳蛋白酶—脯氨酸蛋白酶對蝦副產(chǎn)物進行酶解,通過透析分離和質(zhì)譜分析證實得到了一些C末端為芳香族氨基酸或脯氨酸的小分子肽,說明該酶解體系有望獲得ACE抑制活性高的肽。但兩步酶解的肽多為七肽以上,因此有必要模擬人體胃腸道消化,再對這些肽進一步酶解,一方面考察這些肽經(jīng)過消化酶酶解之后的活性變化,另一方面有望從中分離得到ACE抑制活性更高的肽。
[1]Ghassem M,Arihara K,Babji A S,et al.Purification and identification of ACE inhibitory peptide from Harua(Channa striatus)myofibrillar protein hydrolysate using HPLC-ESI-TOF MS/MS[J].Food Chemistry,2011,129:1770-1777.
[2]Pripp A H,Isaksson T,Stepaniak L,et al.Quantitative structure-activity relationship modeling of ACE-inhibitory peptides derived from milk proteins[J].European Food Researchand Technology,2004,219:579-583.
[3]Cheung H S,Wang F L,Ondetti M A,et al.Binding of peptide substrates and inhibitors of angiotensin-converting enzyme.Importance of the COOH-terminal dipeptide sequence [J].Journal of Biological Chemistry,1980,255:401-407.
[4]Foltz M,Cerstiaens A,Mols R,et al.The angiotensin converting enzyme inhibitory tripeptides Ile-Pro-Pro and Val-Pro-Pro show increasing permeabilities with increasing physiological relevance of absorption models[J].Peptides,2008,29:1312-1320.
[5]Israaili Z H,Hall W D.Cough and angioneurotic edema associated with angiotensin converting enzyme inhibitor therapy:A review of the literature and pathophysiology[J].Annals of Internal Medicine,1992,117(3):234-242.
[6]Hernández Ledesma B,Recio I,Ramos M,et al.Preparation of ovine and caprine-lactoglobulin hydrolysates with ACE-inhibitory activity.Identification of active peptides from caprine β-lactoglobulin hydrolysed with thermolysin[J].International Dairy Journal,2002,12:805-812.
[7]Curis J M,Dennes D,Waddell D S,et al.Determination of angiotensin-converting enzyme inhibitory peptide Leu-Lys-Pro-Asn-Met(LKPNM)in bonito muscle hydrolysates by LC-MS/MS [J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2002,50:3919-3925.
[8]Rao S Q,Ju T,Sun J,et al.Purification and characterization of angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptides from enzymatic hydrolysate of hen egg white lysozyme[J].Food Research International,2012,46:127-134.
[9]王潤蓮,張政軍,梁沛瓊.蝦、蟹、螺副產(chǎn)物的營養(yǎng)價值[J].飼料研究,2006:61-62.
[10]彼得呂斯·雅各布斯·西奧多瑞,斯·蒂克爾,魯波·伊第恩斯.來自Penicillium chrysogenum的脯氨酸特異性蛋白酶:中國,200980120102.4[P].2011-05-04.
[11]Kim S K,Wijesekara I.Developmentand biological activities of marine-derived bioactive peptides:A review[J]. Journal of Functional Foods,2010(2):1-9.
[12]中華人民共和國衛(wèi)生部.GB 5009.5-2010食品中蛋白質(zhì)的測定[P].北京:中國標準出版社,2010.
[13]劉長虹.食品分析及實驗[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2006:81-110,204-205.
[14]Adler Nissen J.Determination of the degree of hydrolysis of food protein hydrolysates by trinitrobenzenesulfonic acid[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry,1979,27:1256-1262.
[15]Cushman D W,Cheung H S.Spectrophotometric assay and properties of the angiotensin-converting enzyme of rabbit lung[J]. Biochemistry Pharmacology,1971,20:1637-1648.
[16]Lo W M Y,Li-Chan E C Y.Angiotensin I converting enzyme inhibitory peptides from in vitro pepsin-pancreatin digestion of soy protein[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2005,53:3369-3376.
[17]Church F C,Swaisgood H E,Porter D H,et al. Spectrophotometric assay using o-phthaldialdehyde for determination of proteolysis in milk and isolated milk proteins[J]. Journal of Dairy Science,1983,66:1219-1227.
[18]Theodore A E,Kristinsson H G.Angiotensin converting enzyme inhibition of fish protein hydrolysates prepared from alkaline-aided channel catfish protein isolate[J].Journal of the Science of Food and Agriculture,2007,87:2353-2357.
[19]Li G H,Le G W,Shi Y H,et al.Angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptides derived from food proteins and their physiological and pharmacological effects[J].Nutrition Research,2004,24:469-486.
[20]Kim S K,Byun H G,Park P J,et al.Angiotensin I converting enzyme inhibitory peptides purified from bovine skin gelatin hydrolysate[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2001,49:2992-2997.
[21]Jiang J L,Chen S W,Ren F Z.Milk casein as a functional ingredient:Preparation and identification of angiotensin-I-converting enzyme inhibitory peptides[J].JournalofDairy Research,2007,74:18-25.
[22]Fahmi A,Morimura S,Guob H C,et al.Production of angiotensin I converting enzyme inhibitory peptides from sea bream scales[J].Process Biochemistry,2004,39:1195-1200.
[23]Jang J H,Jeong S C,Kim J H,et al.Characterization of a new antihypertensive angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptide from Pleurotus cornucopiae[J].Food Chemistry,2011,127:412-418.
Preparation of angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptides derived from shrimp byproduct by specific enzyme hydrolysis method
ZUO Qi,WU Bing-yu,ZHANG Jian-hua*,QIAN Bing-jun
(School of Agriculture and Biology,Shanghai Jiaotong University,Shanghai 200240,China)
Based on the quantitative structure-activity relationship and predictive models of angiotensin I-converting enzyme(ACE)inhibitory peptide,hydrophobic amino acid residues at C-terminal are positively correlated with ACE inhibitory activity.In order to get more proline and hydrophobic amino acid residues at C terminal,α-chymotrypsin and proline protease were chosen to hydrolyse the shrimp byproducts to produce ACE inhibitory peptides.The hydrolysis times were optimized according to the hydrolysis degree(HD)for α-chymotrypsin,and both HD and ACE-inhibitory activity for proline protease,the results showed that the optimal hydrolysis time for both enzyme were 4 hours.The half maximal inhibitory concentration(IC50)for ACE inhibition of hydrolysate was 1.645mg protein/mL.The hydrolysate was separated into fraction 1(0~500u)and fraction 2(500~1000u)by molecular weight cut-off(MWCO)membrane.The IC50value of fraction 1 and fraction 2 were 0.333mg peptide/mL and 1.320mg peptide/mL,respectively.The peptide mixtures were analyzed by time-of-flight mass spectrometry.Ten peptides,which were consisted of peptides with 5 to 14 amino acid residues,were identified in fraction 1.Fifteen peptides,which were consisted of peptides with 7 to 14 amino acid residues were identified in fraction 2.The C-terminal amino acids of 22 out of the 25 peptides were proline or aromatic amino acid,which was corresponding to QSAR results.
α-chymotrypsin;proline protease;shrimp byproducts;ACE inhibitory peptides
TS201.1
A
1002-0306(2014)10-0181-05
10.13386/j.issn1002-0306.2014.10.032
2013-09-02 *通訊聯(lián)系人
左琦(1988-),女,碩士研究生,研究方向:食品科學(xué)。
國家海洋局海洋公益性行業(yè)科研專項經(jīng)費項目(201205031-05)。