楚紅英,曹 靜,魏家紅,王哲嶸
(黃河水利職業(yè)技術(shù)學(xué)院,河南 開封 475004)
苦菜(Sonchus oleraceus L)為菊科苦苣屬的一年生或兩年生草本植物,又稱苦苣菜、苣荬菜、甘馬菜等,全草含有多種營養(yǎng)成分,是一種藥食同源的植物[1-2]。 作為食材,苦菜味道獨(dú)特、營養(yǎng)豐富,含有人體需要的多種維生素、礦物質(zhì)、糖類等成分[3],越來越成為人們餐桌上的珍品。 作為藥材,苦菜具有防治貧血、消暑保健、清熱解毒、殺菌消炎、提高免疫力、抗腫瘤等作用[4]。 研究表明,苦菜中含有豐富的鐵[5]。 鐵是血紅蛋白、肌紅蛋白、細(xì)胞色素和其他酶系統(tǒng)的主要成分,可幫助氧的運(yùn)輸,缺鐵可能造成貧血,并容易使人疲勞[6]。 因此,定量分析苦菜中鐵的含量,具有一定的應(yīng)用價值。
鐵含量測定方法有EDTA 滴定法、X 射線熒光光譜法、電感耦合等離子體原子發(fā)射光譜法、光度法等。 其中,EDTA 滴定法對滴定條件要求比較嚴(yán)格;X 射線熒光光譜檢測技術(shù)具有分析速度快、檢測元素范圍廣、前處理簡便、無污染,以及無損檢測等優(yōu)點(diǎn)[7];電感耦合等離子體原子發(fā)射光譜法具有檢出限低、基體效應(yīng)小、線性范圍寬,以及多元素同時分析等諸多優(yōu)點(diǎn)[8]。但是,X 射線熒光光譜法、電感耦合等離子體原子發(fā)射光譜法儀器比較昂貴。 而鄰菲啰啉分光光度法(光度法中的一種)具有高靈敏度、高選擇性、穩(wěn)定性好、干擾易消除等優(yōu)點(diǎn)[9]。 本文試采用鄰菲啰啉分光光度法測定苦菜中鐵的含量,并探討了酸堿度、緩沖溶液的用量以及樣品處理方法(濕法和干法消解)對測定鐵含量的影響。
實(shí)驗所用苦菜為2012 年4 月上旬在黃河水利職業(yè)技術(shù)學(xué)院梨院內(nèi)采的野生苦菜。 所用試劑有:硫酸鐵銨、鹽酸羥胺、乙酸鈉、氫氧化鈉、鄰菲啰啉、濃硫酸、濃硝酸(以上試劑均為分析純)。 實(shí)驗用水為二次蒸餾水。
實(shí)驗儀器包括:PB1502-L 型分析天平(瑞士梅特勒-托利多公司);ZRD-8210 電熱風(fēng)干燥箱(上海智誠分析儀器制造有限公司);電子萬用爐(北京市永光明醫(yī)療儀器廠);TU-1810 型紫外-可見分光光度計(北京普析通用儀器有限責(zé)任公司)。
1.2.1 鐵標(biāo)準(zhǔn)溶液的制備
將2.0 g 硫酸鐵銨溶于200 mL 水中,然后在該溶液中加入5mL 濃硫酸,并用水定容至1 000 mL。從1000 mL 溶液中吸取10 mL 到100 mL 容量瓶中,再用水定容至100 mL,得到濃度為0.2 mg/mL 的鐵標(biāo)準(zhǔn)溶液。
1.2.2 緩沖溶液的制備
將54.6 g 乙酸鈉放入20 mL 物質(zhì)的量為1 mol/L的乙酸溶液中,待溶解后,加水稀釋至500 mL,得到1 mol/L 的乙酸-乙酸鈉緩沖溶液。
吸取鐵標(biāo)準(zhǔn)溶 液0.00、2.00 mL、4.00 mL、6.00 mL、8.00 mL、10.00 mL,分別置于50 mL 的比色管中,在每個比色管中均加10%的鹽酸羥胺1.00 mL、1.5 g/L 的鄰菲啰啉溶液1.00 mL 和緩沖溶液5.00 mL,并加水定容至50 mL。 然后,用紫外分光光度計掃描 (波長范圍為400~800nm),并與空白溶液對比,從而確定檢測波長。 掃描結(jié)果發(fā)現(xiàn),溶液在510 nm 處有最大吸收量,由此確定檢測波長為510 nm。在此波長下,測定每個標(biāo)準(zhǔn)樣的吸光度值。 以吸光度值為縱坐標(biāo),以標(biāo)準(zhǔn)樣品濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(如圖1 所示)。 求得該曲線的線性回歸方程,為A=0.0175c+0.0105。 由圖1 可以看出,濃度在0~40 mg/L 之間,吸光度值與樣品濃度呈線性關(guān)系,其相關(guān)系數(shù)r=0.9992(n=6)。
圖1 鐵標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Standard curve of iron
將苦菜洗凈,放陰涼處自然風(fēng)干后,在瓷研缽中研細(xì),過100 目篩子,于干燥器中儲存?zhèn)溆谩?/p>
1.4.1 濕法消解苦菜樣品
準(zhǔn)確稱取苦菜樣品1.0 g,置于三角燒瓶中,再將10 mL 濃硝酸和2 mL 濃硫酸加入三角燒瓶中,消解苦菜,用小燒杯蓋口,靜置過夜。 將三角燒瓶放在電爐上煮沸至棕色后冷卻,逐滴加2 mL 濃硝酸,再煮沸,反復(fù)多次,直到溶液保持淡黃色[10]。 用蒸餾水清洗,定容至50 mL 容量瓶中,作為儲備液。
1.4.2 干法消解苦菜樣品
準(zhǔn)確稱取苦菜樣品1.0 g,放入瓷坩堝中, 將瓷坩堝置于電爐上,用小火炭化至無煙后,放入馬弗爐中, 從低溫升至800℃, 灼燒4h 后取出,冷卻。 再加少量的硝酸,用小火加熱至無炭粒[11],過濾。 將濾液定容至50 mL 容量瓶中,作為儲備液。
2.1.1 酸堿度的影響
取8 支50 mL 的比色管,用移液管分別移取1.00 mL 樣品儲備液,轉(zhuǎn)入比色管中,用一定濃度的NaOH 溶液或HCl 溶液將pH 值調(diào)節(jié)為1~8。以空白試劑作參比,在510nm 波長下測定吸光度。 通過對比,發(fā)現(xiàn)當(dāng)pH 值小于2 時,溶液在30min 內(nèi)幾乎看不到顯色。 這是因為鄰菲羅啉顯色較慢,所以吸光度較低。在pH 值大于2 時,隨著pH 值的增加,吸光度明顯增加,當(dāng)pH=5~6 時,吸光度值達(dá)到最大。 當(dāng)pH 值大于7 時,由于鹽酸羥胺的還原性增強(qiáng),將部分還原為鐵單質(zhì)[12],吸光度開始減小。 選擇pH=5 時進(jìn)行測試。
2.1.2 緩沖溶液的用量
本實(shí)驗選用乙酸-乙酸鈉作為緩沖溶液。 取10支50mL 的比色管,用移液管分別移取1.00mL 樣品儲備液,轉(zhuǎn)入比色管中,然后分別移取緩沖溶液1.00 mL、2.00 mL、3.00 mL、4.00 mL、5.00 mL、6.00 mL、7.00 mL、8.00 mL、9.00 mL、10.00 mL 至不同的比色管中。 結(jié)果隨著緩沖溶液用量的增加,吸光度開始明顯呈上升趨勢,但用量達(dá)到5.00 mL 以后吸光度趨于穩(wěn)定,故選擇緩沖溶液的適用量為5.00 mL。
從樣品儲備液中吸取5.00 mL 置于50 mL 比色管中(每種樣品平均做3 次),加堿中和至pH 值為5左右,然后,加入1.00 mL 的10%鹽酸羥胺溶液,搖勻,再加入1.5 g/L 鄰菲啰啉溶液1.00 mL 和1 mol/L的緩沖溶液5.00 mL,用水稀釋至刻度,顯色時間為20 min,分別測定其吸光度值。 將吸光度值代入回歸方程,計算出苦菜不同部位鐵的含量(如表1 所示)。
表1 苦菜中鐵的含量Table 1 Iron content of sow thistle
由表1 可以得知,濕法和干法處理樣品的結(jié)果稍有差異。 這主要是由于反應(yīng)機(jī)理的不同,干法消解是通過高溫灰化徹底破壞樣品中的有機(jī)物,而濕法消解則是通過加入混合酸去破壞、消除苦菜中的有機(jī)物。 實(shí)驗發(fā)現(xiàn),濕法消解得到的是淡黃色澄清的溶液,且在苦菜根的消解溶液中發(fā)現(xiàn)有渾濁現(xiàn)象(說明有機(jī)物破壞得不徹底)。 這可能是導(dǎo)致濕法消解偏低的原因。 然而,無論濕法或干法,苦菜根中鐵的含量均較高,其次是全草,苦菜葉中鐵的含量較低。
準(zhǔn)確移取已知鐵含量的苦菜葉儲備液6 份(每份7.0μg),分別加入不同量的鐵標(biāo)準(zhǔn)溶液,各份均按處理樣品的方法進(jìn)行處理,測定鐵含量。 測定結(jié)果如表2 所示。
表2 測定鐵含量回收率試驗結(jié)果Table 2 Recovery rate test results of iron content
由表2 可知,平均回收率為97.6%,RSD 為3.4%。
采用鄰菲啰啉分光光度法,在檢測波長510 nm、pH=5、緩沖溶液用量為5.00 mL 的條件下,分別用干法消解和濕法消解處理苦菜樣品,測定苦菜中鐵的含量。 結(jié)果表明:濕法測定苦菜葉、苦菜根、全草中鐵的含量分別為405.8 mg/kg、726.2 mg/kg、536.6 mg/kg;干法測定苦菜葉、苦菜根、全草中鐵的含量分別為416.3 mg/kg、735.4 mg/kg、546.0 mg/kg。 野生苦菜具有無污染、味道獨(dú)特、營養(yǎng)價值豐富等優(yōu)點(diǎn),開發(fā)利用價值較大。
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