王 琴,仉紅剛,卡米拉·阿不里米提,張秋菊,修瑞娟
(中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院微循環(huán)研究所,北京100005)
骨形態(tài)發(fā)生蛋白(bone morphogenetic proteins,BMPs)屬于轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子超家族中的一類(lèi)成員,它們對(duì)于細(xì)胞的分化、增殖、遷移、存活等生物學(xué)過(guò)程中具有重要的調(diào)控作用[1-2]。最初的研究認(rèn)為,BMP-2和BMP-4在間質(zhì)干細(xì)胞的分化以及骨及軟骨的形成及修復(fù)過(guò)程中骨的形成和血管的形成具有重要作用[3-4]。然而,也有不少的研究結(jié)果顯示,BMPs及其受體參與血管發(fā)生(vasculogenesis)和血管新生(angiogenesis)。例如,BMP-4表達(dá)缺陷的小鼠,其心臟及脈管系統(tǒng)的發(fā)育異常[5],敲除了Smad1或Smad5基因的小鼠由于脈管系統(tǒng)發(fā)育不完全而死于胚胎期[6]。另外,BMPs影響小鼠胚胎干細(xì)胞來(lái)源的內(nèi)皮細(xì)胞及人表皮微血管內(nèi)皮細(xì)胞的增殖和遷移[7]。盡管BMPs對(duì)于內(nèi)皮細(xì)胞功能的作用越來(lái)越受到研究者們的關(guān)注,但是,BMPs,特別是BMP-4對(duì)于人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞成血管能力的影響及其作用機(jī)制的研究仍未見(jiàn)報(bào)道。故本研究主要分析了BMP-4對(duì)于臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞的增殖,遷移,體外成血管能力的影響,并且對(duì)于參與其中的分子機(jī)制做初步探討。
無(wú)菌PBS,D'Hanks(中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所細(xì)胞中心),Hanks,BrdU細(xì)胞增殖檢測(cè)試劑盒(Invitrogen公司),膠原酶Ⅳ,纖維連接蛋白(Sigma公司),內(nèi)皮細(xì)胞用培養(yǎng)基(Sciencell公司),細(xì)胞因子BMP-4(R&D Systems公司),包被小鼠抗人CD31單克隆抗體的免疫磁珠(Miltenyi公司);小鼠抗人VE-cadherin單克隆抗體及TRITC標(biāo)記的山羊抗小鼠熒光二抗(Santa Cruz公司);基質(zhì)膠(BD Biosciences公司),RIPA裂解液,SDS-PAGE凝膠配制試劑盒(碧云天公司),BCA定量試劑盒(普利萊公司);兔源抗 phospho ERK1/2一抗,兔源抗 total ERK1/2一抗,辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的抗兔二抗(Cell Signaling公司)。
原代分離HUVECs,步驟參照文獻(xiàn)[8]。采用含10%FBS的內(nèi)皮細(xì)胞專(zhuān)用培養(yǎng)基培養(yǎng)。細(xì)胞培養(yǎng)于37℃,5%CO2的孵箱中,取3~6代細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
使用包被小鼠抗人CD31單克隆抗體的免疫磁珠對(duì)原代分離的HUVECs進(jìn)一步純化。以小鼠抗人VE-cadherin單克隆抗體及TRITC標(biāo)記的山羊抗小鼠熒光二抗鑒定純化后的HUVECs。
細(xì)胞增殖的檢測(cè)采用BrdU法,利用BrdU試劑盒進(jìn)行,步驟如下:按照5×103個(gè)/孔的接種密度將HUVEC接種至96孔板。血清饑餓8 h。分別以不同濃度的 BMP-4(5、10、20、50 和100 ng/mL)處理細(xì)胞24 h,每個(gè)濃度5個(gè)復(fù)孔。在BMP-4作用細(xì)胞8 h后,加入BrdU,BMP-4作用24 h后,將細(xì)胞固定。加入抗BrdU的一抗,室溫,1 h。辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的二抗,室溫,30 min。加入辣根過(guò)氧化物酶底物,室溫,避光,30 min。酶標(biāo)儀檢測(cè)吸光度。
本實(shí)驗(yàn)用于觀察BMP-4對(duì)HUVECs遷移能力的影響。步驟如下:采用包被纖維連接蛋白(10 mg/L)的12孔板培養(yǎng)HUVECs至匯合。使用200 μL黃色槍頭垂直于細(xì)胞培養(yǎng)面劃出相互垂直的兩條直線(xiàn)。PBS洗2次,倒置顯微鏡下以?xún)蓷l劃痕的交點(diǎn)為中心,在5×物鏡下對(duì)連續(xù)5個(gè)視野進(jìn)行拍照記錄;干預(yù)細(xì)胞:在干預(yù)前8 h以無(wú)血清培養(yǎng)基對(duì)細(xì)胞進(jìn)行饑餓處理后,進(jìn)行干預(yù)實(shí)驗(yàn)。對(duì)照組:以無(wú)血清培養(yǎng)基培養(yǎng)細(xì)胞24 h;BMP-4組:分別以濃度為5、10、20、50 和100 ng/mL的 BMP-4 作用細(xì)胞24 h;結(jié)晶紫染色HUVECs并在同一位置拍照記錄遷移情況;使用Image-Pro Plus 6.0軟件測(cè)定單個(gè)視野十字劃痕內(nèi)的細(xì)胞數(shù)以衡量HUVECs的遷移能力。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
本實(shí)驗(yàn)考察BMP-4干預(yù)下HUVECs形成血管管腔樣結(jié)構(gòu)的能力。步驟如下:實(shí)驗(yàn)前1 d應(yīng)把96孔板,200 μL黃色槍頭移至4℃遇冷過(guò)夜。實(shí)驗(yàn)前1 d將基質(zhì)膠自-20℃移至4℃過(guò)夜緩慢融化;在冰上以每孔25 μL基質(zhì)膠包被96孔板;37℃ 30 min使膠凝固;每孔接種5×103個(gè)HUVECs,培養(yǎng)基最終體積為100 μL,24 h后觀察各組成管情況,以 HUVECs是否形成血管管腔樣結(jié)構(gòu)衡量其成管能力。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
細(xì)胞長(zhǎng)至匯合后,分別以上述濃度的BMP-4處理細(xì)胞10 min,RIPA裂解液提取細(xì)胞總蛋白,BCA法測(cè)定蛋白質(zhì)濃度,每孔上樣量為30 μg。電泳,恒壓65 V,約40 min時(shí)樣品前沿進(jìn)入分離膠,切換電壓到120 V,直至溴酚藍(lán)跑到距膠底沿1.0 cm時(shí)終止電泳。采用濕轉(zhuǎn)法進(jìn)行轉(zhuǎn)膜,恒流,86 mA,3 h。
HUVECs呈單層貼壁生長(zhǎng),細(xì)胞為扁平短梭狀。待細(xì)胞匯合后即表現(xiàn)為鵝卵石樣(圖1A)。免疫熒光染色顯示細(xì)胞為VE-cadherin陽(yáng)性,證實(shí)細(xì)胞確為HUVECs(圖1B)。
與對(duì)照組相比,只有在BMP-4濃度是20 ng/mL時(shí),對(duì)HUVEC的增殖才有顯著抑制作用。當(dāng)BMP-4的濃度為50和100 ng/mL,這種抑制作用減弱,HUVEC的增殖能力又恢復(fù)到正常水平(圖2)。
與對(duì)照組相比,只在BMP4濃度是20 ng/mL時(shí),對(duì)HUVEC的遷移才有顯著抑制作用。當(dāng)BMP-4濃度為50和100 ng/mL,這種抑制作用減弱,HUVEC的遷移能力又恢復(fù)到正常水平(圖3)。
圖1 HUVECs的形態(tài)學(xué)觀察Fig 1 Morphology of HUVECs(×400)
與對(duì)照組相比,只在 BMP-4濃度是20 ng/mL時(shí),對(duì)HUVEC的體外成血管能力才有顯著抑制作用。當(dāng)BMP-4濃度為50和100 ng/mL,這種抑制作用減弱,HUVEC的體外成血管能力又恢復(fù)到正常水平(圖4)。
與對(duì)照組相比,BMP-4在低濃度即 5,10,20 ng/mL時(shí)抑制HUVEC ERK/MAPK的活性,但是這種抑制作用只在 BMP4濃度是10 ng/mL與20 ng/mL時(shí)具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。然而,隨著B(niǎo)MP-4濃度的繼續(xù)升高,即BMP-4的濃度為50,100 ng/mL,這種抑制作用減弱,HUVEC ERK/MAPK活性又恢復(fù)到正常水平(圖5)。
早期的文獻(xiàn)表明,BMPs在胚胎早期發(fā)育和血管系統(tǒng)的形成過(guò)程中具有重要的作用,之后,陸續(xù)有研究關(guān)注BMPs對(duì)于內(nèi)皮細(xì)胞體外成血管能力的影響[9]。然而,針對(duì)BMP-4對(duì)于臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞體外成血管能力的影響的研究至今仍很少見(jiàn)。本研究結(jié)果表明,BMP-4的濃度在20 ng/mL時(shí),才對(duì)HUVECs的成血管能力有顯著抑制作用。然而,當(dāng)BMP-4的濃度升高至50和100 ng/mL時(shí),這種抑制作用逐漸減弱,并有恢復(fù)到正常水平的跡象,這一結(jié)果與一些研究結(jié)果存在一定的不一致,如BMP-2呈濃度依賴(lài)型促進(jìn)HUVEC的增殖。遷移[10],盡管BMP-2和BMP-4屬于BMPs家族中同一亞類(lèi),但是這種不一致仍然可能與BMP-2和BMP-4的生物學(xué)功能存在一定的差異有關(guān)。
圖2 BMP-4對(duì)HUVEC增殖能力的影響Fig 2 Effects of BMP-4 at different concertrations on HUVEC proliferation
BMPs與受體結(jié)合后,Ⅰ型受體被組成型活化的Ⅱ型受體磷酸化,繼而啟動(dòng)Smad信號(hào)級(jí)聯(lián)通路。Smad1/Smad5/Smad8被活化的Ⅰ型受體磷酸化后,與co-Smad(Smad4)結(jié)合后轉(zhuǎn)移至細(xì)胞核以調(diào)控相關(guān)基因的表達(dá)。然而本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),存在不同于Smad通路以外的其他信號(hào)通路參與 BMP-4對(duì)HUVEC成血管能力,即ERK/MAPK通路,這一結(jié)果與一些研究結(jié)果一致,認(rèn)為 BMPs通過(guò) ERK/MAPK[11-12]通路調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖,分化和凋亡。
圖5 BMP-4對(duì)HUVEC ERK1/2的影響Fig 5 Effects of BMP-4 on pERK1/2 expression of HUVECs(±s)
本研究結(jié)果顯示,BMP-4在低濃度時(shí)具有抑制HUVEC的增殖、遷移和成血管,然而隨著B(niǎo)MP-4濃度的升高,這種抑制作用逐漸減弱,phospho ERK1/2水平的變化趨勢(shì)與上述作用一致,故本研究結(jié)果提示BMP-4對(duì)于HUVEC體外成血管能力的影響可能是通過(guò)ERK/MAPK發(fā)揮作用的。此外,有研究認(rèn)為,BMP-4通過(guò) dual-specificity phosphatase(DUSP)的磷酸酶來(lái)調(diào)節(jié)phospho ERK1/2的水平[13]。在本研究中,BMP-4 對(duì)于phospho ERK1/2水平的調(diào)控是否也是通過(guò)DUSP家族成員進(jìn)行的有待進(jìn)一步探討。
綜上所述,本研究結(jié)果表明,BMP-4在低濃度時(shí)具有抑制HUVEC的增殖、遷移和成血管,然而隨著B(niǎo)MP-4濃度的升高,這種抑制作用逐漸減弱,并有恢復(fù)至正常水平的趨勢(shì),BMP-4對(duì)于HUVEC體外成血管能力的影響可能是通過(guò)ERK/MAPK發(fā)揮作用的。
[1]Date T,Doiguchi Y,Nobuta M,et al.Bone morphogenetic protein-2 induces differentiation of multipotent C3H10T1/2 cells into osteoblasts,chondrocytes,and adipocytes in vivo and in vitro[J].J Orthop Sci,2004,9:503 -508.
[2]Xiao YT,Xiang LX,Shao JZ.Bone morphogenetic protein[J].Biochem Biophys Res Commun,2007,362:550 -553.
[3]Wozney JM,Rosen V,Celeste AJ,et al.Novel regulators of bone formation:molecular clones and activities[J].Science,1988,242:1528-1534.
[4]Carano RA,F(xiàn)ilvaroff EH.Angiogenesis and bone repair[J].Drug Discov Today,2003,8:980-989.
[5]Winnier G,Blessing M,Labosky PA,et al.Bone morphogenetic protein-4 is required for mesoderm formation and patterning in the mouse[J].Genes Dev,1995,9:2105 -2116.
[6]Lechleider RJ,Ryan JL,Garrett L,et al.Targeted mutagenesis of Smad1 reveals an essential role in chorioallantoic fusion[J].Dev Biol,2001,240:157 -167.
[7]Suzuki Y,Montagne K,Nishihara A,et al.BMPs promote proliferation and migration of endothelial cells via stimulation of VEGF-A/VEGFR2 and angiopoietin-1/Tie2 signalling[J].J Biochem,2008,143:199-206.
[8]Crampton SP,Davis J,Hughes CC.Isolation of human umbilical vein endothelial cells(HUVEC)[J].J Vis Exp,2007:183.
[9]Csiszar A,Labinskyy N,Jo H,et al.Differential proinflammatory and prooxidant effects of bone morphogenetic protein-4 in coronary and pulmonary arterial endothelial cells[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2008,295:H569-577.
[10]Finkenzeller G,Hager S,Stark GB.Effects of bone morphogenetic protein 2 on human umbilical vein endothelial cells[J].Microvasc Res,2012,84:81 -85.
[11]Li Z,Chen YG.Fine-tune of intrinsic ERK activity by extrinsic BMP signaling in mouse embryonic stem cells[J].Protein Cell,2012,3:401 -404.
[12] Chiu CY,Kuo KK,Kuo TL,et al.The activation of MEK/ERK signaling pathway by bone morphogenetic protein 4 to increase hepatocellular carcinoma cell proliferation and migration [J].Mol Cancer Res,2012,10:415-427.
[13]Li Z,F(xiàn)ei T,Zhang J,et al.BMP4 Signaling Acts via dual-specificity phosphatase 9 to control ERK activity in mouse embryonic stem cells[J].Cell Stem Cell,2012,10:171-182.