施春霖，劉聰，肖旦望，陳社員，官春云，熊興華

(作物基因工程湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，湖南 長(zhǎng)沙 410128)

植物油不僅是人類飲食的主要組成部分，還在工業(yè)和生物能源上有很好的應(yīng)用和發(fā)展前景[1]。由于種子含油量是受多基因控制的，長(zhǎng)期以來利用調(diào)控種子脂肪酸代謝中的關(guān)鍵酶基因來達(dá)到提高含油量的效果并不理想，但通過轉(zhuǎn)錄因子對(duì)相關(guān)代謝途徑的1 組基因進(jìn)行遺傳修飾，可以更有效地達(dá)到提高含油量的目的[2]。種子的胚胎發(fā)育和脂肪酸代謝途徑涉及許多復(fù)雜的過程，這些過程都受到許多轉(zhuǎn)錄因子的調(diào)控[3–7]，這些轉(zhuǎn)錄因子相互之間存在聯(lián)系，形成1 個(gè)調(diào)控網(wǎng)絡(luò)，共同調(diào)控種子胚的發(fā)育和成熟以及油脂的形成[8]。Focks 等[9]采用梯度離心篩選出了1 個(gè)低含油量、種皮發(fā)皺的突變體wri1，圖位克隆發(fā)現(xiàn)，控制該性狀的基因WRI1 編碼1 個(gè)DNA 結(jié)合轉(zhuǎn)錄因子，功能缺失時(shí)致使含油量降低80%，而過表達(dá)卻使含油量提高20%左右。對(duì)WRI1 突變體進(jìn)行生物化學(xué)分析顯示，突變體中幾種糖酵解酶，比如質(zhì)體丙酮酸激酶、酰基載體蛋白(ACP)、3–酮酯酰–ACP 合成酶、烯酯酰–ACP 還原酶等活性明顯低于野生型水平的。這些在WRI1 突變體中表達(dá)水平低的基因，多數(shù)是參與脂肪和糖酵解的基因，而且它們的積累模式與種子油的一致，這說明WRI1 很可能調(diào)控這些基因的表達(dá)。Cernac 等[6]和Masaki 等[10]的研究都證明了這一假設(shè)。Baud 等[11]的研究還發(fā)現(xiàn)了WRI1 新的靶基因，包括脂肪酸合成酶基因、硫辛酸和生物素合成途徑相關(guān)酶基因，但內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的脂肪酸脫氫酶和延伸酶基因不受WRI1 的調(diào)控，暗示著WRI1 基因可能在控制種子發(fā)育和油脂積累過程中起著關(guān)鍵性作用。后來一系列的研究[12–16]發(fā)現(xiàn)，WRI1 基因確實(shí)在油脂的合成方面起著重要作用。To等[13]的研究發(fā)現(xiàn)，擬南芥中存在多拷貝WRI1 基因，且部分WRI1 基因拷貝對(duì)油脂的合成調(diào)控作用不明顯。另外，由于甘藍(lán)型油菜(B. napus，2n=38,AACC)起源于白菜(B. rapa，2n=20,AA)和甘藍(lán)(B.oleracea，2n=18,CC)的天然雜交和染色體組自然加倍，因此，甘藍(lán)型油菜中可能存在不同WRI1 基因，且對(duì)含油量的影響可能不同。筆者以甘藍(lán)型油菜湘油15 號(hào)為材料，克隆甘藍(lán)型油菜的WRI1 基因，并對(duì)序列進(jìn)行分析，旨在有目的地調(diào)控該轉(zhuǎn)錄因子基因，為培育高含油量的油菜品種提供便利。

1 材料與方法

1.1 供試材料

甘藍(lán)型油菜湘油15 號(hào)(Brassica napus,2n=38,AACC)，由國家油料改良中心(湖南)提供；矮腳小白菜(B. rapa，2n=20，AA)、強(qiáng)夏甘藍(lán)(B.oleracea，2n=18，CC)，由植物病蟲害防治湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室提供；大腸桿菌DH5α 由作物基因工程湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保存。

1.2 主要試劑及儀器

主要試劑：EASYspin 植物RNA 快速提取試劑盒及TUREscript 1stStrand cDNA Synthsis Kit 試劑盒，購自北京艾德萊生物科技有限公司；高保真Pfu及EasyPure Quick Gel Extraction Kit 切膠回收試劑盒，購自北京全式金生物科技有限公司；連接載體pMD18–T Simple Vector 及相關(guān)限制性內(nèi)切酶，購自Takara 生物技術(shù)有限公司。

主要儀器：Eppendorf Centrifuge 5804R 臺(tái)式冷凍高速離心機(jī)；MiKRO 220R 高速離心機(jī)；UV–1700 PharmaSpec 紫外分光光度計(jì)；Pharmacia MultiTemp Ⅲ恒溫水浴鍋；HIRAYAMA 全自動(dòng)高溫滅菌鍋；MJ Research PTC–200 PCR 儀。

1.3 總RNA 提取和第一鏈cDNA 合成

按EASYspin植物RNA快速提取試劑盒的操作說明從供試材料單株單片新鮮葉中提取總RNA。按照TUREscript 1stStrand cDNA Synthsis Kit 的操作說明，以提取的總RNA 為模板，反轉(zhuǎn)錄合成第一鏈cDNA。

1.4 引物設(shè)計(jì)與PCR 擴(kuò)增

以 GenBank WRI1 mRNA 全長(zhǎng)編碼序列(DQ370141)為參考，利用Primer 5.0 設(shè)計(jì)引物FW：下劃線部分分別為Bam HI 位點(diǎn)和Sac I 位點(diǎn)。分別以3 種供試材料的第一鏈cDNA 為模板，進(jìn)行PCR 擴(kuò)增。PCR反應(yīng)體系為20 μL，包括cDNA 模板2 μL，10×Buffer 2 μL，2.5 mmol/L dNTPs 2 μL，引物各1 μL，5 U/μL 高保真Pfu 0.5 μL，ddH2O11.5 μL。PCR 擴(kuò)增程序?yàn)椋?4 ℃預(yù)變性3 min，94 ℃變性40 s，50 ℃退火40 s，72 ℃延伸100 s，30 個(gè)循環(huán)，72 ℃延伸10 min。反應(yīng)終止后，取PCR 產(chǎn)物在1.0%的瓊脂糖凝膠上電泳檢測(cè)。用切膠回收試劑盒回收目的條帶，用于載體連接反應(yīng)。

1.5 載體連接與測(cè)序

將回收產(chǎn)物連接至pMD18–T Simple Vector，連接體系為10 μL，包括回收產(chǎn)物3 μL，pMD18-T Simple Vector 1 μL，Solution I 5 μL，ddH2O 1 μL，16 ℃連接1 h。采用熱激法將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至大腸桿菌，篩選陽性克隆。取陽性克隆送北京六合華大基因科技股份有限公司測(cè)序。

1.6 序列分析與酶切檢測(cè)

采用DNAman 進(jìn)行序列比對(duì)，分析WRI1 基因編碼序列的單核苷酸變異；采用CLUSTAL X，MEGA5.0 軟件進(jìn)行聚類系譜分析；采用Primer 5.0進(jìn)行酶切位點(diǎn)分析；采用DNAman 進(jìn)行可以識(shí)別A和C 基因組來源WRI1 的特異性酶切位點(diǎn)分析，用所得到的該內(nèi)切酶酶切檢測(cè)3種供試材料的PCR產(chǎn)物；采用雙酶切檢測(cè)酶切位點(diǎn)變異的真實(shí)存在。

2 結(jié)果與分析

2.1 WRI1 基因mRNA 全長(zhǎng)編碼序列的克隆

3 種供試材料均擴(kuò)增出大小約為1.3 kb 的PCR產(chǎn)物，與目的片段大小一致(圖1)。將PCR 產(chǎn)物連接到PMD18–TSimple Vector 載體上，轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α，陽性菌落經(jīng)PCR 檢測(cè)，從湘油15 號(hào)篩選出 5 個(gè)陽性克隆，分別命名為 BnWRI1–1，BnWRI1–2，BnWRI1–3，BnWRI1–4 和BnWRI1–5；矮腳小白菜與強(qiáng)夏甘藍(lán)各篩選出1 個(gè)陽性克隆，分別命名為BraWRI1 和BoWRI1。測(cè)序結(jié)果顯示，BnWRI1–1 和 BraWRI1 的大小為 1 248 bp，BnWRI1–2 和 BnWRI1–3 的大小為 1 254 bp，BnWRI1–4、BnWRI1–5 和BoWRI1 的大小為1 242 bp。重復(fù)測(cè)序1 次，結(jié)果一致。

圖1 白菜、甘藍(lán)、甘藍(lán)型油菜WRI1 基因編碼序列PCR 擴(kuò)增結(jié)果Fig.1 PCR amplification of WRI1 cDNA from Brassica rapa,Brassica oleracea and Brassica napus

2.2 WRI1 基因cDNA 序列的比對(duì)結(jié)果

序列比對(duì)分析結(jié)果(表1)顯示，克隆所得的WRI1 基因編碼序列共發(fā)現(xiàn)41 個(gè)單核苷酸的變異。BnWRI1–4、BnWRI1–5 在826 位和870 位分別存在9 個(gè)堿基和3 個(gè)堿基的缺失，BnWRI1–1 在1 217 到1 222 位存在6 個(gè)堿基的缺失。通過對(duì)測(cè)序結(jié)果所編碼的氨基酸序列進(jìn)行分析，發(fā)現(xiàn)這些堿基的缺失導(dǎo)致BnWRI1–4、BnWRI1–5 所編碼的氨基酸序列存在4 個(gè)氨基酸的缺失，BnWRI1–1 存在2 個(gè)氨基酸的缺失。這種序列上的變化是否會(huì)造成該蛋白存在調(diào)控方面的差異，還有待進(jìn)一步研究。

表1 WRI1 編碼序列單核苷酸變異位點(diǎn)分布Table 1 SNPs in the coding sequences of the cloned WRI1

2.3 WRI 基因cDNA 序列系譜聚類分析

系譜聚類分析結(jié)果(圖2)顯示，所克隆WRI1 基因cDNA 在進(jìn)化關(guān)系上同擬南芥AtWRI1 (At3G54320)同處1 個(gè)分支，進(jìn)化關(guān)系最近，且BnWRI1–1、BnWRI1–2、BnWRI1–3 與克隆自矮腳小白菜的BraWRI1 被聚為一類，BnWRI1–4、BnWRI1–5 與克隆自強(qiáng)夏甘藍(lán)的BoWRI1 被聚為另外一類，且白菜和甘藍(lán)均存在和擬南芥其他幾個(gè)WRI1 基因拷貝相似的基因序列。由此可見，甘藍(lán)型油菜湘油15 號(hào)中可能有分別來源于A 基因組和C 基因組的WRI1基因，并且A 基因組與C 基因組也可能存在不同WRI1 基因拷貝。

圖2 白菜、甘藍(lán)、甘藍(lán)型油菜和擬南芥AP2–Like WRI1 基因編碼序列的聚類系譜Fig.2 Cladogram of AP2–Like WRI1 coding sequences from Brassica rapa,Brassica oleracea,Brassica napus and Arabidopsis thaliana

2.4 WRI1基因cDNA特異性酶切位點(diǎn)分析及酶切檢測(cè)結(jié)果

序列比對(duì)和酶切位點(diǎn)分析結(jié)果顯示，來源于A基因組的 BraWRI1、BnWRI1–1、BnWRI1–2 和BnWRI1–3 第892 位核苷酸為鳥嘌呤(G)，而來源于C 基因組的BoWRI1、BnWRI1–4 和BnWRI1–5 第880位核苷酸為腺嘌呤(A)。該變異導(dǎo)致甘藍(lán)和甘藍(lán)型油菜 C 基因組 WRI1 基因編碼序列中有 Bcl I (TGATCA)識(shí)別位點(diǎn)，而白菜和甘藍(lán)型油菜A 基因組WRI1 編碼序列沒有BclI 識(shí)別位點(diǎn)(圖3)。以內(nèi)切酶BclI 酶切3 種供試材料純化后的PCR 產(chǎn)物，1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)顯示，湘油15 號(hào)的WRI1 基因編碼序列 PCR 產(chǎn)物被切成3 個(gè)片段，強(qiáng)夏甘藍(lán)的WRI1 基因編碼序列PCR 產(chǎn)物被切成2 個(gè)片段，而矮腳小白菜的WRI1 基因編碼序列PCR 產(chǎn)物沒有被切開(圖4)。提取陽性克隆質(zhì)粒(連接至pMD18–T Simple vector)并依照?qǐng)D5 示意方法作雙酶切檢測(cè)，結(jié)果如圖 6 所示。由此證明了不同基因組AtWRI1–Like WRI1 基因突變位點(diǎn)的真實(shí)存在，并且可以利用核酸內(nèi)切酶Bcl I 區(qū)分甘藍(lán)型油菜A 和C基因組AtWRI1–Like WRI1 基因。

圖4 甘藍(lán)型油菜、甘藍(lán)、白菜WRI1 的PCR產(chǎn)物Bcl I 酶切檢測(cè)結(jié)果Fig.4 Digestion of WRI1 cDNAs from Brassica napus,Brassica oleracea and Brassica rapa by Bcl I

圖5 雙酶切檢測(cè)示意圖Fig. 5 Schematic diagram of double digests

圖6 陽性克隆的雙酶切檢測(cè)結(jié)果Fig.6 Identification of WRI1 cDNAs from Brassica napus with double digests

3 結(jié)論與討論

提高油菜種子含油量是現(xiàn)今乃至將來育種工作的重要目標(biāo)。通過常規(guī)育種手段選育出了許多高含油量、高品質(zhì)的油菜品種[17–21]。筆者從現(xiàn)今廣泛推廣種植的甘藍(lán)型雙低油菜品種湘油15 號(hào)中克隆出的WRI1 基因編碼序列是以GenBank WRI1 全長(zhǎng)編碼序列DQ370141 為模板設(shè)計(jì)得到的引物，經(jīng)PCR 擴(kuò)增。擴(kuò)增產(chǎn)物序列與擬南芥AtWRI1 相似。序列分析發(fā)現(xiàn)，BnWRI1–1、BnWRI1–2、BnWRI1–3與矮腳小白菜WRI1 基因編碼序列BraWRI1 來源相同。另外，BnWRI1–4、BnWRI1–5 與強(qiáng)夏甘藍(lán)WRI1基因編碼序列BoWRI1 來源相同。不同來源的WRI1序列上存在差異。聚類分析結(jié)果顯示，分屬A 基因組和C 基因組的白菜和甘藍(lán)均存在和擬南芥另外3個(gè)WRI1 基因拷貝相似的基因序列，而甘藍(lán)型油菜含有A 組和C 組2 種基因型的染色體，由此推測(cè)甘藍(lán)型油菜也可能存在不同的WRI1 基因拷貝，并且有不同的基因組來源，對(duì)脂肪酸合成調(diào)控作用也可能各有不同；因此，獲得并區(qū)分能高效提高含油量的WRI1 基因具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。限制性內(nèi)切酶Bcl I 的酶切結(jié)果不僅證實(shí)了突變位點(diǎn)的真實(shí)存在，還為區(qū)分甘藍(lán)型油菜AtWRI1–Like WRI1 基因的A和C 基因組的來源提供了新的方法。然而，對(duì)基因功能的研究還需進(jìn)一步利用轉(zhuǎn)基因手段來驗(yàn)證。WRI1 基因的克隆和序列分析將對(duì)甘藍(lán)型油菜該轉(zhuǎn)錄因子的研究提供素材，并為進(jìn)一步的轉(zhuǎn)基因研究和應(yīng)用打下基礎(chǔ)。

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