王素梅
(1.遼寧醫(yī)學(xué)院藥理教研室,遼寧 錦州 121000;2.盤錦市中心醫(yī)院腎內(nèi)科,遼寧 盤錦 124000)
糖尿病腎病(diabetic nephropathy,DN)是糖尿病(diabetes mellitus,DM)常見(jiàn)的慢性并發(fā)癥,其發(fā)病機(jī)制目前尚不十分清楚,糖脂代謝紊亂、腎素血管緊張素系統(tǒng)的激活、氧化應(yīng)激以及細(xì)胞凋亡等因素都參與其發(fā)生發(fā)展,其中氧化應(yīng)激在DN 的發(fā)生發(fā)展中起重要作用[1],活性氧族(reactive oxygen species,ROS)增加及機(jī)體炎癥反應(yīng)在糖尿病繼發(fā)性病變中發(fā)揮著重要的生物學(xué)作用[2-3]。研究顯示[4],糖尿病常伴有多種細(xì)胞因子水平的改變,單核/巨噬細(xì)胞的趨化積聚對(duì)最后的腎臟損傷有著重要影響,MCP-1 被認(rèn)為是引起其作用的重要調(diào)節(jié)因子,影響著巨噬細(xì)胞浸潤(rùn)和腎小球硬化。本研究通過(guò)觀察探討坎地沙坦對(duì)糖尿病腎臟氧化應(yīng)激及MCP-1 表達(dá)的影響,進(jìn)一步探討坎地沙坦酯對(duì)糖尿病腎病的保護(hù)作用及可能機(jī)制。
健康雄性SD 大鼠40 只,體重250~300 g,由遼寧醫(yī)學(xué)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心提供。鏈脲佐菌素(美國(guó)Sigma 公司),MDA、SOD 試劑盒(北京建成生物工程研究所),抗大鼠MCP-1 多克隆抗體(京博奧森生物技術(shù)有限公司)。
健康SD 大鼠40 只,雄性200~250 g 左右(由遼寧醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供),適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后,隨機(jī)分為正常對(duì)照組(A)10 只,糖尿病模型組(B)10 只,坎地沙坦酯(C)低、高劑量組(D)各10 只。糖尿病組和坎地沙坦酯組均一次性給予鏈脲佐菌素(Sigma 公司)50 mg·kg-1(體重)左下腹腔注射,72 h 后尾靜脈取血測(cè)血糖,血糖≥16.7 mmol·L-1,尿糖陽(yáng)性者定為糖尿病大鼠模型。對(duì)照組給予等量檸檬酸緩沖液。坎地沙坦組按低、高劑量分別給予坎地沙坦酯5、10 mg/ (kg·d),溶于0.9%氯化鈉溶液1.5 mL,灌胃1 次,連續(xù)12 周。
成模飼養(yǎng)12 周后,用20%烏拉坦(5 mL/kg)腹腔注射麻醉大鼠,頸總動(dòng)脈取血2 mL,離心10 min (3000 r/min),分離血清,-80 ℃保存,用于生化指標(biāo)測(cè)定。腎臟以冰生理鹽水沖洗干凈,用濾紙吸干水分后稱重,計(jì)算腎臟質(zhì)量指數(shù)=腎重/體重,左腎凍存于-80 ℃冰箱中,用于Western印跡檢測(cè);右腎以10%中性甲醛溶液固定,PBS沖洗,石蠟包埋,制成4 μm 切片,用于光鏡觀察及免疫組化檢測(cè)。
采用日立7180 全自動(dòng)生化分析儀測(cè)定UREA。
丙二醛(MDA)用硫代巴比妥酸(TBA)法,超氧化物歧化酶(SOD)活性用黃嘌呤氧化酶法。SOD 測(cè)定原理:通過(guò)黃嘌呤及黃嘌呤氧化酶反應(yīng)系統(tǒng)產(chǎn)生超氧陰離子自由基(O2-),后者氧化羥胺形成亞硝酸鹽,在顯色劑的作用下呈現(xiàn)紫紅色,用可見(jiàn)分光光度計(jì)測(cè)其吸光度。通過(guò)公式計(jì)算出被測(cè)樣品中SOD 活力。具體操作按照試劑說(shuō)明書進(jìn)行。
采用免疫組化ABC 染色法,切片厚4 μm,常規(guī)脫蠟水化,一抗為兔抗大鼠Bcl-2、P53 單克隆抗體(1 ∶50 稀釋),二抗為生物素化羊抗兔lgG(1 ∶100 稀釋),以PBS 代替一抗作陰性對(duì)照,DAB 顯色,蘇木素復(fù)染,中性樹(shù)膠封片。Bcl-2為細(xì)胞質(zhì)和核膜表達(dá),陽(yáng)性表達(dá)細(xì)胞為黃色或棕黃色,陰性對(duì)照用PBS 代替Ⅰ抗。
取大鼠腎組織,立即放入預(yù)冷的裂解緩沖液中,4 ℃超聲粉碎,12000 × g 離心30 min,取上清,用Lowry 法測(cè)定蛋白質(zhì)含量。用10%~12%的SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)分離蛋白質(zhì),每個(gè)泳道蛋白上樣量為20 μg。一個(gè)泳道加SeeBlue Plus 2 預(yù)染蛋白標(biāo)記物,電泳后將PAGE凝膠中的蛋白質(zhì)電轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜上,取出后將膜放入3 % BSA 阻斷緩沖液中,封閉60 min,再用TBS 洗膜3 次,每次10 min。將膜放入一抗中(抗體1 ∶500 稀釋),4 ℃過(guò)夜。TTBS 沖洗后,將膜放入二抗(二抗均1 ∶500 稀釋)中,室溫孵育1~2 h,然后用TTBS 洗膜3 次,每次10 min。將膜在Super Signal West Pico 底物工作液中孵育5 min,進(jìn)行Ecl 化學(xué)發(fā)光。測(cè)定MCP-1。每個(gè)抗體測(cè)定時(shí)都進(jìn)行β-肌動(dòng)蛋白測(cè)定,以保證蛋白上樣量的一致性。利用Visionworks 6.3.3.圖像采集及分析軟件對(duì)蛋白帶進(jìn)行分析。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。
實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用χ2表示,用SPSS13.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。采用one-way ANOVA 和LSD-t 檢驗(yàn)進(jìn)行兩兩比較。
病程12 周時(shí),糖尿病組大鼠“三多一少”癥狀明顯,精神萎靡,體毛脫落??驳厣程辊ジ鲃┝拷M大鼠一般情況優(yōu)于糖尿病組。
DM 組血糖一直在高水平波動(dòng),與A 組比較明顯升高(P <0.01);坎地沙坦酯各劑量組血糖與糖尿病組相比降低不明顯(P >0.05),差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,見(jiàn)表1。
表1 坎地沙坦酯對(duì)糖尿病大鼠血糖的影響
與A 組相比,DM 組大鼠腎質(zhì)量指數(shù)明顯升高(P <0.01);坎地沙坦酯各劑量組腎質(zhì)量指數(shù)與DM 組相比有不同程度的降低見(jiàn)表2。
表2 坎地沙坦酯對(duì)糖尿病大鼠體重及腎臟質(zhì)量指數(shù)的影響(,n=8)
與A 組相比,B 組大鼠尿素明顯升高(P <0.01);而不同濃度的坎地沙坦酯劑量組尿素明顯降低(P <0.05),見(jiàn)表3。
表3 地沙坦酯對(duì)糖尿病大鼠血清尿素氮水平的影響(,n=10)
結(jié)果顯示,與A 組相比,B 組MDA 含量顯著升高 (P <0.01),SOD 活性顯著降低 (P <0.05);與B 組相比,C 組、D 組SOD 活性有不同程度的升高(P <0.05),見(jiàn)表4。
表4 各組大鼠血清及腎組織SOD 活性、MDA含量變化(,n=8)
與A 組相比,B 組中MCP-1 蛋白表達(dá)均明顯升高(P <0.01);而坎地沙坦酯各劑量組與B 組相比,MCP-1 蛋白表達(dá)明顯減少(P <0.05),見(jiàn)表5、圖1。
表5 坎地沙坦酯對(duì)糖尿病大鼠腎臟MCP-1 蛋白表達(dá)的影響(χ2,n=3)
MCP-1 在各組大鼠腎皮質(zhì)均有表達(dá)。A 組大鼠腎組織MCP-1 有較少表達(dá),可見(jiàn)少量散在的棕黃色顆粒。B 組中MCP-1 蛋白表達(dá)明顯增加,可見(jiàn)較多的棕黃色顆粒,坎地沙坦酯用藥組MCP-1蛋白表達(dá)明顯減弱,見(jiàn)圖2。
糖尿病腎病(diabetic nephropathy,DN)系糖尿病嚴(yán)重的并發(fā)癥,其機(jī)制尚未完全闡明,氧化應(yīng)激是其發(fā)生發(fā)展的共同機(jī)制[5]。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)鏈脲佐菌素建立糖尿病大鼠模型,并應(yīng)用坎地沙坦酯干預(yù)治療。觀察坎地沙坦酯對(duì)糖尿病大鼠氧化應(yīng)激及尿MCP-1 的水平、腎組織MCP-1 蛋白表達(dá)及腎臟結(jié)構(gòu)、功能的影響,探討坎地沙坦酯腎臟保護(hù)作用及可能機(jī)制。實(shí)驗(yàn)中DM 組大鼠血清尿素水平升高,腎臟質(zhì)量指數(shù)增加;應(yīng)用坎地沙坦酯后,各劑量組血清尿素水平降低,腎臟質(zhì)量指數(shù)下降,提示坎地沙坦酯對(duì)糖尿病大鼠腎臟損傷具有保護(hù)作用。
在正常情況下,活性氧產(chǎn)生和活性氧的清除處于平衡狀態(tài),當(dāng)活性氧產(chǎn)生能力超過(guò)清除能力時(shí),蓄積過(guò)多的活性氧就會(huì)攻擊機(jī)體,產(chǎn)生氧化應(yīng)激。氧化應(yīng)激對(duì)糖尿病腎病的影響包括活性氧對(duì)腎小球血管通透性及血流動(dòng)力學(xué)的影響,對(duì)腎細(xì)胞的損傷以及對(duì)腎組織內(nèi)細(xì)胞外基質(zhì)的影響等。本實(shí)驗(yàn)中DM 組大鼠腎組織及血清MDA 含量增加,SOD 活性下降,提示氧化應(yīng)激損傷參與了糖尿病腎病的發(fā)生發(fā)展。
MCP-1 是趨化性細(xì)胞因子C-C 亞家族成員之一,由單核細(xì)胞及其他非白細(xì)胞所分泌[6],其主要功能是趨化單核/巨噬細(xì)胞至炎癥部位[7]。正常腎組織中系膜細(xì)胞、腎小管上皮細(xì)胞、腎小球內(nèi)皮細(xì)胞等均可分泌微量的MCP-1,其表達(dá)依賴于細(xì)胞核因子κB 及轉(zhuǎn)錄因子AP-1 的協(xié)調(diào)作用[8]。近年研究認(rèn)為[9],腎小球中由于單核細(xì)胞趨化蛋白l (MCP-l)合成和分泌增加,從而趨化和激活單核/巨噬細(xì)胞和部分T 淋巴細(xì)胞,吸引其向病變部位的聚集、浸潤(rùn),經(jīng)一系列炎癥反應(yīng),形成免疫復(fù)合物、以及補(bǔ)體活化等,參與了DN 的發(fā)生、發(fā)展。糖尿病時(shí)腎臟固有細(xì)胞分泌MCP-1 增強(qiáng),大量MCP-1 可促使單核/巨噬細(xì)胞在腎臟廣泛積聚,促進(jìn)腎臟表達(dá)多種生長(zhǎng)因子,誘導(dǎo)腎臟固有細(xì)胞增生、活化,產(chǎn)生大量膠原和細(xì)胞外基質(zhì)沉積,最終導(dǎo)致糖尿病腎病的發(fā)生[10-11]。本實(shí)驗(yàn)中糖尿病大鼠腎組織中MCP-1 表達(dá)水平升高,進(jìn)一步證實(shí)了糖尿病狀態(tài)下MCP-1 分泌增加。
坎地沙坦酯作為一種血管緊張素Ⅱ1 型受體拮抗劑,可在受體水平完全阻斷AngⅡ的作用,對(duì)腎臟有保護(hù)作用[12]。許多證據(jù)已經(jīng)證明,ARB 類能夠通過(guò)阻斷腎素-血管緊張素醛固酮系統(tǒng)減少糖尿病腎病尿蛋白排泄[13]。血管緊張素Ⅱ1 型受體拮抗劑坎地沙坦可延緩糖尿病腎臟損傷,但其作用機(jī)制目前仍不完全明確。本研究應(yīng)用坎地沙坦酯干預(yù)后,糖尿病大鼠腎臟病理變化較輕,腎功能明顯改善,提示坎地沙坦酯對(duì)延緩糖尿病腎病具有一定的保護(hù)作用。且坎地沙坦酯能減少M(fèi)DA 含量,升高SOD 活性,降低糖尿病大鼠腎臟MCP-1 蛋白表達(dá),提示坎地沙坦酯對(duì)DN 的保護(hù)作用可能與抑制氧化應(yīng)激及下調(diào)MCP-1 的表達(dá)有關(guān)。
圖1 各組大鼠腎臟MCP-1 蛋白表達(dá)(western Blot 法)
圖2 各組大鼠腎臟MCP-1 蛋白表達(dá)(免疫組化法×400)
[1]Nam JS,Cho MH,Lee GT,et al.The activation of NF-kap-paB and AP-1 in peripheral blood mononuclear cells isolated from patients with diabetic nephropathy [J].Diabetes Res Clin Pract,2008,81 (1):25-32.
[2]Westermann D,Rutschow S,Van Linthout S,et al.Inhibition of p38 mitogen-activated protein kinase attenuates left ventricular dysfunction by mediating pro-inflammatory cardiac cytokine levels in a mouse model of diabetes mellitus [J].Diabetologia,2006,49 (10):2507-2513.
[3]Aneja A,Tang WH,Bansilal S,et al.Diabetic cardiomyopathy:insights into pathogenesis,diagnostic challenges,and therapeutic options [J].Am J Med,2008,121 (9):748-757.
[4]Juan F,Gonzalez N,Mora-Fernandez CM.The role of inflammatory cytokines in diabetic nephropathy [J].J AmSoc Nephrol,2008,19 (3):233-234.
[5]Evans JL,Goldfine ID,Maddux BA,et al.Oxidative stress and stress- activated signaling pathways:a unifying hypothesis of type 2 diabetes [J].Endocr Rev,2002,23 (5):599-622.
[6]Fujita H,Morii T,Koshimura J,et al.Possible relationship between adiponectin and renal tubular injury in diabetic nephropathy [J].Endocr J,2006,53 (6):745-752.
[7]Chiarelli F,Cipollone F,Mohn A,et al.Circulating monocyte chemoattractant protein-1 and early development of nephropathy in type 1 diabetes [J].Diabetes Care,2002,25 (10):1829-1834.
[8]Mezzano S,Aros C,Droguett A,et al.NF-Κb activation and overexpression of regulated genes in human diabetic nephropathy[J].Nephrol Dial Transplant,2004,19 (10):2505-2512.
[9]Zheng D,Wolfe M,Cowley BD Jr,et al.Urinary excretion of monocyte chemoattractant protein-1 in autosomal dominant polycystic kidney disease [J].J Am Soc Nephrol,2003,14(10):2588-2595.
[10]Ichinose K,Maeshima Y,Yamamoto Y,et al.Antiangiogenic endostatin peptide ameliorates renal alterations in the early stage of a type 1 diabetic nephropathy model [J].Diabetes,2005,54 (10):2891-2903.
[11]Gruden G,Setti G,Hayward A,et al.Mechanical stretch induces monocyte chemoattractant activity via an NF- Κb- dependent monocyte chemoattractant protein-1- mediated pathway in human mesangial cells:inhibition by rosiglitazone [J].J Am SocNephrol,2005,16 (3):688-696.
[12]Sasaki M,Uehara S,Ohta H,et al.Losartan ameliorates progression of glomerular structural changes in diabetic KKAy mice[J].Life Sci,2004,75 (7):869-880.
[13]Andersen S,Jacobsen P,Tarnow L,et al.Time course of the antiproteinuric and antihypertensive effect of losartan in diabetic nephropathy [J].Nephrol Dial Transplant,2003,18 (2):293-297.