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葫蘆科作物功能基因組學(xué)研究進(jìn)展

2013-04-29 00:44趙勝杰路緒強(qiáng)朱紅菊等
中國(guó)瓜菜 2013年6期
關(guān)鍵詞:甜瓜黃瓜西瓜

趙勝杰 路緒強(qiáng) 朱紅菊等

摘 要: 近些年,植物基因組學(xué)研究發(fā)展迅速,已進(jìn)入功能基因組研究的新階段,一些新的技術(shù)和方法不斷涌現(xiàn)。西瓜、甜瓜和黃瓜是葫蘆科重要的經(jīng)濟(jì)作物,其功能基因組學(xué)研究雖然起步較晚,但也取得了初步成果。綜述了近幾年植物功能基因組學(xué)主要研究方法如表達(dá)序列標(biāo)簽(EST)、TILLING技術(shù)、DNA芯片和RNA干涉(RNAi)等在西瓜、甜瓜和黃瓜上的應(yīng)用概況,并展望了未來(lái)葫蘆科作物功能基因組研究的發(fā)展趨勢(shì)。

關(guān)鍵詞: 功能基因組; 西瓜; 甜瓜; 黃瓜

功能基因組學(xué)(functional genomics),又被稱為后基因組學(xué)(post-genomics),它是利用結(jié)構(gòu)基因組學(xué)提供的豐富信息和產(chǎn)物,借助高通量、大規(guī)模的試驗(yàn)分析方法,在全基因組或系統(tǒng)水平上研究基因的功能,弄清生物體中各組分是如何工作并形成有功能的細(xì)胞、組織及整個(gè)生物體[1]。其目標(biāo)是明確基因組中全部基因的功能, 揭示植物生長(zhǎng)發(fā)育、環(huán)境應(yīng)答互作的分子網(wǎng)絡(luò), 從而全面闡釋植物的生物學(xué)基礎(chǔ)。目前,水稻、擬南芥等模式植物功能基因組學(xué)研究發(fā)展較快,近幾年隨著科技進(jìn)步和資金投入的不斷增加,葫蘆科作物基因組研究也取得了一定的成果。西瓜基因組全長(zhǎng)約425 Mb,甜瓜約450 Mb,黃瓜約376 Mb[2], 基因組大小比較適合開展基因組測(cè)序和功能基因組研究。2007年由西班牙牽頭組織,美國(guó)、中國(guó)、法國(guó)、以色列、日本等國(guó)家的14個(gè)實(shí)驗(yàn)室聯(lián)合啟動(dòng)了國(guó)際葫蘆科基因組計(jì)劃(International Cucurbit Genomics Initiative,ICuGI),該計(jì)劃為瓜類蔬菜的基因組學(xué)研究奠定了良好的技術(shù)平臺(tái)。在此基礎(chǔ)上,2008年相繼啟動(dòng)了葫蘆科三大作物西瓜、甜瓜、黃瓜的全基因組測(cè)序計(jì)劃[3]。隨著基因組測(cè)序工作的陸續(xù)完成,瓜類作物基因組研究逐步進(jìn)入到功能基因組研究時(shí)代。本文綜述了近些年植物功能基因組學(xué)主要研究方法在西瓜、甜瓜以及黃瓜上的應(yīng)用概況。

1 高通量、大規(guī)模EST測(cè)序及功能解析

EST(Express Sequence Tag)是指通過對(duì)cDNA 文庫(kù)中隨機(jī)挑取的克隆進(jìn)行大規(guī)模測(cè)序所獲得的cDNA 的5或3端序列,長(zhǎng)度一般為150~500 bp。EST是基因編碼序列的一部分,通過與數(shù)據(jù)庫(kù)中已知功能的基因序列進(jìn)行對(duì)比,從理論上可推測(cè)其基因功能。EST已發(fā)展成為新基因發(fā)現(xiàn)的有效途徑,也是植物功能基因組學(xué)研究的重要工具。隨著測(cè)序技術(shù)的不斷改良和測(cè)序成本的降低,高通量、大規(guī)模EST測(cè)序及功能解析開始廣泛應(yīng)用。

西瓜EST研究方面,A. Levi 等[4]通過與葉片cDNA消減雜交構(gòu)建了西瓜果實(shí)發(fā)育不同時(shí)期(授粉后12、24、36 d)果肉消減cDNA文庫(kù),獲得了832條無(wú)冗余EST,序列比對(duì)分析表明有410個(gè)EST-unigenes與已知編碼蛋白的基因同源,按功能歸類分屬于初級(jí)代謝、氨基酸合成組裝、細(xì)胞膜運(yùn)輸、細(xì)胞分裂、細(xì)胞壁代謝、細(xì)胞骨架和細(xì)胞形成、基因轉(zhuǎn)錄和表達(dá)、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、抗性防御和次級(jí)代謝。這些潛在的功能基因序列為日后開展西瓜果實(shí)發(fā)育和品質(zhì)形成的遺傳與功能基因組研究奠定了基礎(chǔ)。呂桂云等[5]通過構(gòu)建枯萎病菌誘導(dǎo)的西瓜根系組織SSH-cDNA文庫(kù),對(duì)測(cè)序獲得的4 431條高質(zhì)量EST序列進(jìn)行聚類拼接,獲得1 756個(gè)非重復(fù)序列,基因功能分類表明抗病與防御相關(guān)基因約占36.3%,對(duì)獲得的西瓜與枯萎病非親和互作中部分特異性表達(dá)的基因進(jìn)行了初步探討,發(fā)現(xiàn)可能參與西瓜與枯萎病菌非親和互作的轉(zhuǎn)錄因子、激酶和防衛(wèi)基因及茉莉酸和木質(zhì)素2個(gè)主要代謝途徑。Guo等[6]采用Roche/454新一代測(cè)序技術(shù),從西瓜4個(gè)果實(shí)發(fā)育期(授粉后10、18、26、34 d)獲得了577 023個(gè)高質(zhì)量EST,組裝成了75 068個(gè)unigenes,有54.9% 的unigenes與GeneBank中的已知基因同源,其中2/3來(lái)源于黃瓜。Gene Ontology (GO)注釋表明,有33 853個(gè)unigenes(45.1%)獲得至少1個(gè)GO術(shù)語(yǔ),被注釋序列的基因功能分屬于分子功能(molecular function)類別、生物過程(biological process)類別和細(xì)胞組分(cellular component)類別,所占比例分別為38.6%、38.6%和36%,另外大約29%的unigenes同時(shí)具有以上3種功能分類。生物過程類別的基因主要參與細(xì)胞過程、代謝過程和生物合成過程,表明果肉組織在發(fā)育過程中發(fā)生了廣泛的代謝活動(dòng)。數(shù)字基因表達(dá)譜分析及實(shí)時(shí)定量PCR驗(yàn)證表明有3 023個(gè)基因在果實(shí)發(fā)育不同時(shí)期存在顯著的表達(dá)差異,表達(dá)量差異至少在2倍以上。研究發(fā)現(xiàn)細(xì)胞壁相關(guān)基因在未成熟白瓤果肉組織中高效表達(dá),而類葫蘆卜素代謝基因(八氫番茄紅素合成酶和番茄紅素-β環(huán)化酶)、蔗糖代謝基因(蔗糖磷酸合成酶、蔗糖合成酶)在果實(shí)發(fā)育不同時(shí)期差異表達(dá)明顯,作者對(duì)與果實(shí)品質(zhì)相關(guān)的一些生化途徑如纖維素合成、木栓質(zhì)合成、葡萄糖合成降解以及淀粉合成降解等進(jìn)行了進(jìn)一步鑒定。

甜瓜大規(guī)模EST測(cè)序及功能解析方面,Nurit Katzir等[7]通過構(gòu)建甜瓜EST數(shù)據(jù)庫(kù),從4 800條序列中鑒定出與甜瓜果實(shí)香味代謝相關(guān)的3類基因家族,乙醇乙酰轉(zhuǎn)移酶、倍半萜合酶和類胡蘿卜素裂解雙加氧酶,克隆得到候選基因的全長(zhǎng)序列,研究了這些基因在不同甜瓜品種間的表達(dá)模式。Daniel Gonzalez-Ibeas等[8]通過對(duì)8個(gè)來(lái)源于甜瓜不同組織和生理狀態(tài)的cDNA文庫(kù)(包括授粉后15 d和46 d的2個(gè)果實(shí)的文庫(kù))測(cè)序和序列拼接、組裝,獲得16 637個(gè)無(wú)冗余EST。通過與擬南芥基因組做生物信息學(xué)比對(duì)分析,發(fā)現(xiàn)眾多個(gè)與果實(shí)發(fā)育相關(guān)的基因,如ACC合成酶、ACC氧化酶、細(xì)胞壁代謝酶、類胡蘿卜素合成代謝酶、MADS-box 基因等。實(shí)時(shí)定量PCR表明在果實(shí)成熟期乙烯受體基因EIN4表達(dá)量翻倍,表明該基因與果實(shí)成熟期乙烯信號(hào)調(diào)控相關(guān)。MADS-box 基因SVP在果實(shí)成熟期表達(dá)量下降了4倍,番茄紅素ε環(huán)化酶基因(LUT2)和木葡聚糖內(nèi)糖基轉(zhuǎn)移酶基因(TCH4)表達(dá)量也下降了4倍。2011年,Christian Clepet等[9]構(gòu)建了4個(gè)不同類型甜瓜品種不同植物組織的11個(gè)全長(zhǎng)cDNA文庫(kù)和4個(gè)標(biāo)準(zhǔn)化cDNA文庫(kù),分別獲得71 577 條和22 179條EST,能夠組裝成24 444條unigenes,基因?qū)Ρ蕊@示有75%~85%的序列與雙子葉植物同源,70%與單子葉植物同源,有6 972個(gè)基因家族在雙子葉植物和單子葉植物間具有保守性。對(duì)數(shù)字基因表達(dá)譜研究,結(jié)果表明有175個(gè)基因?yàn)榻M織特異表達(dá),這些基因?yàn)槲磥?lái)開展功能基因組研究提供了寶貴的資源。作者從這些序列中鑒定出了4 068個(gè)SSR和3 073個(gè)SNP,并對(duì)1 382個(gè)全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組進(jìn)行了分析。為了解甜瓜對(duì)鹽脅迫的抗性反應(yīng)機(jī)制,Shiwei Wei等[10]構(gòu)建了耐鹽甜瓜品種根系組織的抑制消減雜交(SSH)cDNA文庫(kù),測(cè)序獲得262條uni-ESTs,有161條序列與已知基因高度同源,128條與未知功能基因同源,有很多基因顯示與生物和非生物脅迫相關(guān)。研究表明,甜瓜耐鹽受眾多蛋白質(zhì)調(diào)控,這些蛋白涉及細(xì)胞代謝、能量、轉(zhuǎn)錄、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、蛋白質(zhì)命運(yùn)以及細(xì)胞拯救和防御等生物過程,表明甜瓜作物耐鹽存在復(fù)雜的抗性反應(yīng)機(jī)制。

在黃瓜上面,Dae-Jae Kim[11]構(gòu)建了黃瓜子葉生長(zhǎng)不同時(shí)期的cDNA文庫(kù),篩選出大量與衰老相關(guān)的基因,利用半定量RT-PCR分析了365個(gè)克隆,發(fā)現(xiàn)有很多基因表達(dá)量提高,這些基因有些功能已知,有些功能未知。齊曉花等[12]采用SMART 技術(shù)構(gòu)建了高抗白粉病的黃瓜品系JIN5-508 的葉片cDNA文庫(kù),利用該文庫(kù)隨機(jī)挑選的8 352個(gè)克隆從5端進(jìn)行單向測(cè)序,共獲得8 035個(gè)有效的ESTs,序列的平均長(zhǎng)度為838 bp。從文庫(kù)中篩選出了大量的低豐度表達(dá)基因,約占unigene總數(shù)的72.5%,1 991個(gè)unigenes 獲得分子功能注釋,其中與蛋白結(jié)合活性和催化活性相關(guān)的基因分別達(dá)到了41.34%和38.72%;在獲得功能注釋的unigene 中,有部分抗病抗逆相關(guān)基因高豐度表達(dá),其中3個(gè)unigenes與擬南芥白粉病抗性基因Mlo2、Mlo8 和Mlo14 高度同源。盛慧等[13]利用抑制性消減雜交技術(shù)(SSH)構(gòu)建黃瓜胚胎發(fā)育早期和晚期差異表達(dá)cDNA文庫(kù),經(jīng)反向Northern blot雜交檢測(cè),共得到97個(gè)陽(yáng)性克隆。利用分子生物學(xué)軟件對(duì)測(cè)序后的序列進(jìn)行質(zhì)量檢測(cè)和聚類、拼接,共得到93個(gè)Uni-ESTs,其中包括86個(gè)singletons 和7個(gè)contigs。將上述EST序列在GenBank上進(jìn)行BLAST比對(duì),有83個(gè)EST片段找到了與之匹配的同源序列,有10 個(gè)EST片段未找到同源序列,推測(cè)可能是新基因。其中很多EST與擬南芥、水稻或玉米蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫(kù)中的熱激蛋白具有很高的同源性。將以上序列進(jìn)行功能分類,發(fā)現(xiàn)在胚胎發(fā)育早期細(xì)胞防御和代謝過程占主要位置,而在胚胎發(fā)育晚期細(xì)胞防御和抗?jié)B透脅迫功能是非常重要的。Guo等[14]以黃瓜全雌系和雌雄同株系測(cè)序獲得353 941條EST,其中188 255條來(lái)源于全雌花,165 686條來(lái)源于雌雄花,結(jié)合5 600條GeneBank收錄的EST和mRNA序列,組裝成了81 401條unigenes。通過基因功能注釋和分析,預(yù)測(cè)了343個(gè)生化代謝途徑。對(duì)數(shù)字基因表達(dá)分析,表明大約200個(gè)基因在不同花性型存在差異表達(dá),為研究植物花分化的分子機(jī)理提供了新的認(rèn)識(shí)。潘宇等[15]構(gòu)建了黃瓜授粉前后多個(gè)發(fā)育階段的幼果組織cDNA文庫(kù),測(cè)序獲得116條EST,92.2% 的長(zhǎng)度在400 bp以上,19% 為重疊序列。在GeneBank中進(jìn)行BLAST分析后確認(rèn)與已知功能基因相似的EST序列有71條,有相似序列而功能未知的基因和沒有相似序列的EST序列各占19.83% 和18.97%。

2 TILLING技術(shù)

TILLING(targeting induced local lesions in

genomes,定向誘導(dǎo)基因組局部突變技術(shù)),該技術(shù)借助高通量、標(biāo)準(zhǔn)化的檢測(cè)手段,快速有效地從經(jīng)化學(xué)誘變劑(EMS)誘變過的突變?nèi)后w中鑒定出點(diǎn)突變。與傳統(tǒng)的插入突變比,TILLING技術(shù)利用傳統(tǒng)的化學(xué)誘變獲得突變體,不需要耗時(shí)的轉(zhuǎn)基因和復(fù)雜的組織培養(yǎng)過程,具有高通量、低成本、高效率等諸多優(yōu)勢(shì)。目前,TILLING作為一種全新的反向遺傳學(xué)研究方法已經(jīng)用于多種植物。

TILLING技術(shù)在葫蘆科作物上的應(yīng)用主要集中在甜瓜方面,2007年,Yaakov Tadmor等[16]最先用EMS誘變構(gòu)建了甜瓜品種Noy Yizreel的突變基因庫(kù),共產(chǎn)生3 000個(gè)M2家系,發(fā)現(xiàn)了大量新的表型突變,大部分為隱性單基因控制。Fatima Dahmani-Mardas等[17]建立了甜瓜品種Char Mono (Cucumis melo L. subsp. melo var. cantalupensis)的TILLING技術(shù)平臺(tái),CharMono系雌雄同株、呼吸躍變型,在M2代發(fā)現(xiàn)了大量子葉、莖蔓、花和果實(shí)發(fā)生的表型突變,利用與果實(shí)品質(zhì)相關(guān)的11個(gè)基因篩選突變株系,發(fā)現(xiàn)大約每隔573 kb會(huì)發(fā)生一個(gè)突變,大部分都是G/C 突變成 A/T ,也有G/C 到 C/G,T/A到 A/T和C/G到A/T的變異,外顯子測(cè)序表明31.3%為基因沉默突變,65.1%為錯(cuò)義,2.4%為轉(zhuǎn)錄終止,1.2%為拼接剪接突變,氨基環(huán)丙烷羧酸氧化酶基因CmACO1篩選到7個(gè)獨(dú)立的點(diǎn)突變,其中G194D果皮顏色變異明顯,果實(shí)延遲成熟黃化,而果形、可溶性固形物含量和果肉顏色仍然與野生型一樣。G194D自交純合株系也呈現(xiàn)出果實(shí)發(fā)育期延長(zhǎng)、果肉變硬和果實(shí)延熟,并且在2個(gè)不同試驗(yàn)地點(diǎn)表現(xiàn)一致,這些表型變異證明了G194D系CmACO1基因突變而來(lái),該研究利用TILLING技術(shù)成功創(chuàng)造了甜瓜品質(zhì)新資源,顯著提高了品種貨架期。Mireia González等[18]建立了甜瓜品種Piel de Sapo (Cucumis melo subsp. melo var. inodorus)的TILLING技術(shù)平臺(tái),Piel de Sapo系雄全同株、非呼吸躍變型,EMS誘變得到2 368個(gè)M2家系,用病毒侵染抗性相關(guān)的2個(gè)基因Cm-eIF4E(核細(xì)胞翻譯起始因子)、eIF(iso)4E(核細(xì)胞翻譯起始因子異構(gòu)體)、4個(gè)與果實(shí)成熟相關(guān)的基因ACO1、Cm-NOR、Cm-DET1、Cm-DHS(脫氧羧腐胺賴氨酸合酶)以及PDS(八氫番茄紅素去飽和酶)篩選突變株系,發(fā)現(xiàn)有4個(gè)Cm-eIF4E等位基因突變,推測(cè)其中的2個(gè)改變了蛋白質(zhì)功能,PDS有2個(gè)等位突變,發(fā)生在外顯子的突變改變了蛋白質(zhì)功能,造成了苗期白化表型突變。4個(gè)與果實(shí)成熟相關(guān)的基因在群體中篩選突變,得到8個(gè)突變的家系。徐美紅等[19]用PCR產(chǎn)物直接測(cè)序和克隆測(cè)序2種方法用于檢測(cè)這8個(gè)突變家系的堿基變化。在直接測(cè)序中,4個(gè)突變家系的測(cè)序結(jié)果清晰,能夠確認(rèn)堿基的變化;其他4個(gè)家系的結(jié)果不清晰,不能確認(rèn)堿基的改變。在克隆測(cè)序中,8個(gè)家系的測(cè)序結(jié)果均清晰,能夠直接確定目的基因的點(diǎn)突變。在2種方法的比較中,克隆測(cè)序的準(zhǔn)確率、效率明顯優(yōu)于直接測(cè)序法。

黃瓜方面,以色列的R. Fraenkel等[20]通過EMS誘變獲得了大約1 000個(gè)M2家系,在苗期發(fā)現(xiàn)了諸如植株矮化、子葉自發(fā)病變、黃(花)葉、白化苗、葉片卷曲、窄型黑色子葉等諸多表型突變,利用PDS-3(八氫番茄紅素去飽和酶)篩選突變株系,發(fā)現(xiàn)了4個(gè)突變家系,測(cè)序表明堿基突變均發(fā)生于基因內(nèi)含子區(qū)域,因此并未造成相應(yīng)的黃化表型突變。該套突變體庫(kù)為黃瓜反向遺傳學(xué)及基因功能研究奠定了很好的基礎(chǔ)。

西瓜作物TILLING技術(shù)的應(yīng)用尚未見正式報(bào)道,美國(guó)農(nóng)業(yè)部蔬菜研究實(shí)驗(yàn)室的科學(xué)家目前正在從事相關(guān)的工作,預(yù)計(jì)將很快取得進(jìn)展。

3 DNA芯片

DNA芯片是利用已知基因組序列,或來(lái)自未知序列的 cDNA 克隆制備模板 cDNA,通過人工或特定的儀器將大量模板 cDNA 按設(shè)計(jì)好的順序定量地固定在載體上制備成高密度的微陣列。將標(biāo)記好的樣品 cDNA 片段(來(lái)自不同細(xì)胞、組織或整個(gè)器官)與模板上的cDNA 進(jìn)行分子雜交。根據(jù)不同材料間基因差異表達(dá)的信息,推論某個(gè)基因的功能或鑒定和分離目的基因。DNA 芯片還廣泛應(yīng)用于基因表達(dá)譜、突變基因篩選和轉(zhuǎn)基因鑒別等方面。

在西瓜上,Levi 等[4]通過與葉片cDNA消減雜交構(gòu)建了西瓜果實(shí)發(fā)育不同時(shí)期(授粉后12、24、36 d)果肉消減cDNA文庫(kù)。為進(jìn)一步探究這些EST-unigenes在果實(shí)發(fā)育不同時(shí)期的轉(zhuǎn)錄表達(dá)差異,W. Patrick Wechter等[21]利用微列陣(microarray)技術(shù)對(duì)這些EST進(jìn)行了差異表達(dá)分析,發(fā)現(xiàn)與葉片相比,有335個(gè)ESTs的表達(dá)存在明顯的差異,表達(dá)量差異至少在2倍以上。其中有211個(gè)與已知功能基因同源,96個(gè)為未知基因。這些基因參與了維管系統(tǒng)、類胡蘿卜素合成、轉(zhuǎn)錄調(diào)控、病原和逆境脅迫響應(yīng)以及乙烯合成等,實(shí)時(shí)定量PCR也驗(yàn)證了這些功能基因的差異表達(dá)。

在甜瓜上,張紅等[22]利用國(guó)內(nèi)首個(gè)甜瓜cDNA 芯片Melon cDNA array ver1.0檢測(cè)了新疆厚皮甜瓜(Cucumis melo var. ameri)果實(shí)基因表達(dá)以及經(jīng)60Co射線輻射誘變后的新疆厚皮甜瓜酸味抗病變異株成熟果實(shí)基因的表達(dá)。結(jié)果顯示,該芯片平均能夠檢測(cè)新疆厚皮甜瓜基因2 008個(gè),檢測(cè)出的基因占該芯片基因探針總數(shù)的65.4%。發(fā)現(xiàn)酸味抗病變異株上調(diào)表達(dá)的基因有251個(gè),占檢出基因總數(shù)的12.5%,下調(diào)表達(dá)的基因224個(gè),占檢出基因總數(shù)的11.16%。RT-PCR重復(fù)試驗(yàn)表明用Melon cDNA array ver 1.0檢測(cè)新疆厚皮甜瓜成熟果實(shí)基因表達(dá)水平是可行的。Daniel Gonzalez-Ibeas等[23]利用抗西瓜花葉病毒甜瓜材料TGR-1551,感病材料Tendral,用DNA 芯片檢測(cè)了17 443個(gè)unigenes的表達(dá),發(fā)現(xiàn)接種感染后TGR-1551比對(duì)照發(fā)生了顯著的轉(zhuǎn)錄差異,與空白對(duì)照相比,Tendral有 3 291個(gè)unigenes 差異表達(dá),TGR-1551有2 488個(gè)unigenes 差異表達(dá),共有677個(gè)unigene unigenes受到抑制表達(dá)。說明TGR-1551發(fā)生了廣泛、深刻的轉(zhuǎn)錄差異。

在黃瓜上,毛偉華等[24]通過GenBank搜索已發(fā)布的生物代謝途徑中的關(guān)鍵酶基因序列, 設(shè)計(jì)特異性引物, 采用RT-PCR法擴(kuò)增這些酶的相應(yīng)基因片段,在完成432個(gè)基因片段的克隆分離、測(cè)序和生物信息學(xué)分析工作的基礎(chǔ)上研制出國(guó)內(nèi)首張黃瓜cDNA 芯片。該芯片含有9個(gè)質(zhì)控cDNA片段和423個(gè)cDNA探針, 涉及光反應(yīng)、卡爾文循環(huán)、碳水化合物代謝、水-水循環(huán)、信號(hào)傳導(dǎo)、激素代謝、光呼吸、防御、蛋白與氨基酸代謝等多個(gè)代謝途徑。利用該芯片對(duì)黃瓜缺鎂脅迫下基因表達(dá)譜進(jìn)行了初步研究, 發(fā)現(xiàn)在缺鎂脅迫下差異表達(dá)的22個(gè)基因, 其中10個(gè)基因的表達(dá)受缺鎂處理抑制, 12個(gè)基因的表達(dá)受缺鎂處理誘導(dǎo)。該芯片的研制為進(jìn)一步研究黃瓜功能基因的高通量時(shí)空變化提供了有效的技術(shù)支撐。為驗(yàn)證該套cDNA芯片雜交結(jié)果的可靠性,毛偉華等[25]研究了黃瓜在CMV 侵染脅迫下的基因表達(dá)譜變化,并對(duì)其中5個(gè)具有代表性的基因通過實(shí)時(shí)熒光定量PCR(QRT—PCR)進(jìn)行檢測(cè),共獲得67個(gè)差異表達(dá)顯著的基因,其中42個(gè)基因下調(diào)表達(dá),25個(gè)基因上調(diào)表達(dá)。這些差異表達(dá)的基因涉及了許多重要代謝途徑,許多與光合作用、氮同化相關(guān)的基因受到明顯的抑制,而一些防御相關(guān)基因和信號(hào)傳導(dǎo)相關(guān)基因則誘導(dǎo)表達(dá)。同時(shí),也發(fā)現(xiàn)了一些與CMV 脅迫相關(guān)的功能未知基因或未有任何功能信息的基因。研究發(fā)現(xiàn),CMV 脅迫引發(fā)了黃瓜代謝發(fā)生一系列復(fù)雜的適應(yīng)性變化,PR1-1a 等基因可能在黃瓜防御CMV侵染過程發(fā)揮著重要作用。

4 RNAi技術(shù)

RNAi(RNA interference)是一種雙鏈RNA (double-stranded RNA,dsRNA)分子在mRNA水平關(guān)閉相應(yīng)序列基因的表達(dá)或使其沉默的過程,也就是序列特異性的轉(zhuǎn)錄后基因沉默(post-transcriptional gene silencing, PTGS)。RNAi技術(shù)具有高度的序列專一性和有效的干擾活力,可以特異地使特定基因沉默,獲得功能喪失或降低的突變體,根據(jù)表型變異可推測(cè)該基因的功能,RNAi已發(fā)展成為功能基因組學(xué)研究中基因功能鑒定的一種強(qiáng)有力的工具。

2012年,ANA M.等[26]利用RNAi技術(shù)沉默甜瓜 Cm-eIF4E(核細(xì)胞翻譯起始因子)基因,通過對(duì)轉(zhuǎn)基因T2代接種8種甜瓜易侵染的病毒,發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因植株對(duì)黃瓜葉脈黃化病毒(CVYV)、甜瓜壞死斑病毒(MNSV)、摩洛哥西瓜花葉病毒(MWMV)、小西葫蘆黃花葉病毒(ZYMV)產(chǎn)生抗性,表明Cm-eIF4E的存在造成甜瓜對(duì)這4種病毒的易感染性。Cm-eIF4E基因?qū)τ谔鸸献魑飶V譜高抗等位基因的發(fā)現(xiàn),將是一個(gè)有效的選擇途徑。程鴻等[27]通過RT-PCR 方法從甜瓜中克隆得到白粉病感病相關(guān)基因CmMLO2 的cDNA 序列,RT-PCR 結(jié)果表明,CmMLO2 主要在甜瓜葉片中表達(dá),具有組織特異性。在受到白粉病菌脅迫時(shí)CmMLO2表達(dá)顯著上調(diào),表明CmMLO2 很有可能與白粉病發(fā)病有關(guān)。構(gòu)建RNAi表達(dá)載體,利用葉盤轉(zhuǎn)化法轉(zhuǎn)化甜瓜,獲得了PCR 陽(yáng)性植株,對(duì)白粉病接種鑒定結(jié)果表明,轉(zhuǎn)化植株對(duì)白粉病具有抗性,證明通過ihpRNAi敲除CmMLO2,可以獲得對(duì)白粉病具有抗性的甜瓜材料。

5 T-DNA插入突變

T-DNA(transferred DNA)是根癌農(nóng)桿菌(Agrobacterium tumefaciens)內(nèi) Ti 質(zhì)粒(tumor-inducing plasmid)上的一段 DNA, 它能侵染并穩(wěn)定地整合到植物基因組中。由于插入的 T-DNA 序列已知, 插入到植物基因組中的T-DNA 類似于給基因貼了一個(gè)序列標(biāo)簽。通過分離T-DNA 標(biāo)簽位點(diǎn)的側(cè)翼水稻基因組序列, 可以快捷地找到含有標(biāo)簽的基因, 經(jīng)過插入標(biāo)簽基因與突變體表型的共分離檢測(cè), 從而獲得基因的生物學(xué)功能。任海英等[28]采用農(nóng)桿菌侵染子葉外植體的方法產(chǎn)生T-DNA 插入的甜瓜突變體,篩選到一個(gè)蔓枯病抗性明顯增強(qiáng)的突變體,命名為edr2,該突變體是T-DNA 單拷貝插入甜瓜染色體引起的,edr2 的蔓枯病抗性和標(biāo)記基因卡那霉素抗性基因共分離。蔓枯病菌在突變體甜瓜edr2上的侵染過程與在野生型甜瓜上相比,分生孢子萌發(fā)率降低、芽管的伸長(zhǎng)和菌絲的生長(zhǎng)較遲緩。蔓枯病菌的侵染能引起edr2突變體發(fā)生細(xì)胞程序性死亡,但是不引起野生型甜瓜的細(xì)胞發(fā)生程序性死亡。本研究為選育抗蔓枯病的甜瓜品種提供了新的思路,為挖掘甜瓜-蔓枯病菌互作的基因提供了支持。

6 展 望

西瓜[29]、甜瓜[30]、黃瓜 [31]全基因組測(cè)序已完成并對(duì)外公布,測(cè)序獲得的大量生物信息為開展功能基因組學(xué)研究奠定了基礎(chǔ),也標(biāo)志著瓜類作物基因組研究逐步進(jìn)入到功能基因組研究時(shí)代??梢灶A(yù)測(cè),未來(lái)將會(huì)有更多不同類型的cDNA文庫(kù),包括全長(zhǎng)cDNA文庫(kù)被構(gòu)建,更多的EST序列將被釋放,從而為基因芯片的開發(fā)提供更多的源序列。另外,TILLING 、T-DNA突變體庫(kù)的構(gòu)建工作也將陸續(xù)啟動(dòng)或完成,更多的功能基因?qū)⒈昏b定和分離。功能基因組研究的深入有望鑒定和分離出控制重要農(nóng)藝性狀的全部基因, 揭示基因的時(shí)空表達(dá)模式,弄清在性狀形成中基因與基因的互作,并在此基礎(chǔ)上形成對(duì)基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)的認(rèn)識(shí)。屆時(shí)人們就能夠從基因結(jié)構(gòu)和基因表達(dá)調(diào)控兩個(gè)方面對(duì)基因進(jìn)行修飾,在作物育種實(shí)踐中實(shí)現(xiàn)分子設(shè)計(jì)育種,從而培育出抗逆性強(qiáng)、品質(zhì)優(yōu)良、有益人體健康的西瓜、甜瓜、黃瓜品種,滿足人們不斷增長(zhǎng)的消費(fèi)需求。

參考文獻(xiàn)

[1] Hieter P,Boguski M. Functional genomics: its all how you read it[J]. Science,1997,278(5338): 601-602.

[2] Arumuganathan K,Earle E D. Nuclear DNA content of some important plant species[J]. Plant Mol Biol Rep,1991, 9(3): 208-218.

[3] 許 勇,張海英,郭紹貴,等. 西瓜基因組學(xué)研究與全基因組測(cè)序計(jì)劃[M]. 全國(guó)植物分子育種研討會(huì)摘要集,2009: 27.

[4] Levi A,Davis A, Hernandez A,et al. Genes expressed during the development and ripening of watermelon fruit[J]. Plant Cell Rep,2006,25: 1233-1245.

[5] 呂桂云,郭紹貴,張海英,等. 西瓜與枯萎病菌非親和互作的表達(dá)序列標(biāo)簽分析[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,43(9): 1883-1894

[6] Guo Shaogui,Liu Jingan,Zheng Yi,et al. Characterization of transcriptome dynamics during watermelon fruit development:sequencing, assembly,annotation and geneexpression profiles[J]. BMC Genomics,2011,12: 454.

[7] Katzir N,Portnoy V,Benyamini Y,et al. Functional genomics of genes involved in the formation of melon aroma[J]. Cucurbitaceae,2006: 31-38.

[8] Daniel Gonzalez-Ibeas,José Blanca,Cristina Roig,et al. MELOGEN:an EST database for melon functional genomics[J]. BMC Genomics,2007,8: 306.

[9] Clepet C,Joobeur T,Zheng Y,et al. Analysis of expressed sequence tags generated from full-length enriched cDNA libraries of melon[J]. BMC Genomics,2011,12: 252.

[10] Wei S,Wang L,Zhang Y,et al. Identification of early response genes to salt stress in roots of melon(Cucumis melo L.)seedlings[J]. Mol Biol Rep,2013,40(4): 2915-2926.

[11] Dae-Jae Kim. A study of cotyledon senescence in cucumber(Cucumis sativus L.)based on expressed sequence tags and cene expression[J]. Journal of Plant Biology,2004,47(3): 244-253.

[12] 齊曉花,羅晶晶,Mouammar Alfandi,等. 黃瓜抗白粉病品系cDNA文庫(kù)構(gòu)建及EST分析[J]. 園藝學(xué)報(bào),2010,37(6): 931-938.

[13] 盛 慧,秦智偉,周秀艷,等. 利用SSH 技術(shù)鑒定黃瓜胚胎發(fā)育相關(guān)基因[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,43(11): 2292-2299.

[14] Guo S,Zheng Y,Joung J G,et al. Transcriptome sequencing and comparative analysis of cucumber flowers with different sex types[J]. BMC Genomics,2010,11: 384.

[15] 潘 宇,蒲志群,肖雅文,等.黃瓜幼果cDNA文庫(kù)構(gòu)建與EST測(cè)序分析[J]. 西南大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2013,35(6): 30-35.

[16] Tadmor Y,Katzir N,Meir A,et al. Induced mutagenesis to augment the natural genetic variability of melon(Cucumis melo L.)[J]. Israel Journal of Plant Sciences,2007,55,159-169.

[17] Dahmani-Mardas F,Troadec C,Boualem A,et al. Engineering Melon Plants with Improved Fruit Shelf Life Using the TILLING Approach[J]. PLoS ONE,2010,5(12): 15776.

[18] González M,Xu M,Esteras C,et al. Towards a TILLING platform for functional genomics in Piel de Sapo melons[J]. BMC Research Notes,2011,4: 89.

[19] 徐美紅,閆景景,陸文玉,等. 甜瓜“Pield Sapo”TILLING平臺(tái)的測(cè)序[J]. 上海交通大學(xué)學(xué)報(bào):農(nóng)業(yè)科學(xué)版,2012,30(5): 34-39.

[20] Fraenkel R, Kovalski I,Troadec C, et al. A TILLING population for cucumber forward and reverse genetics[M]. Cucurbitaceae,2012,Proceedings of the Xth EUCARPIA meeting on genetics and breeding of Cucurbitaceae(eds. Sari, Solmaz and Aras) Antalya (Turkey), 2012: 598-603.

[21] Wechter W P, Levi A,Harris K R,et al. Gene expression in developing watermelon fruit[J]. BMC Genomics,2008, 9: 275

[22] 張 紅,張志斌,王懷松,等. 應(yīng)用基因芯片檢測(cè)酸味抗病甜瓜果實(shí)基因表達(dá)[J]. 西北植物學(xué)報(bào),2009,29(4): 0669-0673.

[23] Gonzalez-Ibeas D,Canizares J,Aranda M A. Microarray Analysis Shows That Recessive Resistance to Watermelon mosaic virus in Melon Is Associated with the Induction of Defense Response Genes[J]. Mol Plant Microbe Interact,2012, 25(1): 107-118.

[24] 毛偉華,龔亞明,宋興舜,等. 黃瓜cDNA芯片的構(gòu)建及其在黃瓜缺鎂脅迫下基因差異表達(dá)研究中的應(yīng)用[J]. 園藝學(xué)報(bào),2006,33(4): 767-772.

[25] 毛偉華,龔亞明,宋興舜,等. CMV侵染脅迫下黃瓜重要功能基因表達(dá)及代謝響應(yīng)的研究[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2008,41(11):3691-3697.

[26] Rodriguze-Hernandez A M, Gosalvez B, Sempere R N,et al. Melon RNA interference(RNAi) lines silenced for Cm-eIF4E show broad virus resistance[J]. Molecular Plant Pathology,2012,13(7): 755-763.

[27] 程 鴻,孔維萍,何啟偉,等. CmMLO2:一個(gè)與甜瓜白粉病感病相關(guān)的新基因[J]. 園藝學(xué)報(bào),2013,40(3): 540-548.

[28] 任海英,方 麗,茹水江,等. 抗蔓枯病甜瓜突變體edr2 抗病現(xiàn)象的初步研究[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,42(9): 3131-3138.

[29] Guo S, Zhang J, Sun H,et al. The draft genome of watermelon(Citrullus lanatus) and resequencing of 20 diverse accessions[J]. Nature Genetics,2013,45(1): 51-60.

[30] Garcia-Mas J,Benjak A,Sanseverino W,et al. The genome of melon(Cucumis melo L.)[J]. PNAS, 2012,109(29): 11872-11877 .

[31] Huang S, Li R, Zhang Z,et al. The genome of the cucumber,Cucumis sativus L. [J]. Nature Genetics,2009,41(12): 1275-1283.

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