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采后硅酸鈉處理對(duì)杏果粉霉病的抑制及機(jī)理

2012-11-09 00:45:14趙賓賓葛永紅李穎超
關(guān)鍵詞:硅酸鈉霉病類黃酮

王 毅, 趙賓賓, 畢 陽(yáng), 葛永紅, 李穎超

(甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅 蘭州 730070)

我國(guó)是杏的原生起源中心之一,其果實(shí)風(fēng)味獨(dú)特、富有營(yíng)養(yǎng)和保健功效[1-2]。由于杏果采收時(shí)正值高溫夏季,加之果實(shí)皮薄多汁,易受機(jī)械損傷和微生物的侵染而發(fā)生腐爛,采后損失頗為嚴(yán)重?;瘜W(xué)殺菌劑雖可有效控制杏果的采后病害[3],但由于其存在殘留,環(huán)境污染及誘導(dǎo)病原物產(chǎn)生抗藥性等問題而受到限制[4-5]。因此,尋求更為安全有效的防腐措施已十分緊迫。據(jù)報(bào)道,硅具有提高植物抗性減輕病害發(fā)生的作用[6]。采后硅酸鈉處理不僅可以有效抑制厚皮甜瓜的的多種采后病害[7-10],減輕梨采后的黑斑病和青霉病[11-12],以及馬鈴薯的干腐病[13-14]及柑橘的青霉病[15];還可提高拮抗酵母Cryptococcus laurentii對(duì)采后病害的生防能力[16]。但尚未見硅酸鈉在杏果實(shí)采后病害控制方面的報(bào)道。采用硅酸鈉處理杏果實(shí),觀察處理對(duì)果實(shí)粉霉病病原物的體內(nèi)和體外抑制效果,并探討其部分抑制機(jī)理。

1 材料與方法

1.1 材料、試劑與儀器

供試?yán)钚樱≒runus armeniaca cv.Lixing):采自甘肅省白銀市景泰條山農(nóng)場(chǎng),紙箱包裝后于采收當(dāng)日運(yùn)抵作者所在實(shí)驗(yàn)室后在常溫(25±2)℃,RH60%~70%下貯藏待用。供試Trichotethium roseum分離自自然發(fā)病果實(shí),PDA上保存待用。

硅酸鈉(Na2SiO3):天津科密歐化學(xué)試劑開發(fā)中心產(chǎn)品,分析純;超凈工作臺(tái):蘇凈集團(tuán)蘇州安泰技術(shù)有限公司產(chǎn)品;高壓滅菌鍋:北京廣順科技發(fā)展有限公司產(chǎn)品;電熱恒溫培養(yǎng)箱:上海一恒科技有限公司產(chǎn)品;UV-2550型紫外分光光度計(jì):日本島津公司產(chǎn)品。

1.2 方法

1.2.1 離體試驗(yàn) 參照李云華方法[12]并做修改。將PDA培養(yǎng)基融化后冷卻至45℃,加入用滅菌水配制的硅酸鈉溶液,制備成改良的平板PDA培養(yǎng)基,分別含有 0、6.25、12.50、25 mmol/L 的硅酸鈉。 待培養(yǎng)基冷卻后,將T.roseum菌餅(直徑15 mm)接于培養(yǎng)基中央,25℃避光培養(yǎng)。當(dāng)對(duì)照皿中菌體長(zhǎng)至培養(yǎng)皿邊緣時(shí),測(cè)定病斑直徑并計(jì)算抑菌率。每個(gè)處理用9個(gè)培養(yǎng)皿,重復(fù)3次。

抑菌率 (%)=(對(duì)照菌落直徑-處理菌落直徑)/(對(duì)照菌落直徑-原菌餅直徑)×100%。

1.2.2 果實(shí)處理 選擇外觀整齊,無病蟲的果實(shí)。配制不同濃度的硅酸鈉溶液(0、25、50、75 mmol/L),加質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.01%Tween-80作為表面活性劑,浸泡果實(shí) 10 min,取出晾干,在常溫(23±2)℃、RH85%~95%條件下貯藏待用。

1.2.3 果實(shí)的損傷接種 參照畢陽(yáng)方法[17]并做修改。以清水處理為對(duì)照,在處理后24 h進(jìn)行接種試驗(yàn)。接種時(shí),先用體積分?jǐn)?shù)70%酒精擦拭果實(shí)表面進(jìn)行消毒,再用滅菌鐵釘在果實(shí)表面等距離刺孔3個(gè)(深3 mm,直徑2 mm),1.5 h后用微量移液器向每孔中注入 10 μL (1×106cfu/mL)粉紅單端孢(T.roseum)孢子懸浮液。 在常溫 (23±2)℃、RH85%~95%條件下貯藏。4 d后利用十字交叉法測(cè)量病斑直徑。每處理用果10個(gè),重復(fù)3次。

1.2.4 硅酸鈉對(duì)杏果實(shí)粉霉病的誘導(dǎo)時(shí)效 用1.2.3篩選出的最佳濃度處理果實(shí),并用清水處理做對(duì)照。分別于硅酸鈉溶液處理后的第24,48,72,96 h,進(jìn)行損傷接種,方法同1.2.3。于接種4 d后利用十字交叉法測(cè)量病斑直徑。每處理用果10個(gè),重復(fù)3次。

1.2.5 生化指標(biāo)測(cè)定

1)取樣 用1.2.3篩選出的最佳濃度處理果實(shí),以清水處理做對(duì)照。分別于處理后24,48,72,96 h取果實(shí)赤道部位陰陽(yáng)兩側(cè)皮下 3 mm果肉組織或果皮組織,錫箔紙包裹,液氮冷凍后,低溫(-80℃)保存待測(cè)。每個(gè)處理用果實(shí)10個(gè),重復(fù)3次。

2)過氧化物酶(POD)活性測(cè)定 參照李合生[18]的愈創(chuàng)木酚法并修改。酶活性以470 nm處,3 min反應(yīng)體系光密度的變化0.01為1個(gè)活性單位(u),酶活性單位以 U/(g·Fw)表示。

3)多酚氧化酶(PPO)的活性測(cè)定 參照 Chen et al[19]方法并作修改。酶活性以每分鐘吸光度變化0.01 為 1 個(gè)活性單位(u),酶活性單位以 U/(g·Fw)表示。

4)總酚和類黃酮含量的測(cè)定 參照Pirie和Mullins的方法測(cè)定[20]。1 g果皮組織,與10 mL的1%HCL-甲醇在冰浴條件下充分研磨,然后在8 000 r/min,4℃的條件下離心10 min,取上清液直接用于比色。重復(fù)3次。

1.2.6 數(shù)據(jù)處理 所有實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Microsoft Excel2003計(jì)算標(biāo)準(zhǔn)偏差并作圖,并用DPS7.05數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)進(jìn)行Duncan’s多重差異顯著分析。圖中豎線代表標(biāo)準(zhǔn)誤,相同字母表示差異不顯著(P<0.05)。

2 結(jié)果與分析

2.1 離體條件下硅酸鈉對(duì)T.roseum的抑制

離體條件下,硅酸鈉可明顯抑制T.roseum菌絲的生長(zhǎng),抑制效果隨硅酸鈉濃度增加而增強(qiáng)。當(dāng)濃度為25 mmol/L時(shí),處理者120 h后的菌落直徑僅為對(duì)照的三分之一(圖 1(A))。 此外,25 mmol/L處理120 h后抑菌效果也最好,抑菌率可達(dá) 85%,其次為 12.5 mmol/L 處理 (圖 1(B))。

圖1 In vitro條件下不同濃度硅酸鈉對(duì)粉霉病菌落直徑(A)和抑菌率(B)的影響Fig.1 Effect of sodium silicate at different concentrations on colony diameter of T.roseum (A)and its inhibitory rate(B)in vitro

2.2 不同濃度硅酸鈉對(duì)李杏粉霉病病斑直徑和誘導(dǎo)持續(xù)時(shí)間的影響

硅酸鈉處理可有效抑制杏損傷接種T.roseum病斑直徑的擴(kuò)展(圖2(A))。隨著濃度的增加,抑制效果逐漸增強(qiáng),當(dāng)濃度達(dá)到50 mmol/L時(shí),處理者的病斑直徑低于對(duì)照15%。更高濃度處理未進(jìn)一步提高抑制效果,但也未對(duì)果實(shí)造成藥害。50 mmol/L處理后間隔24,48,72 h損傷接種T.roseum果實(shí)的病斑直徑均能顯著降低,但處理后96 h損傷接種處理果實(shí)的病斑直徑反而大于對(duì)照(圖2(B))。由此表明,50 mmol/L硅酸鈉處理誘導(dǎo)了杏果實(shí)的抗性,且誘導(dǎo)時(shí)間可持續(xù)72 h。

2.3 硅酸鈉處理對(duì)果實(shí)抗性酶活性的影響

硅酸鈉處理明顯增強(qiáng)了果實(shí)體內(nèi)的POD和PPO的活性,在處理后96 h內(nèi)處理與對(duì)照的POD和PPO的活性均呈先上升后下降趨勢(shì),但其間處理者的活性均高于對(duì)照(圖3)。處理者得POD和PPO的活性和對(duì)照相比均在72 h時(shí)差異達(dá)到最大,分別高出對(duì)照的76%和19%。

圖2 不同濃度硅酸鈉(A)和50 mmol/L硅酸鈉處理間隔不同時(shí)間接種(B)對(duì)損傷接種果實(shí)病斑直徑的影響Fig.2 Effecton lesion diameter ofsodium silicate concentration (A)or the time interval between application of odium silicate at 50 mmol/L and wound inoculation with T.roseum(B)in apricot fruit

圖3 硅酸鈉處理對(duì)貯藏過程中果實(shí)POD(A)和PPO(B)活性的影響Fig.3 Effect of sodium silicate treatment on activities of POD(A)and PPO(B)in apricot fruit

2.4 硅酸鈉處理對(duì)果實(shí)總酚和類黃酮含量的影響

硅酸鈉處理可明顯提高果實(shí)體內(nèi)總酚的含量,在貯藏過程中,對(duì)照和硅酸鈉處理的果實(shí)總酚含量呈先升高后降低趨勢(shì)(圖4(A))。在第48 h到96 h,處理者的總酚含量均高于對(duì)照。在72 h時(shí)差異達(dá)到最大,約為對(duì)照的1.06倍。隨著貯藏時(shí)間的延長(zhǎng),對(duì)照和硅酸鈉處理的果實(shí)體內(nèi)類黃酮含量都保持相同的趨勢(shì),并且處理的含量始終高于對(duì)照,但差異不明顯(圖 4(B))。

圖4 硅酸鈉處理對(duì)杏果實(shí)總酚(A)和類黃酮(B)含量的影響Fig.4 Effect of sodium silicate treatment on the content of total phenolics(A)and flavoniods(B)in apricot fruit

3 結(jié)語(yǔ)

研究結(jié)果表明,采后硅酸鈉處理可以有效減輕杏果實(shí)的粉霉病,其作用與硅酸鈉直接抑制病原物的生長(zhǎng)和誘導(dǎo)果實(shí)抗性相關(guān)[9]。離體條件下硅酸鈉對(duì)T.roseum菌落的生長(zhǎng)的抑制,與其改變培養(yǎng)基的pH,損害病原物質(zhì)膜的完整性,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)一些功能物質(zhì)泄漏有關(guān)[15]。前期試驗(yàn)觀察到,硅酸鈉可明顯堿化培養(yǎng)基的pH,當(dāng)硅酸鈉處理濃度為6.25~25.0 mmol/L時(shí),培養(yǎng)基的pH會(huì)由中性猛增至10~11。 在 硅 酸 鈉 抑 制 Pencillium.digitatum[15],Alternaria alternata,F(xiàn)usarium semitectum[9]的 生 長(zhǎng) 試驗(yàn)中也觀察到類似的結(jié)果。

硅酸鈉處理后間隔不同時(shí)間對(duì)果實(shí)損傷接種的結(jié)果表明,硅酸鈉處理誘導(dǎo)了杏果實(shí)體內(nèi)的抗病性,但誘導(dǎo)的效果與處理劑量和處理與損傷接種間隔時(shí)間密切相關(guān)。據(jù)報(bào)道,多種防御酶和抗菌物質(zhì)在產(chǎn)品的抗病性反應(yīng)中具有積極的作用。POD和PPO活性,以及總酚和類黃酮含量是指示果實(shí)抗病性是否被誘導(dǎo)的重要生化指標(biāo)[21]。POD參與了木質(zhì)素的合成和酚類物質(zhì)的聚合[22-23],以及細(xì)胞壁的生長(zhǎng)和交聯(lián)化反應(yīng)[24],從而提高了細(xì)胞壁的抗病能力。在寄主-病原物互作中,酚類物質(zhì)被認(rèn)為與抗病性密切相關(guān),它可以在PPO的作用下氧化成對(duì)病原菌具有很高毒性的醌類物質(zhì),直接抑制病原菌對(duì)植物的侵染[19,25]。作者研究觀察到處理果實(shí)的POD、PPO活性及總酚含量增加,表明硅酸鈉處理激活了果實(shí)體內(nèi)的抗性生化反應(yīng),提高了果實(shí)的抗病性。在硅酸鈉處理梨的試驗(yàn)中也觀察到類似的結(jié)果[12]。類黃酮作為植物保衛(wèi)素,具有抑制真菌孢子萌發(fā)、芽管伸長(zhǎng)、菌絲生長(zhǎng)及毒害菌絲末端細(xì)胞的作用[26]。但作者研究未能發(fā)現(xiàn)處理果實(shí)中有類黃酮的顯著積累,可能與硅酸鈉處理形成的堿性環(huán)境抑制了果實(shí)中類黃酮的積累有關(guān)[27]。

硅酸鈉對(duì)杏果實(shí)粉霉病的的抑制可能還涉及苯丙烷代謝、活性氧代謝、病程相關(guān)蛋白等其它的防衛(wèi)機(jī)制,以及硅在果實(shí)表面的機(jī)械屏障作用等方面??紤]到硅在地球表面分布的廣泛性以及硅處理的安全性,硅處理將有望成為一種新的防腐技術(shù)。

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