仝顏麗，李海東，王玲，王波，鄭明剛

（1.日照職業(yè)技術(shù)學(xué)院，山東 日照 276826；2.青島大學(xué)，山東 青島 266061；3.國家海洋局第一海洋研究所 海洋生態(tài)中心，山東 青島 266061）

大瀧六線魚（Hexagrammos otakii）熒光AFLP分析體系的建立及優(yōu)化

仝顏麗1，李海東1，王玲2，王波3，鄭明剛3

（1.日照職業(yè)技術(shù)學(xué)院，山東 日照 276826；2.青島大學(xué)，山東 青島 266061；3.國家海洋局第一海洋研究所 海洋生態(tài)中心，山東 青島 266061）

以大瀧六線魚為材料，通過對DNA提取質(zhì)量和濃度、EcoRⅠ/MseⅠ酶切反應(yīng)時間、Mg2+濃度、dNTPs濃度、引物濃度以及選擇性擴(kuò)增中預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物稀釋倍數(shù)等關(guān)鍵因素進(jìn)行研究，建立并優(yōu)化了大瀧六線魚熒光AFLP分子標(biāo)記反應(yīng)體系。用優(yōu)化的反應(yīng)體系，篩選到10對適合大瀧六線魚的引物，為今后利用AFLP標(biāo)記技術(shù)進(jìn)行大瀧六線魚的遺傳多樣性研究提供了標(biāo)準(zhǔn)化程序。

大瀧六線魚；AFLP；分子標(biāo)記；反應(yīng)體系

大瀧六線魚（Hexagraminos otakii）又名歐式六線魚，俗稱黃魚，隸屬于蚰形目（Scorpaeniformes）、六線魚科（Hexagrammidae）、六線魚屬（Hexagrammos）。大瀧六線魚屬冷溫性近海底層魚類，主要分布于我國山東和遼寧等地的近海多巖礁海區(qū)以及日本、朝鮮及俄羅斯遠(yuǎn)東諸海[1]。六線魚為沿岸淺海定居性魚類，耐低溫、適應(yīng)能力較強(qiáng)、肉味鮮美，深受國內(nèi)沿海地區(qū)人民的喜愛，已被列為我國名貴海水養(yǎng)殖對象。目前對該魚的研究多集中于其生物學(xué)、育苗和營養(yǎng)方面[2-4]，遺傳多樣性方面的研究還未見報道。

擴(kuò)增片斷長度多態(tài)性（amplified fragment length polymorphism，AFLP）標(biāo)記是由荷蘭科學(xué)家Zabeau和Vos在PCR和RFLP技術(shù)的基礎(chǔ)上發(fā)展起來的一種DNA多態(tài)性檢測方法，具有RAPD和RFLP技術(shù)的雙重優(yōu)點(diǎn)。AFLP對基因組的多態(tài)性檢測不需要預(yù)知該基因組的序列特征，易于標(biāo)準(zhǔn)化，被認(rèn)為是一種理想有效的分子標(biāo)記技術(shù)，現(xiàn)已被廣泛應(yīng)用于遺傳多樣性分析、品系分析、生態(tài)分析等諸多方面[6]。在海洋生物領(lǐng)域，AFLP技術(shù)已在櫛孔扇貝[7]、虹鱒[8]、日本對蝦[9]、大黃魚[10]等生物中得到了應(yīng)用， 但是在大瀧六線魚中的研究還未見報道。

針對不同的試驗(yàn)材料，建立合適的AFLP反應(yīng)體系對于試驗(yàn)結(jié)果顯得尤為重要。本研究通過對大瀧六線魚熒光AFLP反應(yīng)體系進(jìn)行優(yōu)化，建立了適合大瀧六線魚的熒光AFLP分析體系，為大瀧六線魚的遺傳多樣性分析及種質(zhì)資源的保護(hù)提供支持。

1 材料與試劑

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

本實(shí)驗(yàn)所用大瀧六線魚取自青島近岸水域，實(shí)驗(yàn)樣品液氮速凍后置-80℃冰箱保存。

1.2 試劑與儀器

EcoRⅠ、Mse Ⅰ（NEB），T4 DNA ligase（MBI），Taq酶（TaKaRa），Mse I／EcoR I接頭（上海生工），熒光引物（上海生工），GeneScan-500 LIZ（Applied Biosystems)，Hi-Di Formamide（Applied Biosystems)，超微量分光光度計(jì)（GEHC），PCR擴(kuò)增儀（Bio-Rad），DL2000 marker（TaKaRa），凝膠成像分析儀（SYNGENE），ABI3130 genetic analyzer（Applied Biosystems），Bullet Blender快速組織細(xì)胞破碎儀（Next Advance）

2 方 法

2.1 基因組DNA提取

采用改進(jìn)的蛋白酶K消化法進(jìn)行DNA的提?。喝?80 ℃冷凍保藏的肌肉組織100 mg，用滅菌的雙蒸水沖洗干凈，用吸水紙將表面的水吸干，置于1.5 mL離心管。加入450 μL 裂解緩沖液（4.5 μL 10 mmol/L Tris-HCl pH=8.0；90 μL 100 mmol/L EDTA pH=8.0和355 μL雙蒸水），于細(xì)胞破碎儀將組織破碎，加入10%SDS 150 μL、ProtenaseK 7.5 μL混勻，55 ℃消化（上下緩慢顛倒數(shù)次以充分消化至澄清（約3～5 h），加入150 μL NaCl（5mol/L） 混勻，8 000 r/min 離心10 min，吸取上清。加入等體積預(yù)冷的異丙醇，混勻，-20 ℃放置30 min，6000 r/min 離心5 min，沉淀用70%乙醇（600～800 μL）洗滌2～3遍。500 μL雙蒸水溶解上述沉淀，加等體積飽和酚液，緩慢來回顛倒混勻10 min，12 000 r/min離心10 min；吸取上層水相，加等體積酚︰氯仿︰異戊醇（25︰24︰1）緩慢顛倒混勻10 min，12 000 r/min離心10 min；吸取上層水相，加等體積氯仿︰異戊醇=24︰1緩慢顛倒混勻10 min，12 000 r/min離心10 min取上清。上清中加入1/10體積2 mol/L NaAc和2倍體積預(yù)冷的無水乙醇，-20 ℃放置30 min，12 000 r/min離心10 min去乙醇，500μL 70%乙醇洗滌沉淀，風(fēng)干加適量雙蒸水溶解。取3 μL DNA進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA質(zhì)量，用核酸超微量分光光度計(jì)進(jìn)行定性定量分析。

2.2 酶切體系的優(yōu)化

酶切反應(yīng)采用EcoRI和MseI雙酶切組合，酶切體系為：10×NEB buffer 5 μL，100×牛血清白蛋白（BSA）0.5 μL，EcoRI-HF（20 U/μL）1 μL，MseI（10 U/μL）1 μL，模板DNA用量2 μg加雙蒸水至50.0 μL。37 ℃水浴1 h，2 h，4 h，6 h以優(yōu)化酶切時間，65 ℃水浴20 min，使酶失活。1%瓊脂糖凝膠電泳檢測酶切結(jié)果。

2.3 接頭連接體系

酶切產(chǎn)物加入已退火的EcoRI接頭和MseI接頭以及T4 DNA連接酶于16 ℃過夜連接。連接體系如下：酶切產(chǎn)物20.0 μL，T4 Ligase（3 U/μL) 0.2 μL，10×T4 Ligase buffer 0.5 μL，EcoRI接頭（10 μmol/L） 0.5 μL, MseI接頭（100 μmol/L）0.5 μL，加雙蒸水至25.0 μL。

2.4 預(yù)擴(kuò)增反應(yīng)體系

以連接產(chǎn)物作為模板進(jìn)行預(yù)擴(kuò)增反應(yīng)。預(yù)擴(kuò)增反應(yīng)體系為：10×PCR Buffer 2.0 μL ，dNTPs（各2.5 mmol/L）0.4 μL，E +A（10 mmol/L）0.6 μL，M+C（10 mmol/L）0.6 μL，Taq DNA聚合酶1 U，MgCl（225 mmol/L）1.2 μL，連接產(chǎn)物2 μL，加ddH20至總體積為20 μL 。擴(kuò)增程序?yàn)椋?4 ℃ 5 min；94 ℃30 s，56 ℃ 1 min，72 ℃ 1 min， 20個循環(huán)；72℃10 min。預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

2.5 選擇性擴(kuò)增反應(yīng)體系及其優(yōu)化

參照預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物的粗略濃度稀釋一定倍數(shù)后作為選擴(kuò)模板，選擴(kuò)引物為 E+3/M+3引物組合，其中E+3為熒光標(biāo)記引物。選擴(kuò)反應(yīng)體系為：預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物稀釋液5 μL，10×PCR Buffer 2.0 μL， dNTPs（各2.5 mmol/L）1.6 μL，選擇性擴(kuò)增引物（10 μmol/L）各0.8 μL，Taq DNA聚合酶0.5 U，MgCl2（25 mmol/L）1.6 μL，加ddH20至總體積為20 μL。作者就對選擴(kuò)結(jié)果影響較大的4個因素進(jìn)行了優(yōu)化（表1）。 對其中一個因素優(yōu)化時，保持其它因素不變，比較不同處理結(jié)果對擴(kuò)增結(jié)果的影響。

收集2015年1月~2015年12月來我院口腔科門診就診的粘液腺囊腫病人260例,男116例,女144例,年齡16~50歲,囊腫直徑0.5—2.0 cm,其中上下唇105例,舌部155例。所有病例均為首次出現(xiàn)的粘液腺囊腫。

表 1 PCR反應(yīng)體系中各因素處理方案Tab.1 Different treatments of PCR systems

擴(kuò)增程序?yàn)椋?4 ℃ 5 min；94 ℃變性30 s，65～56 ℃（每個循環(huán)降0.7 ℃）退火30 s，72 ℃延伸1 min，共12個循環(huán)；94 ℃變性30 s，56 ℃退火30 s，72 ℃延伸1 min，共20個循環(huán)；72 ℃延伸10 min。選擴(kuò)產(chǎn)物用2%的瓊脂糖凝膠電泳檢測，確定擴(kuò)增片度大小范圍，用于后續(xù)熒光檢測。

2.6 PCR產(chǎn)物的熒光檢測

取選擴(kuò)產(chǎn)物0.5 μL，加0.25 μL內(nèi)標(biāo)（GeneScan TM-500 LIZ1 Size Standard），9.25 μL 去離子甲酰胺（Hi-Di Formamide），混勻后加入96孔板，置于PCR儀95 ℃變性 3 min，立即冰浴5 min。利用POP-7?分離膠在ABI-3130xl自動遺傳分析儀上對擴(kuò)增結(jié)果進(jìn)行分析。用相應(yīng)的Run moduLe進(jìn)行電泳，并接收熒光信號。所得光譜數(shù)據(jù)用遺傳圖譜4.0軟件（GeneMapper 4.0 software）進(jìn)行分析。

3 結(jié)果與分析

3.1 模板DNA的提取

模板DNA的制備是非常重要的一個環(huán)節(jié)，若DNA發(fā)生斷裂，酶切結(jié)果顯然不能代表真實(shí)的DNA結(jié)構(gòu)，實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)不能反映真實(shí)的情況。本實(shí)驗(yàn)采用改進(jìn)的蛋白酶K消化法進(jìn)行三次抽提以最大限度的除去雜蛋白，提取結(jié)果經(jīng)過1%瓊脂糖凝膠電泳檢測，條帶清晰明亮（圖1）。經(jīng)超微量分光光度計(jì)測定，各樣品 A260/A280≥1.80，A260/A230≥2.0，表明樣品純度較高，蛋白質(zhì)等雜質(zhì)去除較干凈，可以用來進(jìn)行大瀧六線魚AFLP分析。

3.2 酶切時間對酶切反應(yīng)的影響

基因組DNA酶切質(zhì)量是決定AFLP成功與否的關(guān)鍵，酶切不充分，所得片段不能涵蓋整個基因組導(dǎo)致所得多態(tài)性不真實(shí)，因此要對酶切體系進(jìn)行優(yōu)化。酶切時間是影響酶切質(zhì)量的一個重要因素，不同實(shí)驗(yàn)材料因基因組的大小不同，酶切時間長短也有所差異。本試驗(yàn)用兩個不同的樣品作為模板進(jìn)行酶切。酶切產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖電泳檢測（圖 2），隨著酶切時間的延長，酶切片段越小濃度越大，酶切6 h所得片度均勻分布在500 bp以下，由于酶切片段在500 bp以下時，在AFLP反應(yīng)中能被優(yōu)先擴(kuò)增，且擴(kuò)增產(chǎn)物能在凝膠中很好的分離開，便于多態(tài)性的檢出。因此本試驗(yàn)酶切時間選擇6 h。

圖 1 DNA瓊脂糖電泳檢測（1～4道均為大瀧六線魚DNA）Fig.1 Agarose gel electrophoresis of DNA

圖 2 基因組雙酶切電泳檢測結(jié)果(M：DNA Marker；1，2： 酶切6 h；3，4：酶切4 h；5，6：酶切2 h；7，8：酶切1 h；奇數(shù)，偶數(shù)分別代表不同樣品的模板)Fig.2 Result of double enzyme digestion at different reaction times

3.3 預(yù)擴(kuò)增體系結(jié)果分析

預(yù)擴(kuò)增的質(zhì)量直接影響選擇性擴(kuò)增的結(jié)果，本實(shí)驗(yàn)設(shè)置的反應(yīng)體系經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測（圖 3）：其彌散帶主要分布在100～750 bp之間，稀釋后可作為選擇性擴(kuò)增的模板。

3.4 AFLP選擇性擴(kuò)增反應(yīng)體系的優(yōu)化

3.4.1 預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物的用量對選擇性擴(kuò)增的影響AFLP對模板濃度要求不高，在濃度相差1000倍的范圍內(nèi)，得到的結(jié)果基本一致，但當(dāng)模板濃度低于1×10-6μg/μL時得到的AFLP結(jié)果往往不可靠[11]。1.0 %瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果也顯示，一定范圍內(nèi)，濃度對選擇性擴(kuò)增的結(jié)果影響不大，如圖依次是以稀釋5、10、20、30、50倍預(yù)擴(kuò)產(chǎn)物作為選擇性擴(kuò)增的模板得到的譜帶，其大小都處在500 bp以下。通過比較，本試驗(yàn)選擇預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物稀釋30倍作為選擇性擴(kuò)增的模板。

圖 3 預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物電泳檢測(M：Marker 1～4為不同樣品的預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物)Fig.3 Agarose gel electrophoresis of pre-amplification productions

圖 4 不同稀釋倍數(shù)預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物的選擇性擴(kuò)增產(chǎn)物電泳檢測(M： Marker 1～5：分別為稀釋5，10，20，30，50倍的預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物為模板的選擴(kuò)產(chǎn)物)Fig.4 Detection of the selective amplification products with different diluted templates

3.4.2 dNTPs對選擇性擴(kuò)增的影響 dNTPs作為擴(kuò)增產(chǎn)物的原料對擴(kuò)增效率有密切的影響, dNTPs濃度過高時會使堿基的錯誤摻入率增高，而過低時又會降低PCR產(chǎn)率，本實(shí)驗(yàn)的優(yōu)化結(jié)果表明，dNTPs濃度為0.20 mmol/L時擴(kuò)增產(chǎn)物清晰且穩(wěn)定。

3.4.3 引物濃度對選擇性擴(kuò)增的影響 引物濃度對擴(kuò)增效率也具有很大的影響，濃度偏高時易出現(xiàn)錯配現(xiàn)象且會增加引物二聚體的合成量，而偏低時擴(kuò)增出的條帶少，由圖可知：當(dāng)引物終濃度為0.1～0.2 μmol/L時，擴(kuò)增條帶少不利于多態(tài)性的研究，當(dāng)引物濃度為0.4～0.5 μmol/L擴(kuò)增條帶雖然多但非特異性條帶較多影響結(jié)果的真實(shí)性，而引物濃度為0.3 μmol/L時條帶較多且穩(wěn)定，因此最佳引物終濃度為0.3 μmol/L。

3.4.4 Taq DNA聚合酶用量對選擇性擴(kuò)增的影響Taq DNA聚合酶催化PCR產(chǎn)物的合成，其用量過大合成效率較高但易引起錯配而用量過低會降低PCR產(chǎn)物的合成量，因此，優(yōu)化Taq DNA聚合酶用量對PCR產(chǎn)物的合成量非常重要。當(dāng)Taq DNA聚合酶用量為0.5 U時，擴(kuò)出的條帶少，Taq DNA聚合酶用量為1.5～2.5 U時，非特異性條帶較多，而當(dāng)Taq DNA聚合酶用量為1 U時，結(jié)果較好，條帶較多且穩(wěn)定。所以選擇 Taq DNA聚合酶用量為1 U。

3.4.5 MgCl2濃度對擇性擴(kuò)增的影響 MgCl2通過影響Taq DNA聚合酶的活性影響選擴(kuò)結(jié)果且對引物和模板的結(jié)合及特異性也具有一定的影響[12]，MgCl2濃度過高時非特異性條帶較多，MgCl2濃度過小時影響Taq DNA聚合酶的活性擴(kuò)出的條帶少或無擴(kuò)增產(chǎn)物，在本擴(kuò)增體系選擇MgCl2濃度為0.200 mol/L。

3.5 大瀧六線魚AFLP優(yōu)化反應(yīng)體系的驗(yàn)證

本研究為驗(yàn)證AFLP優(yōu)化體系的可靠性，以E+AGG/M+CGA為選擇性引物對不同的大瀧六線魚樣品進(jìn)行選擇性擴(kuò)增，擴(kuò)增產(chǎn)物用ABI3130自動遺傳分析儀進(jìn)行檢測（部分峰譜如圖5所示）。結(jié)果表明不同樣品峰譜清晰，且主要集中在100～350 bp范圍內(nèi)，說明優(yōu)化的AFLP體系能產(chǎn)生較為理想的結(jié)果。

圖 5 不同引物濃度的選擇性擴(kuò)增結(jié)果檢測(M : Marker 1～5分別為引物0.5、0.4、0.3、0.2、0.1μmol/L時的選擇性擴(kuò)增產(chǎn)物)Fig.5 Detection of the selective amplification products with different primer concentrations

圖 6 不同個體的毛細(xì)管電泳檢測結(jié)果(1－3代表不同個體在同一選擴(kuò)引物E+AGG/M+CGA下經(jīng)基因圖譜分析軟件分析得到的電泳峰譜)Fig.6 Capillary electrophoresis of different individuals

4 討 論

AFLP是4大分子標(biāo)記（AFLP、SSR、RAPD、RFLP）中公認(rèn)的最有效的分子標(biāo)記技術(shù)，具有標(biāo)記多態(tài)性強(qiáng)、鑒定靈敏度高、穩(wěn)定性強(qiáng)、重復(fù)性高等諸多優(yōu)點(diǎn)，是各物種遺傳標(biāo)記的主要應(yīng)用技術(shù)。

AFLP操作過程較復(fù)雜，影響結(jié)果的因素較多,不同的材料存在差異，因此筆者針對大瀧六線魚對影響其結(jié)果的幾個重要因素進(jìn)行了優(yōu)化以期得到真實(shí)且準(zhǔn)確的結(jié)果。高純度的基因組是AFLP成功的最基礎(chǔ)條件，本研究采用改進(jìn)的蛋白酶K消化法將抽提次數(shù)增加到三次，提取的基因組DNA純度較高，各樣品 A260/A280≥1.80，A260/A230≥2.0，符合AFLP技術(shù)對基因組的要求。酶切質(zhì)量直接影響后續(xù)擴(kuò)增的成功與否，50 μL酶切體系中2 μg模板，酶切6 h為宜。預(yù)擴(kuò)反應(yīng)是對限制性酶切片段的初步篩選即起到對選擴(kuò)模板純化的作用，預(yù)擴(kuò)產(chǎn)物的質(zhì)量對后續(xù)的選擴(kuò)影響較大。本試驗(yàn)就預(yù)擴(kuò)產(chǎn)物的稀釋倍數(shù)對選擴(kuò)結(jié)果的影響進(jìn)行了優(yōu)化，優(yōu)化結(jié)果顯示：一定范圍內(nèi)稀釋倍數(shù)選擴(kuò)結(jié)果影響不大。對于大瀧六線魚稀釋30倍得到的選擴(kuò)產(chǎn)物符合預(yù)期要求，選擴(kuò)片度大多處在500 bp以下，亮帶主要集中在100～350 bp。對選擇性擴(kuò)增體系的優(yōu)化得到了針對大瀧六線魚的最佳體系即：預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物30倍稀釋液5 μL，10×PCR Buffer 2.0 μL，dNTPs（各2.5 mmol/L）1.6 μL，選擇性擴(kuò)增引物（10 μmol/L）各0.6 μL，Taq DNA聚合酶1 U，MgCl2（25 mmol/L）1.6 μL，加ddH20至總體積為20 μL。該體系得到的選擴(kuò)產(chǎn)物穩(wěn)定且清晰便于觀察。

本研究中，采用F-AFLP（Fluorescent AFLP)分子標(biāo)記技術(shù)，用熒光染料代替?zhèn)鹘y(tǒng)的放射性同位素來標(biāo)記引物，從而得到熒光染料標(biāo)記的片段，然后用先進(jìn)的ABI3130遺傳分析儀進(jìn)行片段多態(tài)性的檢測，該方法和放射性同位素及銀染法技術(shù)相比，具有高靈敏度、更為快速準(zhǔn)確、易于操作且易標(biāo)準(zhǔn)化，可獲得更多的信息，且省時省力效率又高，還可以避免直接用肉眼觀察造成的誤差，其結(jié)果也更客觀。

綜上所述，本研究建立了適合大瀧六線魚基因組DNA的AFLP反應(yīng)體系，為以后利用AFLP技術(shù)對大瀧六線魚進(jìn)行遺傳連鎖圖譜構(gòu)建、群體遺傳結(jié)構(gòu)及多樣性研究等方面的應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)，以及對其他魚類的相關(guān)研究具有借鑒意義。

[1]唐啟升, 葉懋中.山東近海漁業(yè)資源開發(fā)與保護(hù) [M].北京:農(nóng)業(yè)出版社, 1990.

[2]葉青.青島近海歐氏六線魚食性的研究 [J].海洋湖沼通報, l992, 4: 51-54．

[3]吳立新, 秦克靜, 姜志強(qiáng), 等.大瀧六線魚人工育苗初步試驗(yàn)[J].海洋科學(xué), 1996, 4: 32-34.

[4]王書磊, 姜志強(qiáng), 苗治歐.大連海區(qū)大瀧六線魚生物學(xué)指標(biāo)的季節(jié)變化 [J].水產(chǎn)科學(xué), 2005, 24(5): 1-3.

[5]Vos P, Hogers R, Bleeker M, et a1.AFLP: a new technique for DNA finger- printing [J].Nucleic Acids Research, 1995, 23(21): 4407-4414.

[6]Vantoai T T, Peng J, Martin S K S.Using AFLP markers to determine the genomic contributions of parents to populations [J].Crop Science, 1997, 37: 1370-1373.

[7]Roa A C, Maya M M, Duque M C, et a1.AFLP analysis of relationships among cassava and other Manihot speices [J].Theoretical and Applied Genetics, 1997, 95: 741-750.

[8]潘潔, 包振民, 趙洋, 等.櫛孔扇貝不同地理群體的遺傳多樣性分析 [J].高技術(shù)通訊, 2002, 12: 78-82.

[9]Young W P, Wheller P A, Coryell V H, et al.A detailed linkage map of rainbow trout produced using doubled haploids [J].Genetics, 1998, 148: 839-850.

[10]Moore S S, Whan V, Davis G P, et al.The development and application of genetic markers for the Kuruma prawn Penaeus japonicas [J].AquacuLture, 1999, 173: 19-32.

[11]王志勇, 王藝?yán)? 林利民, 等.福建官井大黃魚AFLP指紋多態(tài)性的研究 [J].中國水產(chǎn)科學(xué), 2002, 9(3): 198-201.

[12]Sambrok J, David W R.分子克隆實(shí)驗(yàn)指南 [M].北京: 科學(xué)出版社, 1993.

Establishment and optimization of fluorescence-based AFLP markers forHexagrammos otakiis

TONG Yan-li1, LI Hai-dong1, WANG Ling2, WANG Bo3, ZHENG Ming-gang3

(1.Rizhao Polytechnic, Rizhao 276826, China; 2.Qingdao University, Qingdao 266061, China；3.The First Institute of Oceanography, Qingdao 266061, China)

In this study, we optimized the main factors influencing the results of AFLP, including the quality and concentration of the extracted DNA, reaction time of enzymes EcoRI/MseI digestion, and the concentration of Mg2+, dNTPs, selective primer and the dilute multiple of pre-amplification production were also optimized in selective amplification reaction system.Ten pairs of primers were identified from eighty-one pairs of primers by optimizing the AFLP reaction system.The result established a strong foundation for the AFLP analysis of H.otakii which provided a standardized program for studying genetic diversity of H.Otakii.

Hexagrammos otaki; fluorescence-based AFLP markers; reaction system

P735; S917

A

1001-6932(2011)06-0668-06

2010-08-19；

2011-03-07

國家海洋公益性行業(yè)科研專項(xiàng)（201009）；國家農(nóng)業(yè)科技成果轉(zhuǎn)化資金項(xiàng)目（2009-511-208）。

仝顏麗（1989－），女，山東菏澤市人，主要從事海洋生物基因工程研究。電子郵箱：tong111222333@yeah.net。

鄭明剛, 電子郵箱：zmg@fio.org.cn。