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一氧化氮在腦缺血預(yù)處理中的作用及其機制

2011-08-06 00:56張珍珍
藥學(xué)進(jìn)展 2011年10期
關(guān)鍵詞:激酶腦缺血磷酸化

張 超, 季 暉, 趙 倩, 張珍珍

(中國藥科大學(xué)藥理學(xué)教研室,江蘇 南京 210009)

腦缺血預(yù)處理(ischemic preconditioning,IPC)是指腦組織在經(jīng)過非致死性短暫的重復(fù)缺血后,能增強其對缺血的耐受性的一種現(xiàn)象[1]。短暫性腦缺血誘導(dǎo)的腦IPC效應(yīng)是一種多因素級聯(lián)反應(yīng),可促進(jìn)腦內(nèi)神經(jīng)元存活,減輕缺血后損傷。一氧化氮(NO)可調(diào)節(jié)大腦血流量和局部大腦灌注時的新陳代謝活性,對IPC的產(chǎn)生起著至關(guān)重要的作用。

1 一氧化氮與一氧化氮合酶

1.1 在腦內(nèi)的功能

NO由一氧化氮合酶(NOS)產(chǎn)生,NOS具有3種亞型:神經(jīng)型(nNOS)、內(nèi)皮型(eNOS)和誘導(dǎo)型(iNOS)。在健康的大腦中,NO主要由神經(jīng)元內(nèi)的nNOS和內(nèi)皮上的eNOS產(chǎn)生。在神經(jīng)元中,nNOS主要存在于細(xì)胞質(zhì)中,激活后遷移至細(xì)胞膜上,與谷氨酸鹽依賴的N-甲基-D-天冬氨酸(NMDA)受體結(jié)合并激活受體[2]。NMDA受體被激活后,引起Ca2+內(nèi)流,激活nNOS產(chǎn)生較低水平的NO[3]。在損傷、缺氧等應(yīng)激條件刺激下,可誘導(dǎo)膠質(zhì)細(xì)胞產(chǎn)生iNOS,且不依賴Ca2+而持續(xù)產(chǎn)生并釋放NO[4-5]。有研究者認(rèn)為在線粒體中存在著一種新的NOS——線粒體NOS(mtNOS),但人們對此存在爭議,有人認(rèn)為所謂mtNOS可能只是線粒體中的nNOS[6]。

NO可介導(dǎo)谷氨酸鹽信號,并對細(xì)胞-細(xì)胞間的信號傳導(dǎo)產(chǎn)生影響,而谷氨酸鹽信號在長期增強或者減弱的過程中,NO可能發(fā)揮一個神經(jīng)興奮傳遞的反饋傳感器作用,這種反饋對于突觸前/后膜的興奮傳遞和神經(jīng)網(wǎng)的活性很重要。作為內(nèi)皮細(xì)胞衍生舒張因子,由eNOS和nNOS產(chǎn)生的NO可通過調(diào)節(jié)局部大腦血流量增加神經(jīng)元活性。

1.2 在腦缺血后的作用

研究表明,健康腦內(nèi)的NO濃度是納摩爾水平,然而腦缺血后其濃度升至微摩爾水平,這緣于nNOS的激活。NOS在腦缺血后的作用可被分為兩個方面,即調(diào)節(jié)血管功能(由eNOS介導(dǎo))和產(chǎn)生毒性作用(初期由nNOS介導(dǎo),后期由iNOS介導(dǎo))。

有研究者曾在nNOS基因敲除小鼠實驗中發(fā)現(xiàn),nNOS基因敲除小鼠在腦缺血后腦內(nèi)NO水平?jīng)]有增加,并對局部缺血和全腦缺血產(chǎn)生耐受。腦缺血誘導(dǎo)nNOS合成的NO對組織的損傷機制包括:致聚ADP-核糖聚合酶(PARP)激活,導(dǎo)致細(xì)胞儲存能量耗盡[7];與超氧化物結(jié)合生成亞硝酸鹽;誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡(Elibol等,Neuroscience,2001 年)。與nNOS基因敲除小鼠實驗的結(jié)果一致,nNOS抑制劑也可使動物模型對缺血產(chǎn)生耐受(Yoshida等,J Cereb Blood Flow Metab,1994 年)。

已有研究表明,在腦缺血開始階段,iNOS在腦內(nèi)并無表達(dá),直到幾天后,膠質(zhì)細(xì)胞和炎癥細(xì)胞進(jìn)入了缺血核心區(qū),方才有表達(dá),而由iNOS產(chǎn)生的NO則可加重組織損傷。Ono等[8]證實小膠質(zhì)細(xì)胞中因iNOS激活所產(chǎn)生并釋放的NO與缺血后延遲性神經(jīng)元損傷密切相關(guān),且使用iNOS特異性抑制劑或在iNOS基因敲除模型小鼠中進(jìn)行的實驗也證明,抑制iNOS的表達(dá),可減輕這種損傷(Iadecola等,Neuroscience,1997 年)。

與nNOS和iNOS的毒性作用不同,eNOS在腦缺血后可發(fā)揮腦血管保護(hù)作用,即舒張血管和抑制血小板聚集及白細(xì)胞與內(nèi)皮細(xì)胞黏附。實驗表明,在腦缺血后,eNOS基因敲除小鼠與野生型小鼠相比,其腦內(nèi)有更大的核心缺血區(qū)和更小的半影區(qū),這可能緣于其缺失eNOS的腦血流量調(diào)節(jié)作用(Huang等,J Cereb Blood Flow Metab,1996年)。

2 腦缺血預(yù)處理機制

IPC可出現(xiàn)在不同的組織中,如心臟、大腦、肝、肺和胃腸道片段[9-10],但是其在各組織中的激活和調(diào)控機制是否一樣尚不得而知。IPC的一些保護(hù)機制已被證實,如改變細(xì)胞基因、上調(diào)熱休克蛋白、減少脂過氧化反應(yīng)、促進(jìn)炎癥和線粒體新陳代謝等[11-15],但其分子機制也不十分清楚。

依據(jù)短暫性缺血后產(chǎn)生保護(hù)效應(yīng)的時間間隔的不同,腦IPC可分為兩種類型:即時型(early preconditioning)和延遲型(late preconditioning),即 IPC的保護(hù)效應(yīng)呈“雙峰”時相。前者在短暫性缺血后數(shù)分鐘至3 h內(nèi)即產(chǎn)生保護(hù)效應(yīng),而后者的保護(hù)效應(yīng)則出現(xiàn)在短暫性缺血后24~72 h,兩者的病理生理及保護(hù)機制不同。即時型IPC因為在短暫性缺血后很快產(chǎn)生,僅被認(rèn)為是翻譯前水平的調(diào)控,不像延遲型IPC涉及到基因表達(dá)的改變,因此其保護(hù)效應(yīng)產(chǎn)生的時間較短。

對腦IPC的研究起初采用了沙土鼠的全腦缺血模型,結(jié)果顯示,阻斷雙側(cè)頸總動脈達(dá)5 min,即可造成海馬CA1區(qū)的神經(jīng)元損傷,而若在此前預(yù)先致腦形成2 min的短暫性缺血,則可減輕隨后缺血造成的CA1區(qū)神經(jīng)元損傷,提示短暫性缺血可對腦組織產(chǎn)生保護(hù)效應(yīng);但這種保護(hù)效應(yīng)在1~3 d后才出現(xiàn),說明這是一種延遲型IPC效應(yīng)。最新研究表明,NMDA受體的激活和相關(guān)蛋白的合成是延遲型IPC產(chǎn)生的必要條件[16]。

盡管IPC確切的信號分子尚不明確,但其延遲保護(hù)效應(yīng)的一些激活分子已被人們發(fā)現(xiàn),包括腺苷、緩激肽、細(xì)胞因子、NO和活性氧(ROS)。這些分子可以激活I(lǐng)PC的上游信號,其中有些分子與NOS的激活相關(guān),提示NO的產(chǎn)生可能是延遲型IPC效應(yīng)產(chǎn)生的關(guān)鍵。

3 對一氧化氮在腦缺血預(yù)處理中作用的研究

3.1 體外模型實驗研究

缺氧-缺糖(OGD)模型可用于對原代神經(jīng)元或PC12細(xì)胞進(jìn)行的體外模擬腦缺血研究。在神經(jīng)元細(xì)胞培養(yǎng)模型中,短暫的OGD可誘導(dǎo)IPC效應(yīng),表現(xiàn)為神經(jīng)元的抗氧化應(yīng)激能力增強。然而,細(xì)胞培養(yǎng)模型只能用來研究神經(jīng)元產(chǎn)生IPC的內(nèi)源性通路[17],并不能闡明血管的作用和不同組織結(jié)構(gòu)之間的相互作用對IPC產(chǎn)生的影響。

體外實驗顯示,神經(jīng)元細(xì)胞經(jīng)5~30 min的OGD處理后,對24 h后45~55 min的OGD損傷有保護(hù)作用(Grabb等,J Neurosci,1999年)。這種IPC效應(yīng)與NMDA受體激活、Ca2+內(nèi)流和新蛋白合成相關(guān),而L-NAME可阻斷此IPC效應(yīng),提示NO參與了此IPC效應(yīng)的產(chǎn)生。使用原代皮層細(xì)胞培養(yǎng)模型進(jìn)行的實驗還發(fā)現(xiàn),NMDA受體興奮后,激活nNOS,導(dǎo)致NO水平升高,繼而激活可抑制Ras相關(guān)信號傳導(dǎo)的p21 Ras,產(chǎn)生IPC效應(yīng),而使用p21 Ras顯性失活突變體或者p21 Ras抑制劑可以阻斷IPC效應(yīng),提示下調(diào)Ras相關(guān)信號,包括Raf/MEK/ERK通路傳導(dǎo),可能改變基因表達(dá),并刺激神經(jīng)元生長和存活相關(guān)程序,從而誘導(dǎo)IPC效應(yīng)(Gonzalez-Zulueta等,Proc Natl Acad Sci USA,2000 年)。

3.2 體內(nèi)模型實驗研究

小鼠實驗顯示,連續(xù)將大腦中動脈阻斷(MACO)3次(每次持續(xù)5 min),對30 min后永久性腦缺血損傷有保護(hù)作用,24 h后的腦梗死體積檢測驗證了這一點(Stagliano等,J Cereb Blood Flow Metab,1999 年)。Atochin等[18]在 eNOS 和 nNOS 基因敲除及野生型小鼠實驗中采用同樣的方法考察了eNOS和nNOS在IPC中的必要性,其間采用多普勒血流儀記錄血流量變化。結(jié)果表明,野生型小鼠經(jīng)過3次MACO后,可使永久性腦缺血24 h后的腦梗死體積減少,但eNOS和nNOS基因敲除小鼠卻未見有此IPC效應(yīng)。

在新生小鼠缺氧-缺血模型中,IPC效應(yīng)可以被非特異性NOS抑制劑L-精氨酸(L-NAME)而并非nNOS特異性抑制劑7-硝基吲哚(7-nitroindazole)和iNOS特異性抑制劑氨基胍(aminoguanidine)所拮抗(Gidday 等,J Cereb Blood Flow Metab,1999 年)。Gustavsson等[19]在同一模型試驗中也證實eNOS的基因表達(dá)與腦IPC效應(yīng)相關(guān),即eNOS基因表達(dá)的增加可致大腦血管舒張及血流量增加,從而產(chǎn)生IPC效應(yīng)。

大鼠實驗顯示,給予3 min短暫的MACO或脂多糖(LPS),可產(chǎn)生腦IPC效應(yīng)。其中,由LPS誘導(dǎo)的IPC效應(yīng)被認(rèn)為與eNOS表達(dá)的增加有關(guān),可被非特異性NOS抑制劑L-NAME阻斷,然而,L-NAME卻不能抑制短暫性MACO所致IPC效應(yīng)(Puisieux等,Eur J Pharmacol,2000年)。這一實驗結(jié)果與之前人們的研究結(jié)果出現(xiàn)偏差,究其原因,可能是實驗動物種群差異(大鼠 vs小鼠)、模型差異(3 min MACO 1次 vs 5min MACO 3次)和L-NAME不能有效阻斷eNOS表達(dá)所致。eNOS誘導(dǎo)腦IPC效應(yīng)的可能機制是,舒張大腦血管,增加缺血半影區(qū)血流量,從而減小腦梗死體積;且與干預(yù)白細(xì)胞-內(nèi)皮細(xì)胞以及血小板-內(nèi)皮細(xì)胞間相互作用有關(guān)(Jiang等,Brain Res,2002 年)。

揮發(fā)性麻醉劑也可誘導(dǎo)腦 IPC效應(yīng),Wang等[20]認(rèn)為這和蛋白激酶B(Akt)的激活以及三磷酸腺苷(ATP)依賴性通道等與NO密切相關(guān)的信號通路有關(guān)。給大鼠腹腔注射異氟烷或者氟烷后24 h,再行2 h MACO,則可產(chǎn)生腦IPC效應(yīng),而iNOS抑制劑氨基胍可阻斷此IPC效應(yīng),提示iNOS參與了這些麻醉劑誘導(dǎo)IPC效應(yīng)產(chǎn)生的過程(Kapinya等,Brain Res,2000 年)。Kitano 等[21]在小鼠實驗中發(fā)現(xiàn),使用異氟醚誘導(dǎo)腦IPC效應(yīng),存在性別差異,即此誘導(dǎo)方法只對雄性小鼠有效,而對于雌性小鼠無效。這種性別差異來自于Akt的活性差異,繼而改變下游eNOS的活性。

綜上所述,NO在IPC中的作用可分為以下兩個方面:第一,可能通過內(nèi)源性通路參與IPC效應(yīng),發(fā)揮觸發(fā)器和調(diào)控器雙重作用,調(diào)節(jié)神經(jīng)元對腦缺血的耐受;第二,作為內(nèi)皮細(xì)胞衍生舒張因子,可在腦缺血后增加灌注血流量,抑制內(nèi)皮細(xì)胞、血小板和白細(xì)胞的相互黏連,從而降低腦缺血所致血管功能性損傷。

4 對一氧化氮在腦缺血預(yù)處理中作用機制的研究

已有研究表明NO在IPC中的作用機制涉及以下途徑:1)Ras/Raf/MEK/ERK和PI3K/Akt通路,NO可激活這兩條通路,并產(chǎn)生級聯(lián)反應(yīng),如細(xì)胞骨架蛋白磷酸化、細(xì)胞黏附分子磷酸化以及轉(zhuǎn)錄因子[如Elk-1、cAMP反應(yīng)元件結(jié)合蛋白(CREB)、NF-κB等]的激活,而轉(zhuǎn)錄因子的激活又可以導(dǎo)致基因表達(dá)的變化,觸發(fā) IPC效應(yīng);2)NF-κB通路,NF-κB參與了由細(xì)胞因子和生長因子引起的細(xì)胞分化、凋亡和生存過程,而短暫性腦缺血誘導(dǎo)產(chǎn)生的NO可激活NF-κB,并誘導(dǎo)產(chǎn)生iNOS,引發(fā)IPC效應(yīng);3)線粒體K+-ATP通道,一種ATP敏感性的K+通道,被認(rèn)為可能是延遲型IPC的效應(yīng)器,而NO可以選擇性激動線粒體K+-ATP通道。

4.1 Ras/Raf/MEK/ERK通路

Ras/Raf/MEK/ERK通路可調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖、分化、存活、凋亡的基本過程。研究表明,由nNOS產(chǎn)生的NO可激活G蛋白Ras(Gonzalez-Zulueta等,Proc Natl Acad Sci USA,2000 年),使之結(jié)合 Ras激酶,并遷移到細(xì)胞膜表面;Ras激活絲蘇氨酸激酶Raf,繼而激活MEK激酶家族(MAPK/ERK激酶,MEK1和MEK2),MEK又致ERK激酶家族(ERK1和ERK2,即p42和p44)磷酸化并激活,而ERK激酶是這個級聯(lián)反應(yīng)的效應(yīng)分子,不僅可致細(xì)胞質(zhì)中靶蛋白磷酸化,還可致核蛋白和轉(zhuǎn)錄因子,如CREB和Elk-1磷酸化(見圖1)[16]。此外,體外神經(jīng)元培養(yǎng)模型實驗發(fā)現(xiàn),ERK的激活與 IPC效應(yīng)相關(guān)(Kolch等,Biochem J,2000年)。筆者所在課題組進(jìn)行的大鼠實驗也顯示,IPC模型大鼠在腦缺血再灌注后腦內(nèi)磷酸化ERK(p-ERK)水平升高,而其接受新型NO供體型化合物(S)-ZJM-289治療后,IPC效應(yīng)增強,且其腦內(nèi)p-ERK表達(dá)水平進(jìn)一步提高,提示(S)-ZJM-289增強IPC效應(yīng)的作用可能與ERK蛋白的激活相關(guān)。

4.2 PI3K/Akt通路

NO激活的Ras也可通過促進(jìn)生長因子與酪氨酸激酶受體或者G蛋白偶聯(lián)受體結(jié)合而激活PI3K/Akt通路[15]。3-磷酸磷脂酰肌醇激酶(PI3K)被激活后,可水解細(xì)胞膜上 4,5-二磷酸磷脂酰肌醇(PIP2)生成第2信使 PIP3,而PIP3與細(xì)胞內(nèi)含有PH結(jié)構(gòu)域的信號蛋白Akt和磷酸肌醇依賴性蛋白激酶(PDK)結(jié)合,促使PDK致Akt磷酸化并激活(見圖1)。

Akt也稱蛋白激酶B(PKB),是一種相對分子質(zhì)量為60000的絲氨酸/蘇氨酸激酶,具有3種亞型,其中 Akt1是與大腦功能密切相關(guān)的一種亞型[22],可在 4 個位點(Ser124、Thr308、Thr450 和Ser473)被PDK磷酸化,且Thr308和Ser473位點的磷酸化可增強Akt1激酶活性。Akt1激活后可致絲氨酸和蘇氨酸磷酸化,繼而影響諸多靶點,如基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控蛋白(如 FOCO、IKK、mdm2等)、細(xì)胞質(zhì)酶、組蛋白和細(xì)胞程序化死亡相關(guān)蛋白(如BAD、Bax、Caspase 9等)。

細(xì)胞內(nèi)鈣濃度的增加可以激活nNOS和eNOS。最近研究表明,eNOS的活性也受磷酸化的蘇氨酸和絲氨酸殘基調(diào)控,如因Ser1179位點磷酸化而激活以及因Thr479位點磷酸化而失活[23]。Akt激酶可致eNOS在Ser1179位點磷酸化并激活,是重要的體內(nèi)eNOS調(diào)控因子,其介導(dǎo)的eNOS磷酸化改變了細(xì)胞對生長因子如胰島素樣生長因子(IGF-1)的應(yīng)答。除Akt以外,其他激酶,如PKA、AMPK和PKC也可致 eNOS在不同位點磷酸化,調(diào)控其活性。eNOS活性的增加對于IPC的影響機制包括:調(diào)節(jié)Caspase的表達(dá)和磷酸化、PKC通路的激活及基因表達(dá)的改變。

總的來說,Akt1及其下游信號分子可促進(jìn)腦缺血再灌注后神經(jīng)元的存活,與IPC效應(yīng)的產(chǎn)生密切相關(guān)。

圖1 NO經(jīng)Ras/Raf/MEK/ERK和PI3K/Akt通路誘導(dǎo)IPC的分子機制Figure 1 Molecular mechanism of NO-induced IPC via Ras/Raf/MEK/ERK and PI3K/Akt signal pathways

4.3 NF-κB 通路

在正常狀態(tài)下,NF-κB在胞質(zhì)中與其抑制因子I-κB結(jié)合而失去轉(zhuǎn)錄活性。短暫性腦缺血后產(chǎn)生的適量的NO則能促進(jìn)PKC致IKK(I-κB的激酶)磷酸化并激活,導(dǎo)致 I-κB磷酸化及降解,使其與NF-κB 解離[24-25],被釋放的 NF-κB 轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核內(nèi)并誘導(dǎo)目的基因表達(dá) iNOS,激活 CREB[16],并產(chǎn)生IPC效應(yīng)(見圖2)。筆者所在課題組研究發(fā)現(xiàn),(S)-ZJM-289用于IPC模型大鼠時,可改善大鼠的神經(jīng)行為學(xué)功能和腦損傷指標(biāo)。且免疫組化和Western Blot實驗顯示,給IPC模型大鼠使用了(S)-ZJM-289后,大鼠腦內(nèi)NF-κB和eNOS蛋白表達(dá)上調(diào),表明(S)-ZJM-289可通過激活eNOS,釋放NO,促進(jìn)NF-κB-I-κB解偶聯(lián),致NF-κB 活化并進(jìn)入細(xì)胞核內(nèi)進(jìn)行iNOS基因轉(zhuǎn)錄,從而增強IPC效應(yīng)。

圖2 NO經(jīng)NF-κB通路誘導(dǎo)IPC的分子機制Figure 2 Molecular mechanism of NO-induced IPC via NF-κB singal pathway

4.4 線粒體K+-ATP通道

線粒體K+-ATP通道是腦內(nèi)產(chǎn)生IPC的重要靶點,而PKC的激活被認(rèn)為是線粒體K+-ATP通道開放的重要環(huán)節(jié)[26]。已有研究顯示,給IPC模型大鼠在腦缺血前注射K+-ATP通道拮抗劑,可阻斷腦缺血后IPC效應(yīng),而K+-ATP通道激動劑在海馬切片中可誘導(dǎo)類似IPC效應(yīng)[27];NO則可通過環(huán)磷酸鳥苷(cGMP)-PKG-PKC通路選擇性激動線粒體K+-ATP通道[28-29]。最新研究表明,硝?;蛶€基等自由基也可激動該通道[30]。機制研究表明,線粒體K+-ATP通道的開放可抑制細(xì)胞膜去極化[31],增加線粒體呼吸率(Bajgar等,J Biol Chem,2001),減少ROS產(chǎn)生[32],抑制胞內(nèi)鈣的超載,從而抑制神經(jīng)元凋亡,產(chǎn)生 IPC 效應(yīng)(Pain等,Circ Res,2000 年)。

5 結(jié)語

NO及其代謝物在細(xì)胞保護(hù)分子信號級聯(lián)中起重要作用,可促進(jìn)IPC效應(yīng)的產(chǎn)生,對其的深入研究有積極的臨床意義。筆者所在課題組研究表明,新型NO供體型化合物(S)-ZJM-289用于IPC大鼠時,可顯著性降低腦缺血再灌注后的神經(jīng)元損傷和腦梗死體積,改善神經(jīng)學(xué)功能,其誘導(dǎo)IPC效應(yīng)的產(chǎn)生與增強eNOS活性和改善線粒體功能相關(guān),它可通過增加eNOS活性,改善內(nèi)皮細(xì)胞功能,增強腦內(nèi)缺血區(qū)域的微循環(huán),促使ERK磷酸化,導(dǎo)致IPC效應(yīng)的產(chǎn)生。亞硝酸鹽是本課題組最新的研究重點,因為它不僅是一種穩(wěn)定的NO貯存器,能在缺血后對缺血區(qū)域發(fā)出類似NO的信號,其具有的氧化還原特性又令它在這個信號通路中的作用具有多樣性,而且它還是IPC效應(yīng)調(diào)節(jié)器,在治療腦缺血再灌注損傷方面極具潛在價值。盡管亞硝酸鹽介導(dǎo)IPC效應(yīng)的機制尚不清楚,但現(xiàn)有的研究數(shù)據(jù)表明,它是缺血反饋的生理調(diào)節(jié)器,為治療缺血性疾病的很有潛力的藥物。

[1]Gidday J M.Cerebral preconditioning and ischaemic tolerance[J].Nat Rev Neurosci,2006,7(6):437-448.

[2]Zhou L,Zhu D Y.Neuronal nitric oxide synthase:structure,subcellularlocalization,regulation,and clinical implications[J].Nitric Oxide Biol Chem,2009,20(4):223-230.

[3]Hall C N,Garthwaite J.What is the real physiological NO concentration in vivo?[J].Nitric Oxide Biol Chem,2009,21(2):92-103.

[4]Saha R N,Pahan K.Regulation of inducible nitric oxide synthase gene in glial cells[J].Antioxid Redox Sign,2006,8(5/6):929-947.

[5]Pannu R,Singh I.Pharmacological strategies for the regulation of inducible nitric oxide synthase:neurodegenerative versus neuroprotective mechanisms[J].Neurochem Int,2006,49(2):170-182.

[6]Bustamante J,Czerniczyniec A,Lores-Arnaiz S.Brain nitric oxide synthases and mitochondrial function[J].Front Biosci,2007,12:1034-1040.

[7]Jagtap P,Szabo C.Poly(ADP-ribose)polymerase and the therapeutic effects of its inhibitors[J].Nat Rev Drug Discov,2005,4(5):421-440.

[8]Ono K,Suzuki H,Sawada M.Delayed neural damage is induced by iNOS-expressing microglia in a brain injury model[J].Neurosci Lett,2010,473(2):146-150.

[9]Zhao H.The protective effect of ischemic postconditioning against ischemic injury:from the heart to the brain[J].J Neuroimmune Pharm,2007,2(4):313-318.

[10]Kaminskia A,Kascha C,Zhang L,et al.Endothelial nitric oxide synthase mediates protective effects of hypoxic preconditioning in lungs[J].Respir Physiol Neurobiol,2007,155(3):280-285.

[11]Stenzel-Poore M P,Stevens S L,King J S,et al Preconditioning reprograms the response to ischemic injury and primes the emergence of unique endogenous neuroprotective phenotypes:a speculative synthesis[J].Stroke,2007,38(2):680-685.

[12]Liebelta B,Papapetroub P,Alib A,et al Exercise preconditioning reduces neuronal apoptosis in stroke by up-regulating heat shock protein-70(heat shock protein-72)and extracellular-signal-regulated-kinase 1/2 [J].Neuroscience,2010,166(4):1091-1100.

[13]Yuan H J,Zhu X H,Luo Q.Noninvasive delayed limb ischemic preconditioning in rats increases antioxidant activities in cerebral tissue during severe ischemia-reperfusion Injury[J/OL].J Surg Res,2010,in Press.[2011-8-16].http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0022480410009224.

[14]Dirnagl U,Meisel A.Endogenous neuroprotection:mitochondria as gateways to cerebral preconditioning?[J].Neuropharmacology,2008,55(3):334-344.

[15]Zhang Y,Park T S,Gidday J M.Hypoxic preconditioning protects human brain endothelium from ischemic apoptosis by Akt-dependent survivin activation[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2007,292(6):H2573-H2581.

[16]Zhang Q G,Wang R M,Han D,et al.Preconditioning neuroprotection in global cerebral ischemia involves NMDA receptor-mediated ERK-JNK3 crosstalk[J].Neurosci Res,2009,63(3):205-212.

[17]Simon R,Henshall D,Stoehr S,et al.Endogenous mechanisms of neuroprotection[J].Epilepsia,2007,48(s8):72-73.

[18]Atochin D N,Clark J,Demchenko I T,et al.Rapidcerebral ischemic preconditioningin mice deficient in endothelial and neuronalnitric oxidesynthases[J].Stroke,2003,34(5):1299-1303.

[19]Gustavsson M,Mallard C,Vannucci S J,et al.Vascular response to hypoxic preconditioning in the immature brain[J].J Cereb Blood Flow Metab,2007,27(5):928-938.

[20]Wang L,Traystman R J,Murphy S J.Inhalational anesthetics as preconditioning agents in ischemic brain[J].Curr Opin Pharmacol,2008,8(1):104-110.

[21]Kitano H,Young J M,Cheng J,et al.Gender-specific response to isoflurane preconditioning in focal cerebral ischemia[J].J Cereb Blood Flow Metab,2007,27(7):1377-1386.

[22]Li J,Lang J,Zeng Z,et al.Akt1 gene deletion and stroke[J].J Neurol Sci,2008,269(1/2):105-112.

[23]Sampaio W O,dos Santos R A S,F(xiàn)aria-Silva R,et al.Angiotensin-(1-7)through receptor mas mediates endothelial nitric oxide synthase activation via akt-dependent pathways[J].Hypertension,2007,49(1):185-192.

[24]Nijboer C H,Heijnen C J,Groenendaal F,et al.A dual role of the NF-κB pathway in neonatal hypoxic-ischemic brain damage[J].Stroke,2008,39(9):2578-2586.

[25]Rybnikova E,Gluschenko T,Tulkova E,et al.Preconditioning induces prolonged expression of transcription factors pCREB and NF-κB in the neocortex of rats before and following severe hypobaric hypoxia[J].J Neurochem,2008,106(3):1450-1458.

[26]Dave K R,DeFazio R A,Raval A P,et al.Ischemic preconditioning targets the respiration of synaptic mitochondria via protein kinase C epsilon[J].J Neurosci,2008,28(16):4172-4182.

[27]Wang L,Zhu Q L,Wang G Z,et al.The protective roles of mitochondrial ATP-sensitive potassium channels during hypoxia-ischemia-reperfusion in brain[J].Neurosci Lett,2011,491(1):63-67.

[28]Queliconi B B,Wojtovich A P,Nadtochiy S M,et al.Redox regulation of the mitochondrial K(ATP)channel in cardioprotection[J].Biochim Biophys Acta,2010,1813(7):1309-1315.

[29]Prime T A,Blaikie F H,Evans C,et al.A mitochondriatargeted S-nitrosothiol modulates respiration,nitrosates thiols,and protects against ischemia-reperfusion injury[J].ProcNatlAcadSciUSA,2009,106(26):10764-10769.

[30]Lundberg J O,Weitzberg E,Gladwin M T.The nitratenitrite-nitric oxide pathway in physiology and therapeutics[J].Nat Rev Drug Discov,2008,7(2),156-167.

[31]Costa A D,Garlid K D.Intramitochondrial signaling:interactions among mitoKATP,PKCε,ROS,and MPT[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2008,295(2):H874-H882.

[32]Mayanagi K,Gáspár T,Katakam P V,et al.The mitochondrial K(ATP)channel opener BMS-191095 reduces neuronal damage after transient focal cerebral ischemia in rats[J].J Cereb Blood Flow Metab,2007,27(2):348-355.

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