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種子擴(kuò)大培養(yǎng)過(guò)程對(duì)類人膠原蛋白規(guī)?;a(chǎn)的影響

2011-07-25 12:19:34薛文嬌范代娣
化學(xué)與生物工程 2011年6期
關(guān)鍵詞:對(duì)數(shù)穩(wěn)定期產(chǎn)率

薛文嬌,范代娣

(1.陜西省微生物研究所,陜西 西安 710043;2.西北大學(xué)化工學(xué)院 陜西省可降解生物醫(yī)藥材料重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,陜西 西安 710069)

種子擴(kuò)大培養(yǎng)過(guò)程對(duì)于發(fā)酵過(guò)程雖是一個(gè)獨(dú)立的變量,卻是影響發(fā)酵過(guò)程效率和經(jīng)濟(jì)性的關(guān)鍵因素之一[1]。在小規(guī)模實(shí)驗(yàn)室發(fā)酵過(guò)程中觀測(cè)到的過(guò)程變化很多都是由于接入的種子條件有所變化造成的;在發(fā)酵放大過(guò)程中,合適的種子擴(kuò)大培養(yǎng)過(guò)程的建立對(duì)于放大培養(yǎng)也至關(guān)重要[2]。據(jù)報(bào)道,接入的種子年齡及種子密度都直接影響著滯后期的長(zhǎng)短、比生長(zhǎng)速率、細(xì)胞得率、成孢子性及最終產(chǎn)品的質(zhì)量,從而影響生產(chǎn)成本[1]。

類人膠原蛋白(Human-like collagen,HLC)是利用基因工程技術(shù)將人體膠原蛋白的mRNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,經(jīng)酶切修飾并進(jìn)行特定的序列重復(fù)后重組于E.coli內(nèi),經(jīng)過(guò)高密度發(fā)酵生產(chǎn)出來(lái)的一種高分子生物蛋白,該蛋白不但維持了膠原蛋白的特性,并由于其獨(dú)特的重復(fù)結(jié)構(gòu),賦予其新的特性,因此應(yīng)用領(lǐng)域更加廣闊[3]。在HLC的生產(chǎn)放大過(guò)程中,為了獲得足夠多的接種量,需要增加種子的培養(yǎng)階段。鑒于中試生產(chǎn)罐為500 L規(guī)模,作者在此采用50 L的種子罐進(jìn)行第三級(jí)種子培養(yǎng),以中試規(guī)模的最終菌體濃度、目標(biāo)蛋白濃度及目標(biāo)蛋白產(chǎn)率為考核指標(biāo),考察三級(jí)種子培養(yǎng)過(guò)程中不同移種階段和不同種子培養(yǎng)基對(duì)發(fā)酵過(guò)程的影響,以確定最優(yōu)條件。

1 實(shí)驗(yàn)

1.1 菌種與培養(yǎng)基

基因工程菌E.coliBL21,卡那抗性,溫度誘導(dǎo);質(zhì)粒pNWCP31,自行構(gòu)建并保存[4]。

種子培養(yǎng)基采用固體LB培養(yǎng)基和液體LB培養(yǎng)基,三級(jí)種子培養(yǎng)基由實(shí)驗(yàn)確定,發(fā)酵培養(yǎng)基和補(bǔ)料培養(yǎng)基成分同文獻(xiàn)[4]。

1.2 方法

1.2.1 搖瓶培養(yǎng)

從LB平板上刮取單菌落,置于盛有50 mL種子培養(yǎng)基的300 mL搖瓶中,于32 ℃、200 r·min-1搖床培養(yǎng)10 h;然后將一級(jí)種子轉(zhuǎn)接入盛有50 mL種子培養(yǎng)基的300 mL搖瓶中,在相同的條件下培養(yǎng)10 h。

1.2.2 三級(jí)種子培養(yǎng)

將已培養(yǎng)好的二級(jí)種子培養(yǎng)液接種到裝有24 L三級(jí)種子培養(yǎng)基的50 L發(fā)酵罐中,控制溫度在32 ℃。在三級(jí)種子培養(yǎng)過(guò)程中,通過(guò)調(diào)節(jié)空氣流量、提高攪拌轉(zhuǎn)速和罐壓以控制DO在20%空氣飽和度,用25%(質(zhì)量分?jǐn)?shù),下同)氨水自動(dòng)調(diào)節(jié)pH值為6.8。

1.2.3 分批-補(bǔ)料培養(yǎng)

將已培養(yǎng)好的三級(jí)種子培養(yǎng)液接種到裝有240 L發(fā)酵培養(yǎng)基的500 L發(fā)酵罐中,控制溫度為32 ℃、空氣進(jìn)氣流量為600 L·min-1。在分批-補(bǔ)料培養(yǎng)階段,通過(guò)提高攪拌轉(zhuǎn)速控制DO在20%空氣飽和度,用25%氨水自動(dòng)調(diào)節(jié)pH值為6.8。當(dāng)發(fā)酵罐中的葡萄糖耗盡時(shí),采用近指數(shù)的補(bǔ)料方法控制比生長(zhǎng)速率[5]。當(dāng)OD600達(dá)到95(約45 g·L-1細(xì)胞干重)時(shí),升溫至42 ℃開(kāi)始誘導(dǎo),3 h后降溫至39 ℃,繼續(xù)誘導(dǎo)4~6 h。

1.2.4 移種階段的確定

分別在細(xì)胞生長(zhǎng)的對(duì)數(shù)期前期、中期、后期及穩(wěn)定期移種,考察中試規(guī)模菌體濃度、目標(biāo)蛋白濃度及目標(biāo)蛋白產(chǎn)率,以確定最佳移種階段。

1.2.5 三級(jí)種子培養(yǎng)基的確定

種子培養(yǎng)基的選擇是獲得合適的種子培養(yǎng)物的關(guān)鍵因素之一。Lincoln[6]認(rèn)為,選擇生產(chǎn)階段的發(fā)酵培養(yǎng)基作種子培養(yǎng)基可以縮短滯后期。而使用和發(fā)酵培養(yǎng)基完全不同的培養(yǎng)基作種子培養(yǎng)基是非常危險(xiǎn)的,因?yàn)閮煞N培養(yǎng)基的pH值、滲透壓以及陰離子差距過(guò)大可能會(huì)引起細(xì)胞吸收速率的突然改變,從而影響細(xì)胞的存活性[7]。因此,本實(shí)驗(yàn)除葡萄糖和酵母粉外,三級(jí)種子培養(yǎng)基中其它成分的濃度與發(fā)酵培養(yǎng)基相同。保持葡萄糖和酵母粉濃度比值不變,調(diào)節(jié)葡萄糖濃度分別為10 g·L-1、15 g·L-1、20 g·L-1、25 g·L-1、30 g·L-1、40 g·L-1,均在對(duì)數(shù)期后期移種,考察中試規(guī)模菌體濃度、目標(biāo)蛋白濃度及目標(biāo)蛋白產(chǎn)率,以確定最佳種子培養(yǎng)基。

1.2.6 分析方法

葡萄糖濃度:斐林試劑法[8]。

細(xì)胞密度:取10 mL發(fā)酵液,離心,棄上清液,將沉淀用重蒸水洗滌3遍后,60 ℃烘干至恒重。計(jì)算單位體積發(fā)酵液中細(xì)胞干重,即為細(xì)胞密度。

乙酸濃度:RP-HPLC法[9]。

類人膠原蛋白表達(dá)量:取10 mL發(fā)酵液,離心,棄上清液,將沉淀用重蒸水洗滌3遍后,重懸浮,超聲波破碎,用羥脯氨酸測(cè)定法[10]測(cè)量破碎上清液中類人膠原蛋白含量。

2 結(jié)果與討論

2.1 三級(jí)種子培養(yǎng)過(guò)程特點(diǎn)

將搖瓶培養(yǎng)的二級(jí)種子(OD600達(dá)到2.4)接種到50 L種子罐進(jìn)行三級(jí)種子培養(yǎng)(培養(yǎng)基中葡萄糖濃度為20 g·L-1,其它成分同發(fā)酵培養(yǎng)基),考察其培養(yǎng)過(guò)程特點(diǎn),結(jié)果如圖1所示。

圖1 三級(jí)種子培養(yǎng)過(guò)程的特征曲線

由圖1可以看出,該細(xì)胞生長(zhǎng)過(guò)程符合一般分批培養(yǎng)的細(xì)胞生長(zhǎng)動(dòng)力學(xué),即該過(guò)程基本由4個(gè)階段組成:滯后期、對(duì)數(shù)期、穩(wěn)定期與衰亡期(由于培養(yǎng)時(shí)間較短,衰亡期在圖中表現(xiàn)不明顯)。在對(duì)數(shù)期,細(xì)胞生長(zhǎng)最快,比生長(zhǎng)速率(μ)達(dá)到最大,約為0.7 h-1。在對(duì)數(shù)期與穩(wěn)定期之間還存在一個(gè)減速期。乙酸濃度在減速期就開(kāi)始下降,達(dá)到穩(wěn)定期時(shí)其濃度已接近于0。由于減速期持續(xù)時(shí)間較短,同時(shí)其生理特征介于對(duì)數(shù)期和穩(wěn)定期之間,故在后續(xù)移種階段的考察中未考慮該階段。

2.2 移種階段的確定

根據(jù)三級(jí)種子培養(yǎng)過(guò)程的特征曲線,分別在細(xì)胞生長(zhǎng)的對(duì)數(shù)期前期(培養(yǎng)時(shí)間3 h)、中期(培養(yǎng)時(shí)間5 h)、后期(培養(yǎng)時(shí)間7 h)及穩(wěn)定期(培養(yǎng)時(shí)間10 h)移種,移種體積為發(fā)酵培養(yǎng)基初始體積的10%,考察移種階段對(duì)發(fā)酵過(guò)程的影響,結(jié)果如表1所示。

由表1可知,在對(duì)數(shù)期各階段移種,對(duì)最終的DCW及HLC濃度幾乎沒(méi)有影響,HLC表達(dá)量也相差不大,但是培養(yǎng)時(shí)間不等,并最終導(dǎo)致HLC平均產(chǎn)率不同。在對(duì)數(shù)期后期移種,HLC平均產(chǎn)率最高,達(dá)到0.518 g·L-1·h-1。這主要是因?yàn)樵趯?duì)數(shù)期后期移種,種子培養(yǎng)期達(dá)到的細(xì)胞密度最高,而種子活力及比生長(zhǎng)速率與對(duì)數(shù)期前期及中期基本相同,因此接入到生產(chǎn)罐時(shí),達(dá)到同樣細(xì)胞密度所需的時(shí)間最短。

表1 移種階段對(duì)發(fā)酵過(guò)程的影響

由表1還可知,在穩(wěn)定期移種,HLC表達(dá)量最高,而最終HLC濃度卻最低。這是因?yàn)?,最終DCW(52.4 g·L-1)相比對(duì)數(shù)期移種有很大程度的降低(約降低17%)。盡管有研究表明,相比對(duì)數(shù)期接種,穩(wěn)定期接種可提高質(zhì)粒穩(wěn)定性[11]。但本研究所使用的表達(dá)體系和發(fā)酵體系的質(zhì)粒穩(wěn)定性較好,因此穩(wěn)定期接種與對(duì)數(shù)期接種相比,其質(zhì)粒穩(wěn)定性的提高并不明顯,反而導(dǎo)致細(xì)胞活性降低、滯后期延長(zhǎng),最終DCW降低,進(jìn)而導(dǎo)致最終HLC濃度及平均產(chǎn)率降低。

2.3 種子培養(yǎng)基中葡萄糖濃度的確定

培養(yǎng)基濃度高,得到的種子密度高,發(fā)酵過(guò)程所需的時(shí)間較短,目標(biāo)蛋白產(chǎn)率就高;但培養(yǎng)基濃度過(guò)高,會(huì)導(dǎo)致乙酸等有害副產(chǎn)物濃度增加,影響移種細(xì)胞的生理狀態(tài),從而影響發(fā)酵過(guò)程及目標(biāo)蛋白產(chǎn)率。此外,對(duì)于重組菌培養(yǎng)過(guò)程,其質(zhì)粒穩(wěn)定性對(duì)于目標(biāo)蛋白產(chǎn)率非常重要。培養(yǎng)基濃度過(guò)高,可能會(huì)延長(zhǎng)對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,而細(xì)胞在高速生長(zhǎng)時(shí),其質(zhì)粒的丟失率也較高,因而會(huì)降低目標(biāo)蛋白表達(dá)量。在HLC生產(chǎn)過(guò)程中,培養(yǎng)基中葡萄糖濃度對(duì)發(fā)酵過(guò)程的影響見(jiàn)表2。

表2 種子培養(yǎng)基中葡萄糖濃度對(duì)發(fā)酵過(guò)程的影響

由表2可知,當(dāng)種子培養(yǎng)基中葡萄糖濃度低于20 g·L-1時(shí),所需的培養(yǎng)時(shí)間較長(zhǎng),導(dǎo)致HLC平均產(chǎn)率較低;當(dāng)種子培養(yǎng)基中葡萄糖濃度高于20 g·L-1時(shí),由于質(zhì)粒丟失,最終HLC濃度降低,同時(shí)HLC表達(dá)量降低;特別是當(dāng)種子培養(yǎng)基中葡萄糖濃度為40 g·L-1時(shí),不僅最終HLC表達(dá)量降低,最終DCW也急劇降低,其原因可能是在該批次種子培養(yǎng)過(guò)程中,鑒于設(shè)備供氧能力,無(wú)法保持DO在20%空氣飽和度,從而可能導(dǎo)致混合酸發(fā)酵副產(chǎn)物,影響種子存活力。因此,在三級(jí)種子培養(yǎng)過(guò)程中,其培養(yǎng)基中葡萄糖濃度宜選擇20 g·L-1,其后發(fā)酵過(guò)程所需的培養(yǎng)時(shí)間較短,HLC表達(dá)量較高,HLC平均產(chǎn)率最高達(dá)到0.518 g·L-1·h-1。

3 結(jié)論

研究了三級(jí)種子培養(yǎng)過(guò)程中不同移種階段及不同種子培養(yǎng)基對(duì)類人膠原蛋白發(fā)酵過(guò)程的影響。結(jié)果表明:在對(duì)數(shù)期后期移種,HLC平均產(chǎn)率最高;而穩(wěn)定期接種,卻導(dǎo)致細(xì)胞活性降低、滯后期延長(zhǎng),最終DCW、最終HLC濃度及HLC平均產(chǎn)率都較低。另外,當(dāng)種子培養(yǎng)基中葡萄糖濃度為20 g·L-1時(shí),其后發(fā)酵過(guò)程所需的培養(yǎng)時(shí)間較短,HLC表達(dá)量較高,HLC平均產(chǎn)率最高,達(dá)到0.518 g·L-1·h-1。

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