譚和平,沈興中,唐祥凱,葉德萍,王 智
(中國(guó)測(cè)試技術(shù)研究院,四川 成都 610021)
核酸是生物體遺傳信息的載體,是最重要的生物信息分子,它控制著蛋白質(zhì)的合成和有機(jī)體細(xì)胞的機(jī)能,在生物的生長(zhǎng)、發(fā)育、繁殖、遺傳和變異等生命活動(dòng)中占有極其重要的地位,針對(duì)茶樹遺傳的研究歸根結(jié)底還是DNA分子水平,該文就目前茶樹基因組DNA的主要測(cè)試方法概述如下。
由于茶樹富含多酚類等次生代謝產(chǎn)物,DNA提取過(guò)程中這些產(chǎn)物極易發(fā)生氧化,且易與DNA形成復(fù)合物,難以獲得高質(zhì)量的DNA。按目前一般植物常用的DNA提取法提取茶樹DNA,由于沒(méi)有進(jìn)行多酚類化合物的處理使得DNA色素含量較高,難以滿足后續(xù)DNA分析的純度要求[1-2],為此許多文獻(xiàn)對(duì)茶樹基因組DNA提取方法進(jìn)行了探討和改良,主要有CTAB法和SDS法兩種,它們都在防止多酚類物質(zhì)氧化、去除色素類物質(zhì)方面進(jìn)行了改良,主要集中在樣品的研磨過(guò)程、抗氧化劑等的選擇方面。
朱旗[1]等將茶樹葉片進(jìn)行液氮冷凍,然后搗碎成粉末,并嘗試在研磨過(guò)程和DNA粗品純化時(shí)加入聚乙烯吡咯烷酮PVP去除多酚類化合物以減少色素物質(zhì),結(jié)果顯示得到了較高質(zhì)量的DNA,認(rèn)為PVP能顯著降低色素的含量,提高茶樹DNA的純度。但是有文獻(xiàn)顯示茶樹葉片經(jīng)過(guò)液氮冷凍處理后,使得部分茶樹細(xì)胞核破裂,DNA的降解程度較嚴(yán)重,影響提取的DNA質(zhì)量[3],且在研磨過(guò)程中茶樹葉片細(xì)胞中的多酚類物質(zhì)還是會(huì)不同程度地發(fā)生氧化褐變[4-5]。后來(lái)經(jīng)過(guò)改進(jìn),普遍采用將茶樹葉片置于研缽中加入液氮研磨的方式,同時(shí)添加PVP和一些抗氧化劑如β-巰基乙醇。羅軍武[6]等設(shè)計(jì)并比較了茶樹基因組DNA提取純化的6種方案,主要研究了PVP、液氮以及抽提液飽和酚/氯仿/異戊醇對(duì)茶樹基因組DNA提取質(zhì)量的影響,經(jīng)過(guò)比較得出研磨過(guò)程中加入液氮和PVP,提取和純化過(guò)程中各用飽和酚/氯仿/異戊醇提取一次最后得到的DNA質(zhì)量最好。譚和平[4]等提出在研磨過(guò)程中除加入PVP和抗氧化劑β-巰基乙醇之外并協(xié)同加入Vc,有助于阻止酚類物質(zhì)的氧化,其最適宜添加濃度為Vc 0.05g/g鮮樣。
高峻[7]等采用改進(jìn)的CTAB微量提取法,提取液中加入β-巰基乙醇,直接將茶樹嫩葉剪碎后進(jìn)行提取,沒(méi)有經(jīng)過(guò)液氮處理,也沒(méi)有進(jìn)行研磨,結(jié)果顯示得到了質(zhì)量較高的DNA。袁長(zhǎng)春[8]等提出液氮研磨過(guò)程和保溫過(guò)程是影響DNA提取質(zhì)量的關(guān)鍵環(huán)節(jié),經(jīng)過(guò)改良認(rèn)為液氮的加入量約為2/5研缽體積,研磨時(shí)間約為20~30 min,60℃水浴保溫1.5 h為宜。Mahipal Singh[9]等用CTAB法,提取市場(chǎng)上購(gòu)回的干茶樣DNA,效果也不錯(cuò)。黃建安[10]等采用了改良的CTAB和SDS兩類方法都獲得了較高質(zhì)量的DNA。
梁月榮[11]等采用植物DNA提取試劑盒(Amershan公司產(chǎn)品)提取得到了質(zhì)量較好的茶樹基因組DNA。但是一般的植物DNA提取試劑盒由于缺乏多酚類化合物的處理步驟,所提取的茶樹基因組DNA顏色黃褐,得率低,純度差,不符合后續(xù)的分析要求。
紫外分光光度法利用核酸在260 nm波長(zhǎng)處有最大吸收峰的特點(diǎn),通過(guò)檢測(cè)DNA在該波長(zhǎng)的吸光值,從而對(duì)核酸進(jìn)行直接定量。但該法并不可靠,要求DNA有相當(dāng)高的純度,因?yàn)楹怂針悠分械牡鞍踪|(zhì)等雜質(zhì)對(duì)核酸的定量有較大影響[12]。
近年來(lái),通過(guò)對(duì)小分子與DNA相互作用的光譜特性的研究,建立了測(cè)定DNA含量的紫外吸收光譜新方法,即通過(guò)測(cè)定小分子與DNA相互作用的吸收光譜,對(duì)DNA進(jìn)行定量,這類小分子有釕聯(lián)吡啶配合物[13]、結(jié)晶紫[14]、維多利亞藍(lán)[15]、燦爛綠[16]、生物染色劑燦爛甲酚藍(lán)[17]和天青Ι[18]等。
熒光分析法是利用DNA對(duì)小分子熒光探針的熒光強(qiáng)度的改變從而測(cè)定DNA的含量,該法操作簡(jiǎn)便且靈敏度高,重現(xiàn)性好,取樣量少。按原理又分為熒光淬滅測(cè)定法、體系能量轉(zhuǎn)移測(cè)定法、熒光增強(qiáng)測(cè)定法[19]等。
基于PCR技術(shù)的原理,現(xiàn)主要有以下幾種核酸定量方法,包括終點(diǎn)稀釋法、套式PCR、競(jìng)爭(zhēng)PCR、PCR產(chǎn)物微孔板雜交法、實(shí)時(shí)熒光定量PCR法等[20]。其中實(shí)時(shí)熒光定量PCR法特異性強(qiáng),靈敏度高,是檢測(cè)生物樣品中微量DNA最現(xiàn)成的方法。
該方法整個(gè)過(guò)程可以實(shí)時(shí)觀測(cè),其原理是在PCR反應(yīng)體系中加入熒光基團(tuán),利用熒光信號(hào)的累積實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)整個(gè)PCR進(jìn)程,最后通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)未知DNA模板進(jìn)行相對(duì)定量和絕對(duì)定量,按原理又分為TaqMan探針?lè)ê蚐YBR Green I熒光染料法。TaqMan探針?lè)ㄌ砑恿艘粭l5′端帶有熒光基團(tuán)、3′端帶有淬滅基團(tuán)的熒光探針,當(dāng)探針完整時(shí),報(bào)告基團(tuán)受到淬滅基團(tuán)的制約,不能發(fā)出熒光。探針被分解后,5′端的熒光物質(zhì)便游離出來(lái),發(fā)出熒光。所釋放的熒光基團(tuán)數(shù)和PCR擴(kuò)增產(chǎn)物數(shù)是一對(duì)一的關(guān)系,由此可對(duì)模板進(jìn)行準(zhǔn)確定量。該法在原理上更為嚴(yán)格,所得數(shù)據(jù)更為準(zhǔn)確,但由于采用熒光淬滅及雙末端標(biāo)記技術(shù),淬滅難以徹底,本底較高而采用酶外切活性,因此定量時(shí)易受酶活性影響。SYBR Green I熒光染料法是SYBR Green I與雙鏈DNA結(jié)合后發(fā)出熒光,熒光信號(hào)強(qiáng)度代表了雙鏈DNA的分子數(shù),通過(guò)檢測(cè)反應(yīng)體系中的熒光強(qiáng)度,對(duì)DNA進(jìn)行定量,可在PCR反應(yīng)處于指數(shù)期的某一點(diǎn)上來(lái)檢測(cè)PCR產(chǎn)物量,并且由此來(lái)推斷模板最初含量,這種方法成本更為低廉,實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)更為簡(jiǎn)便。
電化學(xué)發(fā)光分析法是近幾年來(lái)興起的一種DNA定量方法,是利用DNA與絡(luò)合物作用后生成新的絡(luò)合物從而導(dǎo)致絡(luò)合物峰電流下降,且峰電流或其減小值在一定范圍內(nèi)與DNA濃度成線性關(guān)系而建立的。原理是對(duì)電極施加一定的電壓進(jìn)行電化學(xué)反應(yīng),反應(yīng)的產(chǎn)物之間或與體系中的某種組分進(jìn)行化學(xué)發(fā)光,用普通光學(xué)手段測(cè)量發(fā)光光譜和強(qiáng)度,對(duì)物質(zhì)進(jìn)行定量的一種微量分析強(qiáng)度,從而對(duì)物質(zhì)進(jìn)行定量的一種微量分析方法,具有靈敏、快速、準(zhǔn)確和分析適應(yīng)性廣等特點(diǎn)的一種技術(shù)。
此外,還有其他一些方法,如化學(xué)放光分析法、共振瑞利散射法、高效液相色譜法、毛細(xì)管電泳法等。
分子標(biāo)記技術(shù)具有客觀、準(zhǔn)確、快速的特點(diǎn),是繼形態(tài)標(biāo)記、細(xì)胞標(biāo)記和生化標(biāo)記之后發(fā)展起來(lái)的一種較為理想的遺傳標(biāo)記形式,能對(duì)不同發(fā)育時(shí)期的個(gè)體、任何組織器官甚至細(xì)胞作檢測(cè),數(shù)量極多,遍及整個(gè)基因組,多態(tài)性高,遺傳穩(wěn)定,不受環(huán)境及基因表達(dá)與否的限制[21-22]。目前運(yùn)用于茶樹的分子標(biāo)記方法主要有 RAPD、AFLP、SSR、ISSR 等[23]。
RAPD(Random Amplified Polymorphic DNA)即隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)DNA技術(shù),是目前運(yùn)用最普遍的一種分子標(biāo)記技術(shù)。原理是用一系列具有10個(gè)左右堿基的單鏈隨機(jī)引物,對(duì)基因組的DNA全部進(jìn)行PCR擴(kuò)增,以檢測(cè)多態(tài)性。該技術(shù)原理簡(jiǎn)單,引物設(shè)計(jì)簡(jiǎn)便,用一個(gè)引物就可擴(kuò)增出許多片段,實(shí)驗(yàn)周期短,能在較短的時(shí)間篩選大量樣品,成本低,而且不需要同位素,安全性好,適用于自動(dòng)化操作分析,但它是顯性標(biāo)記,不能識(shí)別雜合子位點(diǎn),且多態(tài)性水平較低,實(shí)驗(yàn)的穩(wěn)定性和重復(fù)性差[24]。一些研究者[4,7,11,25-26]先后利用RAPD技術(shù)對(duì)茶樹品種的遺傳多樣性、種質(zhì)資源等方面進(jìn)行了研究,表明RAPD可以作為茶樹優(yōu)異種質(zhì)資源遺傳多態(tài)性、系統(tǒng)演化和分子鑒別研究的有效手段之一。
AFLP(Amplified Fragment Length Polymorphism)即擴(kuò)增片段長(zhǎng)度多態(tài)性技術(shù)。原理是基因組DNA經(jīng)限制性內(nèi)切酶酶切后,產(chǎn)生大小不同的片段,用特定的雙鏈接頭與酶切DNA片段連接作為模板,用含選擇性堿基的引物對(duì)模板DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,以此來(lái)檢測(cè)多態(tài)性。
該技術(shù)揭示的多態(tài)性高,理論上可產(chǎn)生無(wú)限多的AFLP標(biāo)記,重復(fù)性好,但是對(duì)DNA模板質(zhì)量要求高,且操作過(guò)程復(fù)雜,技術(shù)難度大,成本高。近幾年AFLP在茶樹中也有了較多的應(yīng)用[27-28]。
SSR(Simple Sequence Repeat)即簡(jiǎn)單重復(fù)序列標(biāo)記技術(shù)。原理根據(jù)微衛(wèi)星重復(fù)序列兩端的特定短序列設(shè)計(jì)引物,通過(guò)PCR反應(yīng)擴(kuò)增微衛(wèi)星片段。由于核心序列重復(fù)數(shù)目不同,因而擴(kuò)增出不同長(zhǎng)度的PCR產(chǎn)物,以此檢測(cè)DNA多態(tài)性。
該技術(shù)操作簡(jiǎn)單,重復(fù)性好,不僅能夠鑒定純合體和雜合體,而且結(jié)果更加可靠,但引物具有物種特異性,開發(fā)引物需要了解基因組的序列信息。近幾年SSR在茶樹中也有了較多的應(yīng)用[29-30]。
ISSR(Inter-simple Sequence Repeat)即內(nèi)部簡(jiǎn)單重復(fù)序列標(biāo)記技術(shù)。原理利用生物基因組常出現(xiàn)的SSR本身設(shè)計(jì)引物,保證引物與基因組DNA中SSR的5′或3′末端結(jié)合,通過(guò)PCR反應(yīng)使位于反向排列、間隔不太大的重復(fù)序列間的DNA片段進(jìn)行擴(kuò)增。
該技術(shù)操作簡(jiǎn)單,重復(fù)性好,揭示的多態(tài)性好,成本低,引物通用性強(qiáng),不需要預(yù)先的DNA測(cè)序,可以提供豐富的基因組信息,通常為顯性標(biāo)記,呈孟德爾式遺傳,且具有很好的穩(wěn)定性。
目前茶樹相關(guān)研究中還缺乏分子水平上的測(cè)試方法標(biāo)準(zhǔn),其中茶樹DNA提取是茶樹分子水平研究中最基礎(chǔ)的工作,也是最關(guān)鍵的一步,所提DNA質(zhì)量好壞是后續(xù)濃度測(cè)定、分子標(biāo)記成功與否的關(guān)鍵,所以盡快建立一套完整的適合茶樹DNA提取、純化流程,可以為后面的茶樹分子水平測(cè)試奠定良好基礎(chǔ)。其次分子標(biāo)記技術(shù)在茶樹中的應(yīng)用尚未成熟,今后應(yīng)通過(guò)方法學(xué)原理對(duì)分子標(biāo)記技術(shù)進(jìn)行考察,評(píng)價(jià)不同標(biāo)記方法對(duì)茶樹基因組的適用性,指導(dǎo)今后茶樹的相關(guān)研究。
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